Изменение антиоксидантной системы прорастающих семян и проростков гороха при использовании мицелярно-субстратного экстракта вешенки

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Изучили реакции антиоксидантной системы (АОС) суточных прорастающих семян и 8-суточных проростков гороха, культивированных с использованием 10%- и 100%-го водного экстракта из отработанного соломенного субстрата вешенки (далее – экстракт). За 100%-й экстракт принимали маточный раствор после его приготовления, а 10%-й получали путем разбавления маточного. Растения выращивали в олиготрофных гидропонных условиях и в эвтрофных условиях на серой лесной почве. В качестве основных показателей реакции АОС исследовали активность супероксиддисмутазы (СОД), каталазы (КАТ), пероксидазы (ПО), экспрессию генов SOD-1, CAT-1, POD, содержание низкомолекулярных антиоксидантов (НМАО): аскорбата, филлохинонов и свободного пролина. Показано ингибирующие действие 10%- и 100%-го экстрактов на активность СОД и КАТ, но не на активность ПО в суточных прорастающих семенах. При этом содержание транскриптов иРНК генов SOD-1 и POD лишь незначительно снижалось в семенах, культивируемых на 100%-ном экстракте, в остальных опытных группах уровень экспрессии генов не отличался от контроля. Содержание аскорбата во всех опытных группах не отличалось от контроля, а филлохинонов и свободного пролина было меньше, чем в контроле. В листьях 8-суточных проростков, культивированных в гидропонной среде, во всех опытных группах активность ферментов АОС, экспрессия кодирующих их генов и содержание филлохинонов, свободного пролина не отличались от контроля. При этом содержание аскорбата было больше. У растений, культивируемых в почве с использованием 10%-го экстракта, все показатели АОС не отличались от контроля. У растений, выращенных с использованием 100%-го экстракта, активность СОД, уровень экспрессии гена SOD-1, содержание аскорбата и свободного пролина были больше, а остальные показатели не отличались от контроля. Таким образом, экстракт на начальных этапах прорастания ингибировал АОС гороха с последующим восстановлением (в олиготрофных условиях) и усилением (в эвтрофных условиях культивирования) ее работы.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

С. С. Тарасов

Нижегородский государственный агротехнологический университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: tarasov_ss@mail.ru
Россия, 603022 Нижний Новгород, просп. Гагарина, 97

Е. В. Михалёв

Нижегородский государственный агротехнологический университет

Email: tarasov_ss@mail.ru
Россия, 603022 Нижний Новгород, просп. Гагарина, 97

Е. К. Крутова

Нижегородский государственный агротехнологический университет

Email: tarasov_ss@mail.ru
Россия, 603022 Нижний Новгород, просп. Гагарина, 97

Список литературы

  1. Upadhyaya D.C., Bagri D.S., Upadhyaya C.P., Kumar A., Thiruvengadam M., Jain S.K. Genetic engineering of potato (Solanum tuberosum L.) for enhanced α-tocopherols and abiotic stress tolerance // Physiol. Plant. 2021. V. 173. № 1. P. 116–128. https://doi.org/10.1111/ppl.13252
  2. Ghiasi Noei F., Imami M., Didaran F., Ghanbari M.A., Zamani E., Ebrahimi A., Aliniaeifard S., Farzaneh M., Javan-Nikkhah M., Feechan A., Mirzadi Gohari A. Stb6 mediates stomatal immunity, photosynthetic functionality, and the antioxidant system during the Zymoseptoria tritici-wheat interaction // Front Plant Sci. 2022. № 13. Р. 1004691. https://doi.org/10.3389/fpls.2022.1004691
  3. Pandey V.P., Awasthi M., Singh S., Tiwari S., Dwivedi U.N. A comprehensive review on function and application of plant peroxidases // Biochem. Anal. Biochem. 2017. V. 6. P. 1–16. http://dx.doi.org/10.4172/2161-1009.1000308
  4. Lubega J., Umbreen S., Loake G.J. Recent advances in the regulation of plant immunity by S-nitrosylation // J. Exp. Bot. 2021. V. 72. № 3. P. 864–872. https://doi.org/10.1093/jxb/eraa454
  5. Hasanuzzaman M., Bhuyan M.H.M.B., Anee T.I., Parvin K., Nahar K., Mahmud J.A., Fujita M. Regulation of ascorbate-glutathione pathway in mitigating oxidative damage in plants under abiotic stress // Antioxidants (Basel). 2019. V. 8. № 9. P. 384. https://doi.org/10.3390/antiox8090384
  6. Bobrovskikh A., Zubairova U., Kolodkin A., Doroshkov A. Subcellular compartmentalization of the plant antioxidant system: an integrated overview // Peer J. 2020. V. 8. e9451. https://doi.org/10.7717/peerj.9451
  7. Mittler R., Vanderauwera S., Gollery M., Van Breusegem F. Reactive oxygen gene network of plants // Trends Plant Sci. 2004. V. 9. № 10. P. 490–498. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2004.08.009
  8. Winkel-Shirley B. Flavonoid biosynthesis. A colorful model for genetics, biochemistry, cell biology, and biotechnology // Plant Physiol. 2001. V. 126. № 2. P. 485–493. https://doi.org/10.1104/pp.126.2.485
  9. Dixon D.P., Lapthorn A., Edwards R. Plant glutathione transferases // Genome Biol. 2002. V. 3(3): REVIEWS3004. https://doi.org/10.1186/gb-2002-3-3-reviews3004
  10. Cabassa-Hourton C., Schertl P., Bordenave-Jacquemin M., Saadallah K., Guivarc’h A., Lebreton S., Planchais S., Klodmann J., Eubel H., Crilat E., Lefebvre-De Vos D., Ghelis T., Richard L., Abdelly C., Carol P., Braun H.P., Savouré A. Proteomic and functional analysis of proline dehydrogenase 1 link proline catabolism to mitochondrial electron transport in Arabidopsis thaliana // Biochem. J. 2016. V. 473. № 17. Р. 2623–2634. https://doi.org/10.1042/bcj20160314
  11. Fritsche S., Wang X., Jung C. Recent advances in our understanding of tocopherol biosynthesis in plants: An Overview of key genes, functions, and breeding of vitamin E improved crops // Antioxidants (Basel). 2017. V. 6. № 4. P. 99. https://doi.org/10.3390/antiox6040099
  12. Launay A., Cabassa-Hourton C., Eubel H., Maldiney R., Guivarc’h A., Crilat E., Planchais S., Lacoste J., Bordenave-Jacquemin M., Clément G., Richard L., Carol P., Braun H.P., Lebreton S., Savouré A. Proline oxidation fuels mitochondrial respiration during dark-induced leaf senescence in Arabidopsis thaliana // J. Exp. Bot. 2019 V. 70. № 21. P. 6203–6214. https://doi.org/10.1093/jxb/erz351
  13. Cao W., Wang P., Yang L., Fang Z., Zhang Y., Zhuang M., Lv H., Wang Y., Ji J. Carotenoid biosynthetic genes in cabbage: Genome-wide identification, evolution, and expression analysis // Genes (Basel). 2021b. V. 12. № 12. P. 2027. https://doi.org/10.3390/genes12122027
  14. Sun Z., Li S., Chen W., Zhang J., Zhang L., Sun W., Wang Z. Plant dehydrins: expression, regulatory networks, and protective roles in plants challenged by abiotic stress // Inter. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. № 23. P. 12619. https://doi.org/10.3390/ijms222312619
  15. Нгуен М.Л., Монахос Г.Ф., Комахин Р.А., Монахос С.Г. Новый локус устойчивости к киле в хромосоме A05 капусты пекинской (Brassica rapa L.) // Генетика. 2018. Т. 54. № 3. С. 306–315. doi: 10.7868/S0016675818030037
  16. Saed-Moucheshi A., Sohrabi F., Fasihfar E., Baniasadi F., Riasat M., Mozafari A.A. Superoxide dismutase (SOD) as a selection criterion for triticale grain yield under drought stress: a comprehensive study on genomics and expression profiling, bioinformatics, heritability, and phenotypic variability // BMC Plant Biol. 2021. V. 21. № 1. P. 148. https://doi.org/10.1186/s12870-021-02919-5
  17. Широких И.Г., Бакулина А.В., Огородникова С.Ю., Баранова Е.Н., Лундовских И.А., Гулевич А.А. Влияние встройки Fe-СОД-1 гена на рост, перекисный гомеостаз и состояние пигментного комплекса трансгенных растений картофеля // Агрохимия. 2014. № 8. С. 72–78.
  18. Ван В., Ся М.К., Чэнь Д., Юань Р., Дэн Ф.Н., Шэнь Ф.Ф. Особенности генной экспрессии и механизмы регуляции супероксиддисмутазы, ее физиологическая роль в растениях при стрессе (обзор) // Биохимия. 2016. Т. 81. № 5. С. 625–643.
  19. Mittler R., Zilinskas B.A. Regulation of pea cytosolic ascorbate peroxidase and other antioxidant enzymes during the progression of drought stress and following recovery from drought // Plant J. 1994. V. 5 № 3. P. 397–405. https://doi.org/10.1111/j.136-5-313x.1994.00397.x
  20. Sunkar R., Kapoor A., Zhu J.K. Posttranscriptional induction of two Cu/Zn superoxide dismutase genes in Arabidopsis is mediated by downregulation of miR398 and important for oxidative stress tolerance // Plant Cell. 2006. V. 18. № 8. P. 2051–2065. https://doi.org/10.1105/tpc.106.041673
  21. Suzuki T., Ikeda S., Kasai A., Taneda A., Fujibayashi M., Sugawara K., Okuta M., Maeda H., Sano T. RNAi-mediated down-regulation of dicer-like 2 and 4 changes the response of ‘Moneymaker’ tomato to potato spindle tuber viroid infection from tolerance to lethal systemic necrosis, accompanied by up-regulation of miR398, 398a-3p and production of excessive amount of reactive oxygen species // Viruses. 2019. V. 11. № 4. P. 344. http://dx.doi.org/10.3390/v11040344
  22. Ni W., Trelease R.N. Post-transcriptional regulation of catalase isozyme expression in cotton seeds // Plant Cell. 1991. V. 3. № 7. P. 737–744. https://doi.org/10.1105/tpc.3.7.737
  23. Wang W., Cheng Y., Chen D., Liu D., Hu M., Dong J., Zhang X., Song L., Shen F. The Catalase gene family in cotton: Genome-wide characterization and bioinformatics analysis // Cells. 2019. V. 8. № 2. P. 86. https://doi.org/10.3390/cells8020086
  24. Raza A., Su W., Gao A., Mehmood S.S., Hussain M.A., Nie W., Lv Y., Zou X., Zhang X. Catalase (CAT) gene family in rapeseed (Brassica napus L.): Genome-wide analysis, identification, and expression pattern in response to multiple hormones and abiotic stress conditions // Inter. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. № 8. P. 4281. https://doi.org/10.3390/ijms22084281
  25. Zhang Y., Zheng L., Yun L., Ji L., Li G., Ji M., Shi Y., Zheng X. Catalase (CAT) gene family in wheat (Triticum aestivum L.): Evolution, expression pattern and function analysis // Inter. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. № 1. P. 542. http://dx.doi.org/10.3390/ijms23010542
  26. Navabpour S., Yamchi A., Bagherikia S., Kafi H. Lead-induced oxidative stress and role of antioxidant defense in wheat (Triticum aestivum L.) // Physiol. Mol. Biol. Plants. 2020. V. 26. № 4. P. 793–802. https://doi.org/10.1007/s12298-020-00777-3
  27. Spicher L., Glauser G., Kessler F. Lipid antioxidant and galactolipid remodeling under temperature stress in tomato plants // Front Plant Sci. 2016. V. 7. P. 167. http://dx.doi.org/10.3389/fpls.2016.00167
  28. Hao Y., Hao M., Cui Y., Kong L., Wang H. Genome-wide survey of the dehydrin genes in bread wheat (Triticum aestivum L.) and its relatives: identification, evolution and expression profiling under various abiotic stresses // BMC Genomics. 2022. V. 23. № 1. P. 73. https://doi.org/10.1186/s12864-022-08317-x
  29. Ключникова Е.О., Аллагулова Ч.Р., Авальбаев А.М., Гималов Ф.Р., Шакирова Ф.М. Гормональная регуляция транскрипции TADHN гена дегидрина в растениях пшеницы // Вестн. Башкир. ун-та. 2012. Т. 17. № 3. С. 1272–1277.
  30. Kumar R.R., Sharma S.K., Goswami S., Verma P., Singh K., Dixit N., Pathak H., Viswanathan C., Rai R.D. Salicylic acid alleviates the heat stress-induced oxidative damage of starch biosynthesis pathway by modulating the expression of heat-stable genes and proteins in wheat (Triticum aestivum) // Acta Physiol. Plant. 2015. V. 37. P. 143. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-015-1899-3
  31. Таланова В.В., Титов А.Ф., Репкина Н.С., Игнатенко А.А. Влияние метилжасмоната на экспрессию генов WCS и активность антиоксидантных ферментов при холодовой адаптации пшеницы // Докл. РАН. 2018. Т. 482. № 1. С. 101–104.
  32. Campobenedetto C., Grange E., Mannino G., van Arkel J., Beekwilder J., Karlova R., Garabello C., Contartese V., Bertea C.M. A Biostimulant seed treatment improved heat stress tolerance during cucumber seed germination by acting on the antioxidant system and glyoxylate cycle // Front Plant Sci. 2020. V. 17. № 11. P. 836. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.00836
  33. Тарасов С.С., Михалев Е.В., Крутова Е.К., Речкин А.В. Регуляторы роста и развития растений: классификация, природа и механизм действия // Агрохимия. 2023. № 9. С. 65–80. 10.31857/S0002188123090120' target='_blank'>https://doi: 10.31857/S0002188123090120
  34. Namdeo A.G. Plant cell elicitation for production of secondary metabolites: a review // Pharmacogn. Rev. 2007. V. 1. № 1. P. 69–79.
  35. Тарасов С.С., Михалев Е.В., Крутова Е.К., Шестеркина И.А. Ростовые показатели и метаболизм прорастающих семян пшеницы (Triticum aestivum L.) в зависимости от дозы экстракта из отработанного соломенного субстрата вешенки (Pleurotus ostreatus) // Агрохимия. 2022. № 6. С. 51–60. doi: 10.31857/S0002188122060102
  36. Polesskaya O.G., Kashirina E.I., Alekhina N.D. Changes in the activity of antioxidant enzymes in wheat leaves and roots as a function of nitrogen source and supply // Rus. J. Plant Physiol. 2004. V. 51. № 5. P. 615–620. 10.1023/B:RUPP.0000040746.66725.77' target='_blank'>https://doi: 10.1023/B:RUPP.0000040746.66725.77
  37. Patterson B.D., Payne L.A., Chen Y.Z., Graham D. An inhibitor of catalase induced by cold in chilling-sensitive plants // Plant Physiol. 1984. V. 76. № 4. P. 1014–1018. https://DOI.org/10.1104/pp.76.4.1014
  38. Методы биохимического исследования растений / Под ред. А.И. Ермакова. Изд. 3-е, перераб. и доп. Л.: Агропромиздат, 1987. 432 с.
  39. Tarasov S.S., Krutova E.K. Oxidative homeostasis in germinating pea seeds (Pisum sativum L.) depending on ultrasonic exposure duration // Biophysics. 2023. V. 68. P. 435–442. https://doi.org/10.1134/S0006350923030211
  40. Bates L.S., Waldeen R.P., Teare I.D. Rapid determination of free proline for water stress studies // Plant Soil. 1973. V. 39. № 1. P. 205–207.
  41. Калинкина Л.Г., Назаренко Л.В., Гордеева Е.Е. Модифицированный метод выделения свободных аминокислот для определения на аминокислотном анализаторе // Физиология растений. 1990. Т. 37. С. 617–621.
  42. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1999. 459 с.
  43. Guo J., Cheng Y. Advances in fungal elicitor – triggered plant immunity // Inter. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. № 19. P. 12003. 10.3390/ijms231912003' target='_blank'>https://doi: 10.3390/ijms231912003
  44. Abdul Malik N.A., Kumar I.S., Nadarajah K. Elicitor and receptor molecules: Orchestrators of plant defense and immunity // Intr. J. Mol. Sci. 2020. V. 21. № 3. P. 963. https://doi.org/10.3390/ijms21030963
  45. Hasanuzzaman M., Bhuyan M.H.M.B., Zulfiqar F., Raza A., Mohsin S.M., Mahmud J.A., Fujita M., Fotopoulos V. Reactive oxygen species and antioxidant defense in plants under abiotic stress: Revisiting the crucial role of a universal defense regulator // Antioxidants (Basel). 2020. V. 9. № 8. P. 681. 10.3390/antiox9080681' target='_blank'>https://doi: 10.3390/antiox9080681
  46. Тарчевский И.А. Сигнальные системы клеток растений. М.: Наука, 2002. 294 с.
  47. Bartels S., Boller T. Quo vadis, Pep? Plant elicitor peptides at the crossroads of immunity, stress, and development // J. Exp. Bot. 2015. V. 66. № 17. P. 5183–5193. 10.1093/jxb/erv180' target='_blank'>https://doi: 10.1093/jxb/erv180
  48. Ramirez-Estrada K., Vidal-Limon H., Hidalgo D., Moyano E., Golenioswki M., Cusidó R.M., Palazon J. Elicitation, an effective strategy for the biotechnological production of bioactive high-added value compounds in plant cell factories // Molecules. 2016. V. 21. P. 182–206. 10.3390/molecules21020182' target='_blank'>https://doi: 10.3390/molecules21020182
  49. Fang Y., Gu Y. Regulation of plant immunity by nuclear membrane-associated mechanisms // Front Immunol. 2021. V. 12. P. 771065. 10.3389/fimmu.2021.771065' target='_blank'>https://doi: 10.3389/fimmu.2021.771065
  50. Goncharuk E.A., Saibel O.L., Zaitsev G.P., Zagoskina N.V. The Elicitor effect of yeast extract on the accumulation of phenolic compounds in Linum grandiflorum cells cultured in vitro and their antiradical activity // Biol. Bul. 2022. V. 49. № 6. P. 620–628 http://dx.doi.org/10.1134/S1062359022060061
  51. Li Z., Zhang Y., Peng D., Wang X., Peng Y., He X., Zhang X., Ma X., Huang L., Yan Y. Corrigendum: Polyamine regulates tolerance to water stress in leaves of white clover associated with antioxidant defense and dehydrin genes via involvement in calcium messenger system and hydrogen peroxide signaling // Front Physiol. 2016. V. 7. P. 52. 10.3389/fphys.2016.00052' target='_blank'>https://doi: 10.3389/fphys.2016.00052
  52. Sakr M.T., Sarkassy N.M., Fuller M.P. Exogenously applied antioxidants and biostimulants counteract the adverse effect of biotic stress in wheat plant // Agric. Res. Technol. Open Access J. 2017. V. 12. P. 555853. http://dx.doi.org/10.19080/artoaj.2017.12.555853
  53. Zhang X. Influence of plant growth regulators on turf grasses growth, antioxidant status, and drought tolerance / Ed. Ph.D. Thesis. Faculty of Virginia Polytechnic (Institute and State University), 1997.
  54. Ali A.Y.A., Zhou G., Elsiddig A.M., Zhu G., Meng T., Jiao X., Ahmed I., Ibrahim Salih E.G., Ibrahim M.E.H. Effects of jasmonic acid in foliar spray and an humic acid amendment to saline soils on forage sorghum plants’ growth and antioxidant defense system // Peer J. 2022. V. 10. e13793. 10.7717/peerj.13793' target='_blank'>https://doi: 10.7717/peerj.13793
  55. Perduca M., Destefanis L., Bovi M., Galliano M., Munari F., Assfalg M., Ferrari F., Monaco H.L., Capaldi S. Structure and properties of the oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) lectin // Glycobiology. 2020. V. 30. № 8. Р. 550–562. https://doi.org/10.1093/glycob/cwaa006
  56. Zhao J., Sun Q., Quentin M., Ling J., Abad P., Zhang X., Li Y., Yang Y., Favery B., Mao Z., Xie B. A Meloidogyne incognita C-type lectin effector targets plant catalases to promote parasitism // New Phytol. 2021. V. 232(5). P. 2124–2137. https://doi.org/10.1111/nph.17690

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Влияние дозы экстракта на активность СОД (I) и содержание транскриптов гена SOD-1 (II) в прорастающих семенах и листьях проростков гороха: ГК – контроль, Г10 и Г100 – концентрация экстракта, %; а – суточные прорастающие семена, б – недельные проростки, культивированные в гидропонной среде, в – недельные проростки, культивированные в условиях почвы. То же на рис. 2, 3. * Р ≤ 0.05 – достовеность различий в соответствии с t-критерием Стьюдента по сравнению с контролем. ** Р ≤ 0.05 – в сравнении с контролем по критерию Крускала–Уоллиса.

Скачать (374KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Влияние дозы экстракта на активность КАТ (I) и содержание транскриптов гена САТ-1 (II) в прорастающих семенах и листьях проростков гороха. 1, 2, 3 – время фиксации активности фермента, мин.

Скачать (314KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Влияние дозы экстракта на динамику активности ПО (I) и содержание транскриптов гена POD (II) в прорастающих семенах и листьях проростков гороха.

Скачать (397KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».