Изучение динамики концентраций аллергенспецифических секреторных иммуноглобулинов A в слюне, интерлейкина 4 и интерферона γ в сыворотке крови как предиктивных биомаркеров эффективности аллергенспецифической иммунотерапии
- Авторы: Тимошенко Д.О.1, Курбачева О.М.1,2, Андреев И.В.1, Андреев А.И.1, Нечай К.О.3, Ходжава М.В.1, Мартынов А.И.1, Ильина Н.И.1,4, Хаитов М.Р.1,4
-
Учреждения:
- Государственный научный центр «Институт иммунологии»
- Российский университет медицины
- Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий
- Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
- Выпуск: Том 22, № 3 (2025)
- Страницы: 248-266
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journals.rcsi.science/raj/article/view/346897
- DOI: https://doi.org/10.36691/RJA17031
- ID: 346897
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Единственным патогенетическим методом лечения респираторных аллергических заболеваний является аллергенспецифическая иммунотерапия. Несмотря на то что данный метод используется более 100 лет, его точные механизмы продолжают изучаться, а предиктивные биомаркеры, позволяющие оптимизировать отбор пациентов для проведения терапии, отсутствуют.
Цель исследования — оценка клинической значимости изменения уровней аллергенспецифических секреторных иммуноглобулинов A в слюне, интерлейкина 4 и интерферона γ в сыворотке крови как предиктивных биомаркеров реализации эффекта аллергенспецифической иммунотерапии у пациентов с респираторной аллергией.
Материалы и методы. В проспективное одноцентровое исследование включены пациенты с аллергическим ринитом и бронхиальной астмой или без нее, обусловленными сенсибилизацией к аллергенам клещей домашней пыли, а также здоровые добровольцы. Пациенты группы лечения получали терапию сублингвальными аллергенами клещей домашней пыли в течение полугода, на контрольных визитах (до, через 2 и 6 мес терапии) оценивали выраженность симптомов. У здоровых добровольцев однократно, у пациентов группы лечения на контрольных визитах осуществляли забор биоматериала для оценки концентраций аллергенспецифических секреторных иммуноглобулинов A в слюне, интерлейкина 4 и интерферона γ в сыворотке методом иммуноферментного анализа.
Результаты. В группы лечения и контроля включены по 10 взрослых добровольцев, сопоставимых по возрасту, полу, исходному уровню цитокинов (p >0,05). В группе лечения отмечался более высокий исходный уровень аллергенспецифических секреторных иммуноглобулинов A в слюне (p <0,001). У всех пациентов через 6 мес терапии достигнуто клиническое улучшение в отношении симптомов аллергического ринита, у пациентов с бронхиальной астмой — через 2 мес терапии, при этом данный эффект был устойчивым в течение всего периода наблюдения. При оценке изменений биомаркеров показаны значительное увеличение уровня аллергенспецифических секреторных иммуноглобулинов A в слюне ко 2-му месяцу лечения (p = 0,006), повышение концентрации интерферона γ в сыворотке — к 6-му месяцу (p = 0,002). Концентрация интерлейкина 4 в сыворотке увеличивалась ко 2-му (p = 0,002) и снижалась к 6-му (p = 0,002) месяцу. Изменение концентраций аллергенспецифических секреторных иммуноглобулинов A в слюне, интерлейкина 4 в сыворотке крови не коррелировало с эффектом терапии, изменение концентрации интерферона γ коррелировало с эффектом терапии через 6 мес в отношении симптомов аллергического ринита (rs = −0,782; p = 0,012) и бронхиальной астмы (rs = 0,943; p = 0,017).
Заключение. Полученные результаты свидетельствуют о том, что изменение уровней Th1- и Th2-цитокинов в сыворотке крови, индукция синтеза аллергенспецифических секреторных иммуноглобулинов A в ротовой полости участвуют в реализации эффекта сублингвальной аллергенспецифической иммунотерапии. Данные корреляционного анализа, оцененные на двух- и шестимесячном интервале при проведении аллергенспецифической иммунотерапии позволяют выделить изменения уровня концентрации интерферона γ в сыворотке в качестве потенциального предиктивного биомаркера эффективности терапии.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дарья Олеговна Тимошенко
Государственный научный центр «Институт иммунологии»
Email: d.o.timoshenko@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7585-1390
SPIN-код: 2714-0906
MD
Россия, МоскваОксана Михайловна Курбачева
Государственный научный центр «Институт иммунологии»; Российский университет медицины
Email: kurbacheva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-3250-0694
SPIN-код: 5698-6436
д-р мед. наук, профессор
Россия, Москва; МоскваИгорь Владимирович Андреев
Государственный научный центр «Институт иммунологии»
Email: iva66@list.ru
ORCID iD: 0000-0001-6162-6726
SPIN-код: 8072-9669
канд. мед. наук
Россия, МоскваАлександр Игоревич Андреев
Государственный научный центр «Институт иммунологии»
Email: cahek_ahdreeb@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6257-6289
SPIN-код: 7126-4748
Россия, Москва
Ксения Олеговна Нечай
Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий
Email: xenya.ne4ay2016@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-6052-9721
SPIN-код: 7206-6660
Россия, Москва
Мария Викторовна Ходжава
Государственный научный центр «Институт иммунологии»
Email: educate.lec@gmail.com
ORCID iD: 0009-0005-5140-1554
SPIN-код: 3046-8033
канд. фарм наук
Россия, МоскваАлександр Игоревич Мартынов
Государственный научный центр «Институт иммунологии»
Автор, ответственный за переписку.
Email: immune48@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9761-8058
SPIN-код: 5829-5580
канд. мед. наук
Россия, МоскваНаталья Ивановна Ильина
Государственный научный центр «Институт иммунологии»; Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: instimmun@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3556-969X
SPIN-код: 6715-5650
д-р мед. наук, профессор
Россия, Москва; МоскваМуса Рахимович Хаитов
Государственный научный центр «Институт иммунологии»; Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова
Email: mr.khaitov@nrcii.ru
ORCID iD: 0000-0003-4961-9640
SPIN-код: 3199-9803
д-р мед. наук, профессор, академик РАН
Россия, Москва; МоскваСписок литературы
- Российская ассоциация аллергологов и клинических иммунологов, Национальная медицинская ассоциация оториноларингологов, Союз педиатров России. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению аллергического ринита. 2022.
- Гущин И.С., Курбачева О.М. Аллергия и аллергенспецифическая иммунотерапия. М.: Фармус Принт Медиа, 2010.
- Российское респираторное общество, Российская ассоциация аллергологов и клинических иммунологов, Союз педиатров России. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению бронхиальной астмы. 2024.
- Linneberg A, Henrik Nielsen N, Frølund L, et al. The link between allergic rhinitis and allergic asthma: a prospective population-based study. The Copenhagen Allergy Study. Allergy. 2002;57(11):1048–1052. doi: 10.1034/j.1398-9995.2002.23664.x EDN: BESRHR
- Agache I, Lau S, Akdis CA, et al. EAACI Guidelines on Allergen Immunotherapy: house dust mite-driven allergic asthma. Allergy. 2019;74(5):855–873. doi: 10.1111/all.13749 EDN: JFOYQP
- Российская ассоциация аллергологов и клинических иммунологов. Федеральные клинические рекомендации по проведению аллерген-специфической иммунотерапии. 2013.
- Pavlova KS, Timoshenko DO, Gushchin IS, Kurbacheva OM. Allergen immunotherapy: on the path to achieving immune tolerance. Immunologiya. 2024;45(1):82–90. (In Russ.) doi: 10.33029/1816-2134-2024- 45-1-82-90 EDN: EGMDEG
- Shamji MH, Kappen JH, Akdis M, et al. Biomarkers for monitoring clinical efficacy of allergen immunotherapy for allergic rhinoconjunctivitis and allergic asthma: an EAACI Position Paper. Allergy. 2017;72(8):1156–1173. doi: 10.1111/all.13138 EDN: YEVYBI
- Timoshenko DO, Pavlova KS, Kurbacheva OM. Searching for predictive biomarkers of allergen-specific immunotherapy efficacy based on modern concepts of its mechanisms. Russian Journal of Allergy. 2023;20(2):187–200. (In Russ.) doi: 10.36691/RJA7526 EDN: MGNRTD
- Van de Veen W, Akdis M. Tolerance mechanisms of allergen immunotherapy. Allergy. 2020;75(5):1017–1018. doi: 10.1111/all.14126 EDN: FPAJHL
- Jutel M, Akdis M, Budak F, et al. IL-10 and TGF-beta cooperate in the regulatory T cell response to mucosal allergens in normal immunity and specific immunotherapy. Eur J Immunol. 2003;33(5):1205–1214. doi: 10.1002/eji.200322919
- Faith A, Richards D, Verhoef A, et al. Impaired secretion of interleukin-4 and interleukin-13 by allergen-specific T cells correlates with defective nuclear expression of NF-AT2 and jun B: relevance to immunotherapy. Clin Exp Allergy. 2003;33(9):1209–1215. doi: 10.1046/j.1365-2222.2003.01748.x EDN: ETVKNP
- Ebner C, Siemann U, Bohle B, et al. Immunological changes during specific immunotherapy of grass pollen allergy: reduced lymphoproliferative responses to allergen and shift from TH2 to TH1 in T-cell clones specific for Phl p 1, a major grass pollen allergen. Clin Exp Allergy. 1997;27(9):1007–1015. doi: 10.1111/j.1365-2222.1997.tb01252.x
- Fanta C, Bohle B, Hirt W, et al. Systemic immunological changes induced by administration of grass pollen allergens via the oral mucosa during sublingual immunotherapy. Int Arch Allergy Immunol. 1999;120(3):218–224. doi: 10.1159/000024270
- Cosmi L, Santarlasci V, Angeli R, et al. Sublingual immunotherapy with Dermatophagoides monomeric allergoid down-regulates allergen-specific immunoglobulin E and increases both interferon-gamma- and interleukin-10-production. Clin Exp Allergy. 2006;36(3):261–272. doi: 10.1111/j.1365-2222.2006.02429.x
- Bohle B, Kinaciyan T, Gerstmayr M, et al. Sublingual immunotherapy induces IL-10-producing T regulatory cells, allergen-specific T-cell tolerance, and immune deviation. J Allergy Clin Immunol. 2007;120(3):707–713. doi: 10.1016/j.jaci.2007.06.013
- Wachholz PA, Nouri-Aria KT, Wilson DR, et al. Grass pollen immunotherapy for hayfever is associated with increases in local nasal but not peripheral Th1:Th2 cytokine ratios. Immunology. 2002;105(1):56–62. doi: 10.1046/j.1365-2567.2002.01338.x EDN: BALLAB
- Francis JN, Till SJ, Durham SR. Induction of IL-10+CD4+CD25+T cells by grass pollen immunotherapy. J Allergy Clin Immunol. 2003;111(6):1255–1261. doi: 10.1067/mai.2003.1570
- Liu J, Hu M, Tao X, et al. Salivary IgG4 levels contribute to assessing the efficacy of Dermatophagoides pteronyssinus subcutaneous immunotherapy in children with asthma or allergic rhinitis. J Clin Med. 2023;12(4):1665. doi: 10.3390/jcm12041665 EDN: DBZSTK
- Scadding G, Calderon M, Shamji M, et al. Effect of 2 years of treatment with sublingual grass pollen immunotherapy on nasal response to allergen challenge at 3 years among patients with moderate to severe seasonal allergic rhinitis: The GRASS Randomized Clinical Trial. JAMA. 2017;317(6):615–625. doi: 10.1001/jama.2016.21040 EDN: YWZZCL
- Shamji MH, Kappen J, Abubakar-Waziri H, et al. Nasal allergen-neutralizing IgG 4 antibodies block IgE-mediated responses: novel biomarker of subcutaneous grass pollen immunotherapy. J Allergy Clin Immunol. 2019;143(3):1067–1076. doi: 10.1016/j.jaci.2018.09.039
- Shamji MH, Larson D, Eifan A, et al. Differential induction of allergen-specific IgA responses following timothy grass subcutaneous and sublingual immunotherapy. J Allergy Clin Immunol. 2021;148(4):1061–1071.e11. doi: 10.1016/j.jaci.2021.03.030 EDN: LXJXMZ
- Virchow JC, Backer V, Kuna P, et al. Efficacy of a house dust mite sublingual allergen immunotherapy tablet in adults with allergic asthma: a randomized clinical trial. JAMA. 2016;315(16):1715–1725. doi: 10.1001/jama.2016.3964 EDN: YCQFSX
- Mosbech H, Deckelmann R, de Blay F, et al. Standardized quality (SQ) house dust mite sublingual immunotherapy tablet (ALK) reduces inhaled corticosteroid use while maintaining asthma control: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. J Allergy Clin Immunol. 2014;134(3):568–575.e7. doi: 10.1016/j.jaci.2014.03.019 EDN: UQGYIP
- Okubo K, Masuyama K, Imai T, et al. Efficacy and safety of the SQ house dust mite sublingual immunotherapy tablet in Japanese adults and adolescents with house dust mite-induced allergic rhinitis. J Allergy Clin Immunol. 2017;139(6):1840–1848.e10. doi: 10.1016/j.jaci.2016.09.043
- Timoshenko DO, Pavlova KS, Kurbacheva OM. Allergen-specific immunotherapy and real-world evidence. Russian Journal of Allergy. 2022;19(2):190–200. (In Russ.) doi: 10.36691/RJA1535 EDN: AWUMWE
- López J, imam M, Satitsuksanoa P, et al. Mechanisms and biomarkers of successful allergen-specific immunotherapy. Asia Pac Allergy. 2022;12(4): doi: 10.5415/apallergy.2022.12.e45 EDN: RXEKCE
- Shamji MH, Durham SR. Mechanisms of allergen immunotherapy for inhaled allergens and predictive biomarkers. J Allergy Clin Immunol. 2017;140(6):1485–1498. doi: 10.1016/j.jaci.2017.10.010
- Shamji MH, Valenta R, Jardetzky T, et al. The role of allergen-specific IgE, IgG and IgA in allergic disease. Allergy. 2021;76(12):3627–3641. doi: 10.1111/all.14908 EDN: RLOASH
Дополнительные файлы





