Состав и митогенная активность полисахарида из Solanum tuberosum L.
- Авторы: Генералов Е.А1,2, Яковенко Л.В1
-
Учреждения:
- Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
- Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет)
- Выпуск: Том 68, № 5 (2023)
- Страницы: 856-862
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.rcsi.science/0006-3029/article/view/233446
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0006302923050034
- EDN: https://elibrary.ru/PGFGEA
- ID: 233446
Цитировать
Аннотация
Полисахарид STP был выделен из водного экстракта Solanum tuberosum L. и очищен с помощью ионообменной хроматографии и гель-фильтрации. Его молекулярную массу определяли с помощью гельпроникающей хроматографии и высокоэффективной жидкостной хроматографии, а его моносахаридный состав анализировали методами высокоэффективной жидкостной хроматографии и газовой хроматографии с использованием пламенно-ионизационного детектора и капиллярной колонки. Было показано, что полисахарид STP состоял из галактозы и арабинозы в количествах 37.5% и 23.5% соответственно, а также уроновых кислот (9.7%), остатков моносахарида глюкозы (15%) и белков (не менее 9%). Молекулярная масса STP составляла 70 кДа. Для структурного анализа STP использовали метод ИК-Фурье-спектроскопии. Митогенная активность экстрагированного полисахарида сравнима с активностью липополисахарида.
Ключевые слова
Об авторах
Е. А Генералов
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова;Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет)Москва, Россия
Л. В Яковенко
Московский государственный университет имени М.В. ЛомоносоваМосква, Россия
Список литературы
- M. E. Camire, S. Kubow, and D. J. Donnelly, Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 49 (10), 823 (2009).
- M. Kujawska, A. Olejnik, G. Lewandowicz, et al., Nutrients, 10 (2), 259 (2018).
- J. E. Vlachojannis, M. Cameron, and S. Chrubasik, Phytother. Res., 24 (2), 159 2010.
- H. Chen, J. Sun, J. Liu, et al., Int. J. Biol. Macromol., 131, 484 (2019).
- S. Chrubasik, T. Boyko, Y. Filippov, and T. Torda, Phytomedicine, 13 (8), 596 (2006).
- M. G. Basilicata, G. Pepe, S. F. Rapa, et al., Int. J. Mol. Sci., 20 (23), 6087 (2019).
- W. G. Jardine, C. H. L. Doeswijk-Voragen, I. M. R. MacKinnon, et al., J. Sci. Food Agric., 82 (8), 834 (2002).
- D. T. Do, J. Singh, I. Oey, and H. Singh. Food Hydrocolloids, 108, 105972 (2020).
- M. C. Jarvis, M. A. Hall, D. R. Threlfall, J. Friend, Planta, 152 (2), 93 (1981).
- A. I. Usov, M. I. Bilan, and N. G. Klochkova, Botanica Marina, 38, 43 (1995).
- M. M. Bradford, Anal. Biochem., 72 (1-2), 248 (1976).
- R. Hori and J. Sugiyama, Carbohydr. Polym., 52 (4), 449 (2003).
- N. K. Jerne, A. A. Nordin, Science. 140 (3565), 405 (1963).
- W. S. York, A. G. Darvill, M. McNeil, et al., in Methods in Enzymology, vol. 118, Plant Molecular Biology, Ed. by A. Weissbach and H. Weissbach (Acad. Press, London, New York, San Diego, 1986), pp. 3-40.
- C. C. Sweeley, R. V. P. Tao, in Methods in Carbohydrate Chemistry, Ed. by R. L. Whistler (Acad. Press, London, New York, San Diego, 1972), pp. 23-25.
- C. C. Sweeley, R. Bentley, M. Makita, and W. W. Wells, J. Am. Chem. Soc., 85 (16), 2497 (1963).
- M. DuBois, K. A. Gilles, J. K. Hamilton, et al., Anal. Chem., 28 (3), 350 (1956).
- K. Wilson, and J. Walker, Principles and Techniques of Practical Biochemistry (Cambridge University Press, Cambridge, 2000).
- M. Cerna, A. S. Barros, A. Nunes, et al., Carbohydr. Polym., 51 (4), 383 (2003).