Влияние нейротрофических факторов на состав белков при повреждении и регенерации соматических нервов

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследовано изменение содержания нейротрофических факторов и белкового состава мембран соматических нервов крысы при повреждении и выживании нервов на фоне действия клобетазола. Показано, что внутримышечное введение препарата по сравнению с его использованием в составе гидрогелевых систем, полученных из микробных полисахаридов, оказывает более выраженное действие на увеличение уровня нейротрофических факторов роста и структурных белков, ответственных за восстановительные процессы, а также стабилизирует содержание общей белковой фракции поврежденных соматических нервов. Меньшая деградация белков травмированного нервного проводника при внутримышечном введении клобетазола вероятно обусловлена большей доступностью препарата при инъекции, чем при его медленном высвобождении из гидрогелевого композита. Кроме этого, увеличение количества ДНК и отдельных белковых фракций указывает на способность клобетазола участвовать в активации генов, связанных с ремиелинизацией. Мы полагаем, что клобетазол активирует синтез нейротрофических факторов роста, запуская тем самым фосфатидилинозитол-3-киназный и митогенактивируемый протеинкиназный сигнальные пути, осуществляющие регуляцию процессов перестройки цитоскелета и аксонального роста, а также активацию синтеза структурных и аксональных белков, необходимых для восстановления функциональной активности травмированных нервных проводников.

Об авторах

Т. П Кузьменко

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва

Email: zyuzina-tatjana@mail.ru
Саранск, Россия

М. В Парчайкина

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва

Саранск, Россия

Э. С Ревина

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва

Саранск, Россия

М. Ю Гладышева

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва

Саранск, Россия

В. В Ревин

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва

Саранск, Россия

Список литературы

  1. X. Zhang, X. He, Q. Li, et al., Stem Cell Rep., 9 (8), 1256 (2017).
  2. K. Sdnchez-Alegria, M. Flores-Lebn, E. Avila-Munoz, et al.Int. J. Mol. Sci., 19, 3725 (2018).
  3. V. V. Revin, M. A. Yudanov, and G. V. Maksimov, Bull. Exp. Biol. Med., 142 (2), 191 (2006).
  4. S. I. Pinyaev, T. P. Kuzmenko, N. V. Revina, et al., BioMed Res.Int., 2019, 1-9 (2019).
  5. M. V. Isakina, N. V. Revina, and V. V. Revin, Biol. Med., 7 (2), (2006).
  6. Z. Du, O. Bondarenko, D. Wang, et al., J. Cell Physiol., 231 (6), 1301 (2016).
  7. O. Bota and L. Fodor, Drug Metab. Rev., 51 (3), 266 (2019).
  8. П. К. Мирошникова, А. В. Люндуп, Н. П. Бацаленко и др., Вестн. РАМН, 73 (6), 388 (2018).
  9. V. V. Revin, S. I. Pinyaev, M. V. Parchaykina, et al., Front. Physiol., 10, 384 (2019).
  10. F. Gonzalez-Perez, E. Udina, and X. Navarro, Int. Rev. Neurobiol., 108, 257 (2013).
  11. F. J. Najm, M. Madhavan, A. Zaremba, et al., Nature, 522 (7555), 216 (2015).
  12. S. Morisaki, M. Nishi, and H. Fujiwara, Glia, 58, 954 (2010).
  13. А. Н. Хлебникова, Фармакотерапия в дерматовенерологии, 5, 124 (2010).
  14. X. Fontana, M. Hristova, and C. Da Costa, J. Cell Biol., 198, 127 (2012).
  15. T. M. Brushart, M. Aspalter, J. W. Griffin, et al., Exp. Neurol., 247, 272 (2013).
  16. W. Shi, S. Bi, Ya. D. et al., Exp. Ther. Med., 18 (2), 1258 (2019).
  17. И. Я. Бозо, А. И. Билялов, М. О. Мавликеев и Р. В. Деев, Гены и клетки, 14 (1), 16 (2019).
  18. D. Nunes, S. Andrade, M. J. Ramalho, et al. Polymers (Basel), 14 (5), 1010 (2022).
  19. T. Mosmann. J. Immunol., Methods, 65, 55 (1983).
  20. В. В. Ревин, Дис.. д-ра биол. наук (Институт биологической физики АН СССР, Минск, 1990).
  21. O. H. Lowry, N. J. Rosebrough, A. L. Farr, et al., J. Biol. Chem., 193, 265 (1951).
  22. U. K. Laemmli, Nature, 277, 680 (1970).
  23. L. L. Boodram, in Protocol Online - Your Lab's Reference Book - online database of research protocols in a variety of life science fields (2006). http://www.protocolonline.org/prot/ Protocols/Extraction-of-genomic-DNA-from-whole-blood-3171.html.
  24. F. Ahmed, E. Zapata-Mercado, S. Rahman, and K. Hristova. Biophys J., 120 (1), 55 (2021).
  25. А. И. Продан, Л. М. Бенгус и А. А. Сиренко, Ортопедия, травматология и протезирование, 3 (2), 66 (2010).
  26. H. Querfurth and H. K. Lee, Mol. Neurodegener., 16 (1), 44 (2021).
  27. H. Huang, H. Liu, R. Yan, and M. Hu, Neurochem. Res., 42 (12), 3515 (2017).
  28. S. R. Hutton, J. M. Otis, E. M. Kim, et al., J. Neurosci., 37 (34), 8102 (2017).
  29. M. Caillaud, L. Richard, J.-M. Vallat, et al. Neural Regen. Res., 14 (1), 24 (2019).
  30. A. Yuan, M. V. Rao, Veeranna, and R.A. Nixon, Cold Spring Harb. Perspect. Biol., 9 (4), a018309 (2017).
  31. C. Galindo-Romero, B. Vidal-Villegas, J. Asis-Martfnez, et al., Int. J. Mol. Sci., 22 (19), 10896 (2021).
  32. J. E. Kim, Y. H. Cho, and T. B. Seo, J. Exerc. Rehabil., 16 (2), 141 (2020).
  33. Q. Cai, G. Wu, M. Zhu, et al., Life Sci., 248, 117465 (2020).
  34. D. Chung, A. Shum, and G. Caraveo, Front. Cell Dev. Biol., 8, 567537 (2020).
  35. S. Y. Cheng, S. C. Wang, M. Lei, et al., Neural Regen. Res., 13 (3), 556 (2018).
  36. С. С. Архипова, И. С. Рагинов, А. Р. Мухитов и Ю. А. Челышев, Морфология, 135 (3), 29 (2009).
  37. L. Zhang, W. Yang, H. Xie, et al., ACS Biomater. Sci. Eng., 5 (3), 1426 (2019).
  38. А. Е. Ковражкина, Л. В. Стаховская, О. Д. Разинская и А. В. Сердюк, Журн. неврологии и психиатрии, 5, 143 (2018).

© Российская академия наук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах