Biophysical Basics of the Use of Isometric Exercises in the Rehabilitation of Patients after Hip Replacements

Cover Page

Cite item

Full Text

Open Access Open Access
Restricted Access Access granted
Restricted Access Subscription Access

Abstract

Currently, isometric exercises are widely used to increase muscle strength and endurance. Isometric exercises are used also in rehabilitation protocols for limited joint mobility after arthroplasty operations. The article reviews the effect of isometric exercises on the morphofunctional characteristics of muscle cells, cytokine secretion by muscle cells, blood circulation and mass transfer in muscle tissue, as well as on bone remodeling and repair. The existing protocols for early rehabilitation of patients after total hip replacement are not optimal; they do not take into account the individual characteristics of patients. To develop effective methods of early rehabilitation of patients after hip replacement, it is necessary to understand the biophysical basis of the effect of isometric exercises on the processes of regeneration of muscle and bone tissues.

About the authors

E. A Maksimova

Institute of Theoretical and Experimental Biophysics, Russian Academy of Sciences

Email: maksimova.elena@inbox.ru
Pushchino, Russia

V. I Shevchenko

Hospital of the Pushchino Scientific Center of the Russian Academy of Sciences

Pushchino, Russia

V. S Akatov

Institute of Theoretical and Experimental Biophysics, Russian Academy of Sciences

Pushchino, Russia

References

  1. Park S., Min S., Park S. H., Yoo J., and Jee Y. S. Influence of isometric exercise combined with electromyostimulation on inflammatory cytokine levels, muscle strength, and knee joint function in elderly women with early knee osteoarthritis. Front. Physiol., 12, 688260 (2021). doi: 10.3389/fphys.2021.688260
  2. Khosrojerdi H., Tajabadi A., Amadani M., Akrami R., and Tadayonfar M. The effect of isometric exercise on pain severity and muscle strength of patients with lower limb fractures: A randomized clinical trial study. Med. Surg. Nurs. J., 7 (1), e68104 (2018). doi: 10.5812/msnj.68104
  3. Ojoawo A. O., Olaogun M. O., and Hassan M. A. Comparative effects of proprioceptive and isometric exercises on pain intensity and difficulty in patients with knee osteoarthritis: A randomised control study. Technol. Health Care, 24 (6), 853–863 (2016). doi: 10.3233/THC-161234
  4. Епифанов В. А. и Епифанов А. В. Лечебная физическая культура: учебное пособие (ГЭОТАР-Медиа, М., 2020). DOI: 1033029/9704-5576-0-2020-PHY-1-704
  5. Клинические рекомендации «Коксартроз» (утв. Минздравом России) (ЦЕНТРМАГ, М., 2024).
  6. Физическая и реабилитационная медицина: национальное руководство, под ред. Г. Н. Пономаренко ГЭОТАР-Медиа, М., 2020).
  7. Климовицкий В. Г., Климовицкий Р. В., Тяжелов А. А. и Гончарова Л. Е. Особенности работы мышц тазового пояса до и после эндопротезирования тазобедренного сустава. Обзор литературы. Травма, 2 (2019). URL: https://cyberleninka.ru/article/n/osobennosti-raboty-myshts-tazovogo-poyasa-doi-posle-endoprotezirovaniya-tazobedrennogo-sustavaobzor-literatury (дата обращения: 13.11.2024).
  8. Mikkelsen L. R., Mechlenburg I., Søballe K., Jørgensen L. B., Mikkelsen S., Bandholm T., and Petersen A. K. Effect of early supervised progressive resistance training compared to unsupervised home-based exercise after fasttrack total hip replacement applied to patients with preoperative functional limitations. A single-blinded randomised controlled trial. Osteoarthritis Cartilage, 22 (12), 2051–2058 (2014). doi: 10.1016/j.joca.2014.09.025
  9. Minns Lowe C. J., Barker K. L., Dewey M. E., and Sackley C. M. Effectiveness of physiotherapy exercise following hip arthroplasty for osteoarthritis: a systematic review of clinical trials. BMC Musculoskelet. Disord., 10, 98 (2009). doi: 10.1186/1471-2474-10-98
  10. Jensen C., Aagaard P., and Overgaard S. Recovery in mechanical muscle strength following resurfacing vs standard total hip arthroplasty e a randomised clinical trial. Osteoarthritis Cartilage, 19 (9), 1108–1116 (2011). doi: 10.1016/j.joca.2011.06.011
  11. Vissers M. M., Bussmann J. B., Verhaar J. A., Arends L. R., Furlan A. D., and Reijman M. Recovery of physical functioning after total hip arthroplasty: systematic review and meta-analysis of the literature. Phys. Ther., 91 (5), 615–629 (2011). doi: 10.2522/ptj.20100201
  12. Judd D. L., Dennis D. A., Thomas A. C., Wolfe P., Dayton M. R., and Stevens-Lapsley J. E. Muscle strength and functional recovery during the first year after THA. Clin. Orthop. Relat Res., 472 (2), 654–664 (2014). doi: 10.1007/s11999-013-3136-y
  13. Suetta C., Magnusson S. P., Rosted A., Aagaard P., Jakobsen A. K., Larsen L. H., Duus B., and Kjaer M. Resistance training in the early postoperative phase reduces hospitalization and leads to muscle hypertrophy in elderly hip surgery patients—a controlled, randomized study. J. Am. Geriatr. Soc., 52 (12), 2016–2022 (2004). doi: 10.1111/j.1532-5415.2004.52557.x
  14. Wigerstad-Lossing I., Grimby G., Jonsson T., Morelli B., Peterson L., and Renström P. Effects of electrical muscle stimulation combined with voluntary contractions after knee ligament surgery. Med. Sci. Sports Exerc., 20 (1), 93–98 (1988). doi: 10.1249/00005768-198802000-00014
  15. Вакуленко С. В. Эффективность применения упражнений изометрического характера у пациентов с дорсопатиями на этапе коррекции двигательного стереотипа: Дис. … канд. мед. наук (Национальный медицинский исследовательский центр реабилитации и курортологии, М., 2021).
  16. Тортора Дж. и Дерриксон Б. Анатомия, физиология: фундаментальные основы (МЕДПРОФ, М., 2017).
  17. Lac G. and Cavalié H. A rat model of progressive isometric strength training. Arch. Physiol. Biochem., 107 (2), 144–151 (1999). doi: 10.1076/apab.107.2.144.4337
  18. Hawley J. A., Hargreaves M., Joyner M. J., and Zierath J. R. Integrative biology of exercise. Cell, 159 (4), 738–749 (2014). doi: 10.1016/j.cell.2014.10.029
  19. Chin E. R. Intracellular Ca2+ signaling in skeletal muscle: decoding a complex message. Exerc. Sport Sci. Rev., 38 (2), 76–85 (2010). doi: 10.1097/JES.0b013e3181d495d2
  20. Chin E. R. Role of Ca2+/calmodulin-dependent kinases in skeletal muscle plasticity. J. Appl. Physiol., 99 (2), 414– 423 (2005). doi: 10.1152/japplphysiol.00015.2005
  21. Egan B. and Zierath J. R. Exercise metabolism and the molecular regulation of skeletal muscle adaptation. Cell Metab., 17 (2), 162–184 (2013). doi: 10.1016/j.cmet.2012.12.012
  22. Booth F. Effects of endurance exercise on cytochrome C turnover in skeletal muscle. Ann. N. Y. Acad. Sci., 301, 431–439 (1977). doi: 10.1111/j.1749-6632.1977.tb38219.x
  23. Hood D. A. Invited review: Contractile activity-induced mitochondrial biogenesis in skeletal muscle. J. Appl.Physiol., 90 (3), 1137–1157 (2001). doi: 10.1152/jappl.2001.90.3.1137
  24. Grevendonk L., Connell N. J., McCrum C., Fealy C. E., Bilet L., Bruls Y. M. H., Mevenkamp J., Schrauwen-Hinderling V. B., Jörgensen J. A., Moonen-Kornips E., Schaart G., Havekes B., de Vogel-van den Bosch J., Bragt M. C. E., Meijer K., Schrauwen P., and Hoeks J. Impact of aging and exercise on skeletal muscle mitochondrial capacity, energy metabolism, and physical function. Nat. Commun., 12 (1), 4773 (2021). doi: 10.1038/s41467-021-24956-2
  25. Кироненко Т. А. Продукция миокинов и концентрация одновалентных катионов в мышечной ткани мышей при физических нагрузках: Дис. … канд. биол. наук (Томский гос. ун-т, Томск, 2021).
  26. Kironenko T. A., Milovanova K. G., Zakharova A. N., Sidorenko S. V., Klimanova E. A., Dyakova E. Y., Orlova A. A., Negodenko E. S., Kalinnikova Y. G., Orlov S. N., and Kapilevich L. V. Effect of dynamic and static load on the concentration of myokines in the blood plasma and content of sodium and potassium in mouse skeletal muscles. Biochemistry (Moscow), 86 (3), 370–381 (2021). doi: 10.1134/S0006297921030123
  27. Ostrowski K., Ronde T., Asp S., Schjerling P., and Pedersen B. K. Pro- and anti-inflammatory cytokine balance in strenuous exercise in humans . J. Physiol., 515 (1), 287–291 (1999). doi: 10.1111/j.1469-7793.1999.287ad.x
  28. Pedersen B. K. and Febbraio M. A. Muscle as an endocrine organ: focus on muscle-derived interleukin-6. Physiol. Rev., 88 (4), 1379–1406 (2008). doi: 10.1152/physrev.90100.2007
  29. Шенкман Б. С., Ломоносова Ю. Н. и Немировская Т. Л. Нейрональная NO-синтаза – молекулярный гарант стабильности мышечного волокна: NOзависимые сигнальные пути в активной и разгруженной мышце. Успехи физиол. наук, 45 (2), 37–48 (2014).
  30. Snenkman B. S., Nemirovskaya T. L., and Lomonosova Y. N. No-dependent signaling pathways in unloaded skeletal muscle. Front. Physiol., 6, 298 (2015). doi: 10.3389/fphys.2015.00298
  31. Ивашкин В. Т. и Драпкина О. М. Клиническое значение оксида азота и белков теплового шока (ГЭОТАРМедиа, М., 2011).
  32. Louis E., Raue U., Yang Y., Jemiolo B., and Trappe S. Time course of proteolytic, cytokine, and myostatin gene expression after acute exercise in human skeletal muscle. J. Appl. Physiol., 103 (5), 1744–1751 (2007). doi: 10.1152/japplphysiol.00679.2007
  33. Steensberg A., van Hall G., Osada T., Sacchetti M., Saltin B., and Pedersen K. B. Production of interleukin-6 in contracting human skeletal muscles can account for the exercise-induced increase in plasma interleukin-6. J. Physiol., 529 (1), 237–242 (2000). doi: 10.1111/j.1469-7793.2000.00237.x
  34. Lavin K. M., Coen P. M., Baptista L. C., Bell M. B., Drummer D., Harper S. A., Lixandrão M. E., McAdam J. S., O'Bryan S. M., Ramos S., Roberts L. M., Vega R. B., Goodpaster B. H., Bamman M. M., and Buford T. W. State of knowledge on molecular adaptations to exercise in humans: historical perspectives and future directions. Compr. Physiol., 12 (2), 3193–3279 (2022). doi: 10.1002/cphy.c200033
  35. Pirkmajer S., Bezjak K., Matkovic U., Dolinar K., Jiang L. Q., Miš K., Gros K., Milovanova K., Pirkmajer K. P., Marš T., Kapilevich L., and Chibalin A. V. Ouabain suppresses IL-6/STAT3 signaling and promotes cytokine secretion in cultured skeletal muscle cells. Front. Physiol., 11, 566584 (2020). doi: 10.3389/fphys.2020.566584
  36. Park Y. J., Yoo S. A., Kim M., and Kim W. U. The role of calcium-calcineurin-NFAT signaling pathway in health and autoimmune diseases. Front. Immunol., 11, 195 (2020). doi: 10.3389/fimmu.2020.00195
  37. Henriksen T., Green C., and Pedersen B. K. Myokines in myogenesis and health. Recent Pat. Biotechnol., 6 (3), 167–171 (2012). doi: 10.2174/1872208311206030167
  38. Qi C., Song X., Wang H., Yan Y., and Liu B. The role of exercise-induced myokines in promoting angiogenesis. Front. Physiol., 13, 981577 (2022). doi: 10.3389/fphys.2022.981577
  39. Ziche M. and Morbidelli L. Nitric oxide and angiogenesis. J. Neurooncol., 50 (1–2), 139–148 (2000). doi: 10.1023/a:1006431309841
  40. Huang Y. H., Yang H. Y., Huang S. W., Ou G., Hsu Y. F., and Hsu M. J. Interleukin-6 induces vascular endothelial growth factor-C expression via Src-FAK-STAT3 signaling in lymphatic endothelial cells. PLoS One, 11 (7), e0158839 (2016). doi: 10.1371/journal.pone.0158839
  41. Gavin T. P., Robinson C. B., Yeager R. C., England J. A., Nifong L. W., and Hickner R. C. Angiogenic growth factor response to acute systemic exercise in human skeletal muscle. J. Appl. Physiol., 96 (1), 19–24 (2004). doi: 10.1152/japplphysiol.00748.2003
  42. Yazdani F., Shahidi F., and Karimi P. The effect of 8 weeks of high-intensity interval training and moderateintensity continuous training on cardiac angiogenesis factor in diabetic male rats. J. Physiol. Biochem., 76 (2), 291–299 (2020). doi: 10.1007/s13105-020-00733-5
  43. Dyakova E. Y., Kapilevich L. V., Shylko V. G., Popov S. V., and Anfinogenova Y. Physical exercise associated with NO production: signaling pathways and significance in health and disease. Front. Cell Dev. Biol., 3, 19 (2015). doi: 10.3389/fcell.2015.00019
  44. Wang Q., Pei S., Lu X. L., Wang L., and Wu Q. On the characterization of interstitial fluid flow in the skeletal muscle endomysium. J. Mech. Behav. Biomed. Mater., 102, 103504 (2020). doi: 10.1016/j.jmbbm.2019.103504
  45. Holmäng A., Mimura K., and Lönnroth P. Involuntary leg movements affect interstitial nutrient gradients and blood flow in rat skeletal muscle. J. Appl. Physiol., 92 (3), 982–988 (2002). doi: 10.1152/japplphysiol.01194.2000
  46. Yousefi M. R., Ahmadi N., Abbaszadeh R., Kheybari K., Valizadeh A., and Nasiri M. The effect of isometric training on prevention of density reduction in injured limbs during a period of immobilization. Aust. J. Basic Appl. Sci., 5 (12), 981–985 (2011).
  47. Taufik N. H., Tulaar A. B. M., Moesbar N., and Ganie R. A. The effect of isometric exercise plantar flexor on osteoblast activity measured by bone specific alkaline phosphatase and callus formation in a patient post open reduction internal fixation with non-articular tibia fracture. Open Access Maced. J. Med. Sci., 7 (20), 3409–3415 (2019). doi: 10.3889/oamjms.2019.435
  48. Cavalié H., Horcajada-Molteni M. N., Lebecque P., Davicco M. J., Coxam V., Lac G., and Barlet J. P. Progressive isometric force training and bone mass in rats. J. Musculoskelet. Neuron. Interact., 3 (1), 47–52 (2003).
  49. Boerckel J. D., Uhrig B. A., Willett N. J., Huebsch N., and Guldberg R. E. Mechanical regulation of vascular growth and tissue regeneration in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 108 (37), e674–e680 (2011). doi: 10.1073/pnas.1107019108
  50. Teng S. and Herring S. W. Compressive loading on bone surfaces from muscular contraction: an in vivo study in the miniature pig, Sus scrofa. J. Morphol., 238 (1), 71–80 (1998). doi: 10.1002/(SICI)1097-4687(199810)238:171::AIDJMOR63.0.CO;2-Q
  51. Wang L., You X., Zhang L., Zhang C., and Zou W. Mechanical regulation of bone remodeling. Bone Res., 10 (1), 16 (2022). doi: 10.1038/s41413-022-00190-4
  52. Weinbaum S., Cowin S. C., and Zeng Y. A model for the excitation of osteocytes by mechanical loading-induced bone fluid shear stresses. J. Biomech., 27 (3), 339–360 (1994). doi: 10.1016/0021-9290(94)90010-8
  53. Kwon R. Y., Meays D. R., Tang W. J., and Frangos J. A. Microfluidic enhancement of intramedullary pressure increases interstitial fluid flow and inhibits bone loss in hindlimb suspended mice. J. Bone Miner. Res., 25 (8), 1798–1807 (2010). doi: 10.1002/jbmr.74
  54. Ma C., Geng B., Zhang X., Li R., Yang X., and Xia Y. Fluid shear stress suppresses osteoclast differentiation in RAW264.7 cells through extracellular signal-regulated kinase 5 (ERK5) signaling pathway. Med. Sci. Monit., 2020 (26), e918370 (2020). doi: 10.12659/MSM.918370
  55. McAllister T. N., Du T., and Frangos J. A. Fluid shear stress stimulates prostaglandin and nitric oxide release in bone marrow-derived preosteoclast-like cells. Biochem. Biophys. Res. Commun., 270 (2), 643–648 (2000). doi: 10.1006/bbrc.2000.2467
  56. Valles G., Bensiamar F., Maestro-Paramio L., GarciaRey E., Vilaboa N., and Saldana L. Influence of inflammatory conditions provided by macrophages on osteogenic ability of mesenchymal stem cells. Stem Cell Res. Ther., 11 (1), 57 (2020). doi: 10.1186/s13287-020-1578-1
  57. Nichols R. A., Niagro F. D., Borke J. L., and Cuenin M. F. Mechanical stretching of mouse calvarial osteoblasts in vitro models changes in MMP-2 and MMP-9 expression at the boneimplant interface. J. Oral Implantol., 42 (2), 138–144 (2015). doi: 10.1563/aaid-joi-D-14-00199
  58. Tong X., Chen X., Zhang Sh., Huang Mei, Shen X., Xu J., and Zou J. The effect of exercise on the prevention of osteoporosis and bone angiogenesis. BioMed. Res. Int., 2019, 8171897 (2019). doi: 10.1155/2019/8171897
  59. Новикова С. Л. Евразийский патент на изобретение № 010788 В1 (2008).
  60. Зайцев Н. М., Яруллина Т. С., Авдонченко Т. С., Яруллин И. М., Пронских А. А., Касатова А. И., Касатов Д. А. и Рыжих Е. Е. Российский патент на изобретение RU 2725245, Бюл. 19 (2020).
  61. Лапшин В. П., Чукина Е. А., Клюквин И. Ю., Антонов В. В., Ларионов К. С. и Боголюбский Ю. А. Лечебная гимнастика в восстановительном лечении больных пожилого и старческого возраста после эндопротезирования тазобедренного сустава. Вопросы курортологии и физиотерапии, 4, 37 (2002).
  62. Konnyu K. J., Pinto D., Cao W., Aaron R. K., Panagiotou O. A., Bhuma M. R., Adam G. P., Balk E. M., and Thoma L. M. Rehabilitation for total hip arthroplasty: A systematic review. Am. J. Phys. Med. Rehabil., 102 (1), 11–18 (2023). doi: 10.1097/PHM.0000000000002007
  63. Okoro T., Lemmey A. B., Maddison P., and Andrew J. An appraisal of rehabilitation regimes used for improving functional outcome after total hip replacement surgery. BMC Sports Sci. Med. Rehabil., 4, 5 (2012). doi: 10.1186/1758-2555-4-5
  64. Mikkelsen L. R., Mikkelsen S. S., and Christensen F. B. Early, intensified home-based exercise after total hip replacement—a pilot study. Physiother. Res. Int., 17 (4), 214–226 (2012). doi: 10.1002/pri.1523
  65. Madara K. C., Marmon A., Aljehani M., Hunter-Giordano A., Zeni J. Jr., and Raisis L. Progressive rehabilitation after total hip arthroplasty: a pilot and feasibility study. Int. J. Sports Phys. Ther., 14 (4), 564–581 (2019). doi: 10.26603/ijspt20190564
  66. Di Monaco M. and Castiglioni C. Which type of exercise therapy is effective after hip arthroplasty? A systematic review of randomized controlled trials. Eur. J. Phys. Rehabil. Med., 49 (6), 893–907 (2013).
  67. Колесников С. В., Дьячкова Г. В. и Комарова Э. С. Применение различных реабилитационных мероприятий в восстановительном лечении больных с имплантатом тазобедренного сустава (собственные данные и обзор литературы). Гений ортопедии, 26 (2), 254–260 (2020). doi: 10.18019/1028-4427-2020-26-2-254-260
  68. Di Monaco M., Vallero F., Tappero R., and Cavanna A. Rehabilitation after total hip arthroplasty: a systematic review of controlled trials on physical exercise programs. Eur. J. Phys. Rehabil. Med., 45 (3), 303–317 (2009).
  69. Назаренко Г. И., Героева И. Б. и Яшина Л. П. Современные взгляды на реабилитацию пациентов после эндопротезирования крупных суставов. Лечебная физкультура и спортивная медицина, 11 (107), 23–29 (2012).
  70. Eisermann U., Haase I., and Kladny B. Computer-aided multimedia training in orthopedic rehabilitation. A m. J. Phys. Med. Rehabil., 83 (9), 670–680 (2004). doi: 10.1097/01.phm.0000137307.44173.5d
  71. Lowe C. J., Davies L., Sackley C. M., and Barker K. L. Effectiveness of land-based physiotherapy exercise following hospital discharge following hip arthroplasty for osteoarthritis: an updated systematic review. Physiotherapy, 101 (3), 252–265 (2015). doi: 10.1016/j.physio.2014.12.003
  72. Pohl T., Brauner T., Wearing S., Stamer K., and Horstmann T. Effects of sensorimotor training volume on recovery of sensorimotor function in patients following lower limb arthroplasty. BMC Musculoskelet. Disord., 16, 195 (2015). doi: 10.1186/s12891-015-0644-9

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2025 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».