Влияние ДНК-связывающих лигандов из группы димерных бисбензимидазолов DBA(n) и DBPA(n) в комбинации с γ-излучением на эпителиально-мезенхимальный переход и размер пула стволовых клеток рака молочной железы линии MCF-7

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Лучевая терапия является одним из основных методов лечения злокачественных новообразований, в том числе рака молочной железы. Однако известно, что она может приводить к увеличению количества опухолевых стволовых клеток, которые резистентны к традиционным противоопухолевым воздействиям и, как полагают, ответственны за развитие рецидивов и метастазов. Поэтому значительный интерес представляет разработка средств элиминации опухолевых стволовых клеток, особенно в комбинации с ионизирующими излучениями. В работе изучены эффекты одиночного и комбинированного действия новых серий узкобороздочных лигандов ДНК - димерных бисбензимидазолов DBA(n) и DBPA(n) (где n - число метиленовых групп между двумя бисбензимидазольными блоками) и γ-излучения на клетки рака молочной железы человека линии MCF-7 in vitro. В частности, выбраны соединения с максимальным цитотоксическим действием и связыванием с клетками, а затем изучено влияние последних на популяцию CD44+CD24-/low опухолевых стволовых клеток и радиационно-индуцированный эпителиально-мезенхимальный переход по критерию экспрессии виментина. Показано увеличение уровня экспрессии этого белка и одновременно относительного количества опухолевых стволовых клеток после одиночного действия γ-излучения в дозе 4 Гр. Соединения DBPA (1,4) в комбинации с облучением блокировали радиационно-индуцированную экспрессию виментина и снижали относительное количество опухолевых стволовых клеток в 1.7 и 4.1 раз по сравнению с облучением (р = 0.041 и р = 0.005) соответственно. При этом происходило уменьшение абсолютного количества опухолевых стволовых клеток в 2.8 и 12.0 раз по сравнению с облучением (р = 0.029 и р = 0.004) соответственно. Напротив, одиночное и комбинированное с γ-излучением действие DBA(5,7) увеличивало уровень экспрессии виментина и эти же соединения при комбинированном применении с облучением увеличивали относительное количество опухолевых стволовых клеток в 3.1 и 3.6 раза (р = 0.006 и р = 0.005) соответственно по сравнению с облучением. Абсолютное количество опухолевых стволовых клеток возрастало при этом в 2.2 и 1.5 раза (p = 0.017 и p = 0.032), соответственно. Полученные данные показывают тесную связь процесса эпителиально-мезенхимального перехода и формирования пула опухолевых стволовых клеток после радиационного воздействия, а также свидетельствуют о перспективности дальнейшего изучения DBPA(1,4) как средств элиминации опухолевых стволовых клеток в условиях in vivo.

Об авторах

К. А Чурюкина

Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба - филиал Национального медицинского исследовательского центра радиологии МЗ РФ

Email: churiukina@inbox.ru
Обнинск, Калужская область, Россия

О. Н Матчук

Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба - филиал Национального медицинского исследовательского центра радиологии МЗ РФ;Объединенный институт ядерных исследований

Обнинск, Калужская область, Россия;Дубна, Московская область, Россия

А. Д Каприн

Национальный медицинский исследовательский центр радиологии МЗ РФ;Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена - филиал Национального медицинского исследовательского центра радиологии МЗ РФ;Российский университет дружбы народов

Обнинск, Калужская область, Россия;Москва, Россия

С. А Иванов

Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба - филиал Национального медицинского исследовательского центра радиологии МЗ РФ;Российский университет дружбы народов

Обнинск, Калужская область, Россия

В. С Коваль

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Москва, Россия

А. Ф Арутюнян

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Москва, Россия

А. Л Жузе

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Москва, Россия

И. А Замулаева

Медицинский радиологический научный центр им. А.Ф. Цыба - филиал Национального медицинского исследовательского центра радиологии МЗ РФ;Объединенный институт ядерных исследований

Обнинск, Калужская область, Россия;Дубна, Московская область, Россия

Список литературы

  1. Статистика по раку молочной железы (26.03.2021) [Электронный ресурс]: официальный сайт Всемирной организации здравоохранения. Режим доступа: https://www.who.int/ru/news-room/factsheets/detail/breast-cancer.
  2. M. Kakarala and M. S. Wicha, J. Clin. Oncol., 26 (17), 2813 (2008).
  3. S. Taurina and H. Alkhalif, Neoplasia, 22 (12), 663 (2020).
  4. P. Zhu and Z. Fan, Biophys. Rep., 4 (4), 178 (2018).
  5. N. K. Lytle, A. G. Barber, and T. Reya, Nat. Rev., 18, 669 (2018).
  6. T. Zhang, H. Zhou, K. Wang, et al., Biomed. Pharmacother., 147, 112616 (2022).
  7. X. Zeng, C. Liu, J. Yao, et al., Pharmacol. Res., 136, 105320 (2021).
  8. M. Al-Hajj, M. S. Wicha, A. Benito-Hernandez, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 100 (7), 3983 (2003).
  9. F. F de Bega, P. Caetano, R. Gerhard, et al., J. Clin. Pathol., 66, 187 (2013).
  10. R. Camerlingo, G. A. Ferraro, F. D. Francesco, et al., Oncol. Rep., 31, 1127 (2014).
  11. W. Li, H. Ma, J. Zhang, et al., Sci. Rep., 7, 13856 (2017).
  12. C. Sheridan, H. Kishimoto, R. K. Fuchs, et al., Breast Cancer Res., 8 (5), 1 (2006).
  13. T. Phillips, W. H. McBride, and F. Pajonk, JNCI J. Natl. Cancer Inst., 98 (24), 1777 (2006).
  14. C. Lagadec, E. Vlashi, L. D. Donna, et al., Breast Cancer Res., 12 (13), 1 (2010).
  15. И. А. Замулаева, О. Н. Матчук, Е. И. Селиванова и др., Радиац. биология. Радиоэкология, 54 (3), 256 (2014).
  16. K. A. Churyukina, A. L. Zhuze, A. A. Ivanov, et al., Biophysics, 65 (1), 87 (2020).
  17. F. De Bacco, P. Luraghi, E. Medico, et al., J. Natl. Cancer Inst., 103 (8), 645 (2011).
  18. A. Kawamoto, T. Yokoe, K. Tanaka, et al., Oncol. Rep., 27 (1), 51 (2012).
  19. X. Zhang, X. Li, N. Zhang, et al., Biochem. Biophys. Res.Commun., 412 (1), 188 (2011).
  20. S. Y. Lee, E. K. Jeong, M. K. Ju, et al., Mol. Cancer, 16, Art. ID 10 (2017). doi: 10.1186/s12943-016-0577-4
  21. C. Lagadec, E. Vlashi, L. D. Donna, et al., Stem Cells, 30, 833 (2012).
  22. X. Gao. B. J. Sishc, C. B. Nelson, et al., Front. Oncol., 9 (138), Art. ID 00138 (2016). DOI: 10.3389/ fonc.2016.00138
  23. F. Li, K. Zhuo, L. Gao, et al., Oncol. Lett., 12, 3059 (2016).
  24. L. Sun and J. Fang, Cell Mol. Life Sci.,73 (23), 4493 (2016).
  25. S. Keyvani-Ghamsari, K. Khorsandi, A. Rasul, et al., Clin. Epigenet., 13, Art. ID 120 (2021). doi: 10.1186/s13148-021-01107-4
  26. E. Nowak and I. Bednarek, Cells, 10, 3435 (2021).
  27. Y. Yamada, H. Haga, and Y. Yamada, Stem Cells Transl., 3 (10), 1182 (2014).
  28. A. Ivanov, V. Koval, O. Susova, et al., Bioorg. Med. Chem. Lett., 25 (13), 2634 (2015).
  29. N. A. Cherepanova, A. A. Ivanov, D. V. Maltseva, et al., J. Enzyme Inhib. Med. Chem., 26, 295 (2011).
  30. O. Y. Susova, A. A. Ivanov, S. M.Ruiz, et al., Biochemistry (Moscow), 75 (6), 695 (2010).
  31. M. Darii, A. R. Rakhimova, V. N. Tashlitskii, et al., Mol. Biol. (Moscow), 47 (2), 292 (2013).
  32. К. А. Чурюкина, И. А. Замулаева, А. А. Иванов и др., Радиац. биология. Радиоэкология, 57 (2), 136 (2017).
  33. I. A. Zamulaeva, K. A. Churyukina, O. N. Matchuk, et al., AIMS Biophysics, 7 (4), 339 (2020).
  34. V. S.Koval, A. F. Arutyunyan, and A. L. Zhuze, Bioorg. Med. Chem., 26 (9), 2302 (2018).
  35. V. S. Koval, A. F. Arutyunyan, V. I. Salyanov, et al., Bioorg. Med. Chem., 28, 115378 (2020).
  36. P. G. Baraldi, A. Bovero, F. Fruttarolo, et al., Med. Res. Rev., 24 (4), 475 (2004).
  37. K. Miskovid, M. Bujak, M. Baus, et al., Arh. Hig. Rada Toksikol. 64 (4), 593 (2013).
  38. K. S. Sainia, H., Hamidullaha, R. Ashrafb, et al., Mol. Carcinogenesis, 54 (4), 1266 (2016).
  39. M. S. Nafie, K. Arafa, N. K. Sedky, et al., Chem.-Biol.Interact., 324, 109087 (2020).
  40. G. S. Khan, A. Shah., Ziaur-Rehman, et al., J. Photochem. Photobiol. B, 115, 105 (2012).
  41. R.-R. Begicevic and M. Falasca, Int. J. Mol. Sci., 18, 1(2017).
  42. J. Konge, F. Leteurtre, M. Goislard, et al., Oncotarget, 9 (34), 23531 (2018).
  43. H. Fazilaty, L. Rago., K. K. Youssef, et al., Nature Commun., 5115, Art. ID 5115 (2019). doi: 10.1038/s41467-019-13091-8
  44. B. Dong, Z. Qiu, Y. Wu, Front. Pharmacol. 11, Art. ID 596239 (2020). doi: 10.3389/fphar.2020.596239
  45. M. Garg, World J. Stem Cells, 9 (8), 118 (2017).
  46. S. Kotiyal and S. Bhattacharya, Biochem. Biophys. Res.Commun., 453, 112 (2014).
  47. S. Tanabe, S. Quader, H. Cabral, et al., Front. Pharmacol., 11, Art. ID 00904 (2020). DOI: 10.3389/ fphar.2020.00904
  48. A. Kanamoto, I. Ninomiya, S. Harada, et. al., Int. J. Oncol., 49 (5), 1859 (2016).
  49. T. Boulding, R. D. McCuaig, A. Tan, et al., Sci. Rep., 8, Art. ID 73 (2018). doi: 10.1038/s41598-017-17913-x
  50. S. Ambrosio, C. D. Sacca, and B. Majello, Biocyim. Biophys. Acta - Gene Regulatory Mechanisms, 1860, 905 (2017).
  51. S. Zhang, Y. Gong, C. Li, et al., Cell Proliferation, 54 (2), Art. ID e12963 (2021). doi: 10.1111/cpr.12963
  52. H. M. Kwon, E. J. Kang, K. Kang, et al., Oncotarget, 8, 89005 (2017).
  53. G. Xue, Z. Ren., Y. Chen, et al., Cancer Lett., 361 (1), 121 (2015). doi: 10.1016/j.canlet.2015.02.046

© Российская академия наук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах