Влияние паракринных факторов кондиционированной культуральной среды стволовых клеток на продукцию активных форм кислорода в нейтрофилах крови на фоне ацетаминофен-индуцированной печеночной недостаточности

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Изучено влияние кондиционированной среды, полученной при культивировании мезенхимальных стволовых клеток, на тяжесть системного воспалительного ответа, вызванного введением ацетаминофена, в том числе его отдаленное влияние на ткани печени. Использование фракции кондиционированной среды <30 кДа оказывало максимальное защитное действие. Белки этой фракции снижают выраженность системной воспалительной реакции и степень фиброза ткани печени в отдаленные сроки после введения токсина. При исследовании тканей печени экспериментальных животных выявлено снижение выраженности гранулоцитарной инфильтрации, коррелирующее со степенью некроза печеночной паренхимы (что подтверждается уровнем цитолитических ферментов). Фракция <30 кДа увеличивала спонтанную и уменьшала индуцированную форбол-12-миристат-13-ацетатом внутриклеточную продукцию активных форм кислорода. Результаты исследования показывают достоверное увеличение экспрессии макрофаг-ингибирующего фактора и тиоредоксина по сравнению с контролем на фоне повышенной спонтанной продукции активных форм кислорода в нейтрофилах.

Об авторах

А. А Темнов

Институт биофизики клетки РАН - обособленное подразделение ФИЦ «Пущинский научный центр биологических исследований РАН»;Московский физико-технический институт (государственный университет)

Пущино Московской области, Россия;Долгопрудный Московской области, Россия

А. Н Склифас

Институт биофизики клетки РАН - обособленное подразделение ФИЦ «Пущинский научный центр биологических исследований РАН»

Пущино Московской области, Россия

В. К Жалимов

Институт биофизики клетки РАН - обособленное подразделение ФИЦ «Пущинский научный центр биологических исследований РАН»

Пущино Московской области, Россия

М. Г Шарапов

Институт биофизики клетки РАН - обособленное подразделение ФИЦ «Пущинский научный центр биологических исследований РАН»

Пущино Московской области, Россия

Р. С Фадеев

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Пущино Московской области, 142290, Россия

М. И Кобякова

Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН

Пущино Московской области, 142290, Россия

Н. И Кукушкин

Институт биофизики клетки РАН - обособленное подразделение ФИЦ «Пущинский научный центр биологических исследований РАН»

Email: nikukushkin@mail.ru
Пущино Московской области, Россия

К. А Рогов

НИИ морфологии человека Российского научного центра хирургии имени академика Б.В. Петровского

Москва, Россия

Список литературы

  1. A. M. Larson, Clin. Liver Dis., 11, 525 (2007).
  2. M. R. McGill, M. R. Sharpe, C. D. Williams, et al., J. Clin. Invest., 122, 1574 (2012).
  3. H. Jaeschke, C. D. Williams, A. Ramachandran, et al., Liver Int., 32, 8 (2012).
  4. Y. Ishida, T. Kondo, A. Kimura, et al., Eur. J. Immunol., 36, 1028 (2006).
  5. Z. X. Liu, D. Han, B. Gunawan, et al., Hepatology, 43, 1220 (2006).
  6. P. E. Marques, S. S. Amaral, D. A. Pires, et al., Hepatology, 56, 1971 (2012).
  7. C. Cover, J. Liu, A. Farhood, et al., Toxicol. Appl. Pharmacol., 216, 98 (2006).
  8. H. S. Hou, C. L. Liao, H. K. Sytwu, et al., PLoS One, 7, e44880 (2012).
  9. J. A. Lawson, A. Farhood, R. D. Hopper, et al., Toxicol. Sci., 54, 509 (2000).
  10. C. D. Williams, M. L. Bajt, A. Farhood, et al., Liver Int., 30, 1280 (2010).
  11. C. D. Williams, M. L. Bajt, M. R. Sharpe, et al., Toxicol. Appl. Pharmacol., 275 (2), 122 (2014).
  12. C. D. Williams, A. Farhood, and H. Jaeschke, Toxicol. Appl. Pharmacol., 247, 169 (2010).
  13. J. X. Wang, C. Zhang, L. Fu, et al., Toxicol. Lett., 265, 38 (2017).
  14. W. Yang, Y. Tao, Y. Wu, et al., Nat. Commun., 10 (1), 1076 (2019).
  15. A. Temnov, K. Rogov, V. Zhalimov, et al., Hepat. Med., 11, 89 (2019).
  16. A. A. Temnov, K. A. Rogov, A. N. Sklifas, et al., Mol. Biol. Rep., 46 (3), 3101 (2019).
  17. H. Yagi, A. Soto-Gutierrez, N. Navarro-Alvarez, et al., Mol. Therapy, 18 (10), 1857 (2010).
  18. F. A. von Meijenfeldt, L. C. Burlage, S. Bos, et al., Liver Transpl., 24 (12), 1716 (2018).
  19. T. D. Schmittgen and K. J. Livak, Nat. Protoc., 3 (6), 1101 (2008).
  20. J. Almkvist, C. Dahlgren, H. Leffler, et al., J. Immunol., 168 (8), 4034 (2002).
  21. M. T. Elola, M. E. Chiesa, and N. E. Fink, Comp. Biochem. Physiol. B. Biochem. Mol. Biol., 141 (1), 23 (2005).
  22. J. Liu, M. Jiang, Q. Jin et al., Front. Pharmacol., 12, 723881 (2021).
  23. F. A. von Meijenfeldt, R. T. Stravitz, J. Zhang, et al. Hepatology, 75 (3), 623 (2022).
  24. R. D. Gray, C. D. Lucas, A. MacKellar, et al., J. Inflamm. (Lond.), 10 (1), 12 (2013).
  25. B. Saberi, M. Shinohara, M. D. Ybanez, et al., Am. J. Physiol. Cell Physiol., 295 (1), C50 (2008)
  26. B. Saberi, M. D. Ybanez, H. S. Johnson, et al., Hepatology, 59 (4), 1543 (2014).
  27. B. W. Lee, B. S. Jeon, and B. I. Yoon, J. Appl. Toxicol., 38 (7), 1008 (2018).
  28. T. Shimizu, R. Abe, H. Nakamura, at al., Biochem Biophys Res Commun., 264 (3), 751 (1999).
  29. A. Kudrin and D. Ray, Immunol. Cell Biol., 86 (3), 232 (2008).
  30. H. Lue, R. Kleemann, T. Calandra, et al., Microbes Infect., 4, 449 (2002).
  31. J. Yodoi, H. Nakamura, and H. Masutani, Biol. Chem., 383, 585 2002.
  32. A. Novak, G. D. Carpini, M. L. Ruiz, et al., J. Pharm. Sci., 102 (10), 3830 (2013).

© Российская академия наук, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах