Клеточный ответ на воздействие ионизирующего излучения и света в присутствии фотосенсибилизатора

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследовано совместное использование рентгеновского облучения и фотодинамической терапии на модели клеток аденокарциномы легкого человека А549. Установлено, что синхронное воздействие двух видов облучения способствует более сильному снижению уровня выживаемости опухолевых клеток, чем их последовательное применение или каждый вид облучения по отдельности. Для различных комбинаций двух указанных видов облучения в клетках определены уровни РНК и экспрессии ряда генов, вовлеченных в контроль клеточного цикла (р21, DINOL), апоптоз (BAX, PUMA) и репарацию ДНК (PARP1, OGG1, Rad51, Lig4). Наибольший уровень экспрессии при всех воздействиях наблюдался для гена длинной некодирующей РНК DINOL. Обнаруженное повышение экспрессии генов BAX и PUMA свидетельствует о развитии апоптоза. Полученные результаты подтверждают синергизм лучевой и фотодинамической терапии при их синхронном применении.

Об авторах

С. В Акулиничев

Институт ядерных исследований РАН;Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского

Email: akulinic@inr.ru
Москва, Троицк, Россия, Москва, Россия

С. И Глухов

Институт ядерных исследований РАН;Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Email: serglukhovmb@gmail.com
Москва, Троицк, Россия, Москва, Россия

А. В Ефременко

Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН

Москва, Россия

Д. А Коконцев

Институт ядерных исследований РАН;Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского

Москва, Троицк, Россия, Москва, Россия

Е. А Кузнецова

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Pushchino, Moscow Region, Russia

В. В Мартынова

Институт ядерных исследований РАН

Москва, Троицк, Россия, Москва, Россия

А. В Феофанов

Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН;Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Москва, Россия

И. А Яковлев

Институт ядерных исследований РАН;Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского

Москва, Троицк, Россия, Москва, Россия

Список литературы

  1. L. He, X. Yu, and W. Li, ACS Nano, 16 (12), 19691 (2022). doi: 10.1021/acsnano.2c07286
  2. A. Bansal, F. Yang, T. Xi, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 115 (7), 1469 (2018). DOI: 10.1073/ pnas.1717552115
  3. Y. Fatma and T. Ayga, Nov. Appro. in Can. Study, 1 (2), 000506 (2018). doi: 10.31031/NACS.2018.01.000506
  4. A. Colasanti, A. Kisslinger, M. Quarto, et al., Acta Biochim. Pol., 51 (4), 1039 (2004).
  5. A. R. Montazerabadi., A. Sazgarnia, M. H. Bahreyni-Toosi, et al., J. Photochem Photobiol B, 109, 42 (2012). doi: 10.1016/j.jphotobiol.2012.01.004
  6. B. W. Pogue, J. A. O'Hara, E. Demidenko, et al., Cancer Res., 63 (5), 1025 (2003).
  7. М. А. Каплан, А. И. Малыгина, Г. В. Пономарев и др., Рос. биотерапевтич. журн., 14, 79 (2015).
  8. Ю. С. Романко, А. Ф. Цыб, М. А. Каплан и др., Бюл. эксперим. биологии и медицины, 139 (4), 456 (2005).
  9. D. Xu, A. Baidya, K. Deng, et al., Oncol. Rep., 45 (2), 547 (2021). doi: 10.3892/or.2020.7871
  10. A. Hak, M. S. Ali, S. A. Sankaranarayanan, et al., ACS Appl. Bio Mater., 6 (2), 349 (2023). doi: 10.1021/acsabm.2c00891
  11. L.Wang, G. Li, L. Cao, et al., ACS Pharmacol. Transl. Sci., 5 (2), 110 (2022). doi: 10.1021/acsptsci.1c00249
  12. J. S.Russell, K. Brady, W. E. Burgan, et al., Cancer Res., 63 (21), 7377 (2003).
  13. H. H. Y. Chang, N. R. Pannunzio, N. Adachi, et al., Nat. Rev. Mol. Cell. Biol., 18 (8), 495 (2017). doi: 10.1038/nrm.2017.48
  14. K. Tsouroula, A. Furst, M. Rogier, et al., Mol. Cell, 63 (2), 293 (2016). doi: 10.1016/j.molcel.2016.06.002
  15. F. Aymard, B. Bugler, C. K. Schmidt, et al., Nat. Struct. Mol. Biol., 21 (4), 366 (2014). doi: 10.1038/nsmb.2796
  16. A. Ciccia and S. J. Elledge, Mol. Cell, 40 (2), 179 (2010). doi: 10.1016/j.molcel.2010.09.019
  17. A. M. Schmitt, J. T. Garcia, T. Hung, et al., Nat. Genet., 48 (11), 1370 (2016). doi: 10.1038/ng.3673
  18. M. P. A. Luna-Vargas and J. E. Chipuk, Trends Cell Biol., 26 (12), 906 (2016). doi: 10.1016/j.tcb.2016.07.002
  19. H. Rezaeejam, A. Shirazi, M. Valizadeh, et al., J. Cancer Res. Ther., 11 (3), 549 (2015). doi: 10.4103/09731482.160912
  20. M. A. Grin, I. S. Lonin, S. V. Fedyunin, et al., Mendeleev Commun., 17, 209 (2007).
  21. A. V. Efremenko, A. A. Ignatova, A. A. Borsheva, et al., Photochem. Photobiol. Sci., 11 (4), 645 (2012).
  22. A. V. Efremenko, A. A. Ignatova, M. A. Grin, et al., Photochem. Photobiol. Sci., 13, 92 (2014).
  23. Г. В. Пономарев, Рос. биотерапевтич. журн., 6 (1), 24 (2007).
  24. Г. В. Пономарев, С. Ю. Егоров, А. А. Стрижаков и др., Рос. биотерапевтич. журн., 12 (2), 68 (2013).
  25. И. А. Кондратьева, Н. В. Воробьева, О. В. Буракова и др., в кн. Практикум по иммунологии, под ред. И. Кондратьева и В. Самуилова (Изд. МГУ, М., 2001), сс. 17-32.
  26. K. J. Livak and T. D. Schmittgen, Methods, 25 (4), 402 (2001), doi: 10.1006/meth.2001.1262
  27. J.W. Tukey, Biometrics, 5 (2), (1949).
  28. A. Hafner, M. L. Bulyk, A. Jambhekar, et al., Nat. Rev. Mol. Cell Biol., 20 (4), 199 (2019), doi: 10.1038/s41580-019-0110-x
  29. S. Kobashigawa, K. Suzuki, and S. Yamashita, Biochem. Biophys. Res.Commun., 414 (4), 795 (2011), doi: 10.1016/j.bbrc.2011.10.006

© Российская академия наук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах