Fagotsitarnaya aktivnost' monotsitov krovi v otvet na metitsillinrezistentnye shtammy staphylococcus aureus u bol'nykh polipoznym rinosinusitom

  • 作者: Kolenchukova O1,2, Lazareva A3, Smirnova S3, Sarmatova N2, Dobretsov K4
  • 隶属关系:
    1. «Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН
    2. Институт биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета Минобрнауки РФ
    3. Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН
    4. Центр оториноларингологии ФГБУ Федеральный Сибирский научно - клинический центр ФМБА России
  • 期: 卷 15, 编号 1S (2018)
  • 页面: 47-49
  • 栏目: Articles
  • URL: https://journals.rcsi.science/raj/article/view/120562
  • DOI: https://doi.org/10.36691/RJA46
  • ID: 120562

如何引用文章

全文:

作者简介

O Kolenchukova

«Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН; Институт биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета Минобрнауки РФ

A Lazareva

Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН

S Smirnova

Научно-исследовательский институт медицинских проблем Севера» обособленное подразделение ФИЦ КНЦ СО РАН

N Sarmatova

Институт биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета Минобрнауки РФ

K Dobretsov

Центр оториноларингологии ФГБУ Федеральный Сибирский научно - клинический центр ФМБА России

参考

  1. Игнатова И.А., Коленчукова О.А., Смирнова С.В., Манчук В.Т., Капустина Т.А., Ким Т.И., Чижмотря Н.М. Микробиоценоз слизистой оболочки носа при аллергической риносинусопатии IIЖМЭИ, 2007, № 1, С. 62-64.
  2. Kolenchukova, O.A., Smirnova, S.V., Lazareva, A.M. Features of microbiocenosis of nose mucous membrane during atopic and polypous rhinosinusitis II Zh. mikrobiol. (moscow), 2017, no. 1, p. 67-73.
  3. Flack C.E., Zurek O.W., Meishery D.D., Pallister K.B., Malone C.L., Horswill A.R., Voyich J.M. Differential regulation of staphylococcal virulence by the sensor kinase SaeS in response to neutrophil - derived stimuli // Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, vol.111,no 13, pp. 19 - 25.
  4. Shahkarami F., Rashki A., Rashki Ghalehnoo Z., Jundishapur J. Susceptibility and Plasmid Profiles of Methicillin - Resistant Staphylococcus aureus and Methicillin - Susceptible S. aureus // Microbiol. 2014, Vol. 7, no. 7, pp. 37 - 42.
  5. Lauvau G., Chorro L., Spaulding E., Soudja S.M. Inflammatory monocyte effector mechanisms. Cell Immunol II 2014, Vol. 291, no. 1 - 2, pp. 32 - 40.
  6. Shi C., Pamer E.G. Monocyte recruitment during infection and inflammationlINat. Rev. Immunol. 2011,Vol. 11, no. 11, pp. 762 - 774.
  7. Maecker H., McCoy P., Nussenblatt R. Standardizing immunophenotyping for the human immunologyproject // Nat. Rev. Immunol., 2012, Vol. 12, pp. 191 - 200.
  8. Hristov M., Schmitz S., Nauwelaers F., Weber C. A flow cytometric protocol for enumeration of endo - thelialprogenitor cells and monocyte subsets in human blood // J. Immunol. Methods, 2012, Vol. 381, no.
  9. - 2, pp. 9 - 13.
  10. Appleby L.J., Nausch N., Midzi N., Mduluza T., Allen J.E., Mutapi F. Sources of heterogeneity in human - monocyte subsets // Immunol. Lett., 2013, Vol. 152, no. 1, pp. 32 - 41.
  11. Gordon S. Targeting a monocyte subset to reduce inflammation // Circ. Res., 2012, Vol. 110, no. 12, pp. 1546 - 1548.
  12. Luider J.1., Cyfra M., Johnson P., Auer I. Impact of the new Beckman Coulter Cytomics FC 500 5 - color flowcytometer on a regional flow cytometry clinical laboratory service // Lab. Hematol., 2004, Vol. 10, pp. 102 - 108.
  13. Nocca G., De Sole P., Gambarini G., De Palma F., Parziale V., Giardina B., Lupi A. Alteration of monocyticcell oxidative burst caused by methacrylic monomers present in dental materials: a chemiluminescence study // Luminescence, 2006, Vol. 21, no. 3, pp. 202 - 206.

版权所有 © Pharmarus Print Media, 2018

##common.cookie##