Особенности онтогенетической адаптации нейтрофилов новорожденного (обзор литературы)
- Авторы: Мухин В.Е.1, Панкратьева Л.Л.2, Ярцев М.Н.3, Володин Н.Н.4
-
Учреждения:
- Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
- Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Д. Рогачева Минздрава России
- ФГБУ Государственный научный центр «Институт иммунологии» Федерального медико-биологического агентства России
- Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева Минздрава Росси
- Выпуск: Том 18, № 2 (2021)
- Страницы: 55-65
- Раздел: Научные обзоры
- URL: https://journals.rcsi.science/raj/article/view/121762
- DOI: https://doi.org/10.36691/RJA1438
- ID: 121762
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Нейтрофилы являются важным компонентом системы врождённого иммунитета. Так как существуют значительные различия между физиологией плода и взрослого человека, фенотипические и функциональные характеристики нейтрофильных гранулоцитов новорождённых могут иметь жизненно важное значение. Выраженность этих изменений обратно пропорциональна гестационному возрасту, что свидетельствует о динамическом развитии этих клеток в течение всей беременности. Именно поэтому нельзя исключать, что в том числе с функциональной недостаточностью нейтрофилов недоношенных новорождённых связан крайне высокий риск развития неонатальных инфекций и сепсиса.
Неонатальные нейтрофилы адаптированы к внутриутробным условиям, что позволяет избегать нежелательного запуска провоспалительных реакций. Кроме того, подавление функции нейтрофилов необходимо для создания здорового микробиома в послеродовом периоде, однако может одновременно являться препятствием для развития достаточного ответа при воздействии патогенных организмов. До настоящего времени не установлены конкретные механизмы, лежащие в основе нормального перехода функционально ограниченных нейтрофилов плода в полноценное звено иммунологической защиты, способное противостоять патогенным микроорганизмам. Разрешение данного вопроса имеет особенное значение для недоношенных новорождённых.
В обзоре рассматриваются особенности онтогенетической адаптации нейтрофилов к внутриутробным условиям и раннему неонатальному периоду, а также их возможная роль в развитии патологии новорождённых.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Владимир Евгеньевич Мухин
Центр стратегического планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью
Автор, ответственный за переписку.
Email: muhinvldmr@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8973-7890
SPIN-код: 9048-2290
Россия, 119435, Москва, ул. Погодинская, д. 10, стр. 1
Людмила Леонидовна Панкратьева
Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Д. Рогачева Минздрава России
Email: liudmila.pankratyeva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-1339-4155
доктор медицинских наук, профессор кафедры педиатрии и организации здравоохранения
Россия, 117198, Москва, ул. Саморы Машела, д.1Михаил Николаевич Ярцев
ФГБУ Государственный научный центр «Институт иммунологии» Федерального медико-биологического агентства России
Email: m_yartsev@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0952-2801
SPIN-код: 7411-6674
доктор медицинских наук, вед. науч. сотр. отделения иммунопатологии детей
Россия, 115522, Москва, Каширское ш., д.24Николай Николаевич Володин
Национальный медицинский исследовательский центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева Минздрава Росси
Email: 0209nnv@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2667-8229
SPIN-код: 1899-7484
академик РАН, доктор медицинских наук, профессор, профессор кафедры педиатрии и организации здравоохранения
Россия, 117198, Москва, ул. Саморы Машела, д.1Список литературы
- Cuenca A.G., Joiner D.N., Gentile L.F., et al. TRIF-dependent innate immune activation is critical for survival to neonatal gram-negative sepsis // J Immunol. 2015. Vol. 194, N 3. Р. 1169–1177. doi: 10.4049/jimmunol.1302676
- Kemp A.S., Campbell D.E. The neonatal immune system // Seminars in Neonatology. 1996. Vol. 1, N 2. Р. 67–75. doi: 10.1016/S1084-2756(05)80002-8
- Azizia M., Lloyd J., Allen M., et al. Immune status in very preterm neonates // Pediatrics. 2012. Vol. 129, N 4. Р. e967–74. doi: 10.1542/peds.2011-1579
- Urlichs F., Speer C.P. Neutrophil function in preterm and term infants // NeoReviews. 2004. Vol. 5, N 10. Р. e417–e430. doi: 10.1542/neo.5-10-e417
- Makoni M., Eckert J., Pereira A.H., et al. Alterations in neonatal neutrophil function attributable to increased immature forms // Early Hum Dev. 2016. N 103. Р. 1–7. doi: 10.1016/j.earlhumdev.2016.05.016
- Ander S.E., Diamond M.S., Coyne C.B. Immune responses at the maternal-fetal interface // Sci Immunol. 2019. Vol. 4, N 31. Р. eaat6114. doi: 10.1126/sciimmunol.aat6114
- Amulic B., Cazalet C., Hayes G.L., et al. Neutrophil function: from mechanisms to disease // Annu Rev Immunol. 2012. N 30. Р. 459–489. doi: 10.1146/annurev-immunol-020711-074942
- Хаитов Р.М. Иммунология. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2016. 496 с.
- Slayton W.B., Li Y., Calhoun D.A., et al. The first-appearance of neutrophils in the human fetal bone marrow cavity // Early Hum Dev. 1998. Vol. 53, N 2. Р. 129–144. doi: 10.1016/s0378-3782(98)00049-8
- Laver J., Duncan E., Abboud M., et al. High levels of granulocyte and granulocyte-macrophage colony-stimulating factors in cord blood of normal full-term neonates // J Pediatr. 1990. Vol. 116, N 4. Р. 627–632. doi: 10.1016/s0022-3476(05)81617-8
- Nauseef W.M., Borregaard N. Neutrophils at work // Nat Immunol. 2014. Vol. 15, N 7. Р. 602–611. doi: 10.1038/ni.2921
- Jiao J., Dragomir A.C., Kocabayoglu P., et al. Central role of conventional dendritic cells in regulation of bone marrow release and survival of neutrophils // J Immunol. 2014. Vol. 192, N 7. Р. 3374–3382. doi: 10.4049/jimmunol.1300237
- Tak T., Tesselaar K., Pillay J., et al. What’s your age again? Determination of human neutrophil half-lives revisited // J Leukoc Biol. 2013. Vol. 94, N 4. Р. 595–601. doi: 10.1189/jlb.1112571
- Strydom N., Rankin S.M. Regulation of circulating neutrophil numbers under homeostasis and in disease // J Innate Immun. 2013. Vol. 5, N 4. Р. 304–314. doi: 10.1159/000350282
- Edwards S.W. Biochemistry and physiology of the neutrophil. Cambridge: Cambridge University Press; 2005.
- Schmutz N., Henry E., Jopling J., Christensen R.D. Expected ranges for blood neutrophil concentrations of neonates: the Manroe and Mouzinho charts revisited // J Perinatol. 2008. Vol. 28, N 4. Р. 275–281. doi: 10.1038/sj.jp.7211916
- Nittala S., Subbarao G.C., Maheshwari A. Evaluation of neutropenia and neutrophilia in preterm infants // J Matern Fetal Neonatal Med. 2012. Vol. 25, Suppl 5. Р. 100–103. doi: 10.3109/14767058.2012.715468
- Christensen R.D., Yoder B.A., Baer V.L., Snow G.L. Early-onset neutropenia in small-for-gestational-age infants // Pediatrics. 2015. Vol. 136, N 5. Р. e1259–e1267. doi: 10.1542/peds.2015-1638
- Liu G., Yang H., Chen X., et al. Modulation of neutrophil development and homeostasis // Curr Mol Med. 2013. Vol. 13, N 8. Р. 1270–1283. doi: 10.2174/15665240113139990062
- Lawrence S.M., Corriden R., Nizet V. Age-Appropriate functions and dysfunctions of the neonatal neutrophil // Front Pediatr. 2017. Vol. 5. Р. 23. doi: 10.3389/fped.2017.00023
- Quinn M.T., Gauss K.A. Structure and regulation of the neutrophil respiratory burst oxidase: comparison with nonphagocyte oxidases // J Leukoc Biol. 2004. Vol. 76, N 4. Р. 760–781. doi: 10.1189/jlb.0404216
- Воробьева Н.В., Кондратенко И.В., Вахлярская С.С., и др. Роль митохондриальной поры в эффекторных функциях нейтрофилов человека // Иммунология. 2020. Т. 41, № 1. С. 42–53. doi: 10.33029/0206-4952-2020-41-1-42-53
- Mantovani A., Cassatella M.A., Costantini C., Jaillon S. Neutrophils in the activation and regulation of innate and adaptive immunity // Nat Rev Immunol. 2011. Vol. 11, N 8. Р. 519–531. doi: 10.1038/nri3024
- Fox S.E., Lu W., Maheshwari A., et al. The effects and comparative differences of neutrophil specific chemokines on neutrophil chemotaxis of the neonate // Cytokine. 2005. Vol. 29, N 3. Р. 135–140. doi: 10.1016/j.cyto.2004.10.007
- Weinberger B., Laskin D.L., Mariano T.M., et al. Mechanisms underlying reduced responsiveness of neonatal neutrophils to distinct chemoattractants // J Leukoc Biol. 2001. Vol. 70, N 6. Р. 969–976. doi: 10.1016/j.cyto.2004.10.007
- Raymond S.L., Mathias B.J., Murphy T.J., et al. Neutrophil chemotaxis and transcriptomics in term and preterm neonates // Transl Res. 2017. N 190. Р. 4–15. doi: 10.1016/j.trsl.2017.08.003
- Kim S.K., Keeney S.E., Alpard S.K., Schmalstieg F.C. Comparison of L-selectin and CD11b on neutrophils of adults and neonates during the first month of life // Pediatr Res. 2003. Vol. 53, N 1. Р. 132–136. doi: 10.1203/00006450-200301000-00022
- Carr R. Neutrophil production and function in newborn infants // Br J Haematol. 2000. Vol. 110, N 1. Р. 18–28. doi: 10.1046/j.1365-2141.2000.01992.x
- Moriguchi N., Yamamoto S., Isokawa S., et al. Granulocyte functions and changes in ability with age in newborns; Report no. 2: activation of granulocyte functions by cytokines // Pediatr Int. 2006. Vol. 48, N 1. Р. 22–28. doi: 10.1111/j.1442-200X.2006.02150.x
- Nussbaum C., Sperandio M. Innate immune cell recruitment in the fetus and neonate // J Reprod Immunol. 2011. Vol. 90, N 1. Р. 74–81. doi: 10.1016/j.jri.2011.01.022
- McEvoy L.T., Zakem-Cloud H., Tosi M.F. Total cell content of CR3 (CD11b/CD18) and LFA-1 (CD11a/CD18) in neonatal neutrophils: relationship to gestational age // Blood. 1996. Vol. 87, N 9. Р. 3929–3933.
- Anderson D.C., Rothlein R., Marlin S.D., et al. Impaired transendothelial migration by neonatal neutrophils: abnormalities of Mac-1 (CD11b/CD18)-dependent adherence reactions // Blood. 1990. Vol. 76, N 12. Р. 2613–2621.
- Levy O. Impaired innate immunity at birth: deficiency of bactericidal/permeability-increasing protein (BPI) in the neutrophils of newborns // Pediatr Res. 2002. Vol. 51, N 6. Р. 667–669. doi: 10.1203/00006450-200206000-00001
- Decembrino L., De Amici M., De Silvestri A., et al. Plasma lactoferrin levels in newborn preterm infants with sepsis // J Matern Fetal Neonatal Med. 2017. Vol. 30, N 23. Р. 2890–2893. doi: 10.1080/14767058.2016.1266479
- Linden J.R., De Paepe M.E., Laforce-Nesbitt S.S., Bliss J.M. Galectin-3 plays an important role in protection against disseminated candidiasis // Med Mycol. 2013. Vol. 51, N 6. Р. 641–651. doi: 10.3109/13693786.2013.770607
- Fermino M.L, Polli C.D., Toledo K.A., et al. LPS-induced galectin-3 oligomerization results in enhancement of neutrophil activation // PLoS One. 2011. Vol. 6, N 10. Р. e26004. doi: 10.1371/journal.pone.0026004
- Sundqvist M., Osla V., Jacobsson B., et al. Cord blood neutrophils display a galectin-3 responsive phenotype accentuated by vaginal delivery // BMC Pediatr. 2013. Vol. 13. Р. 128. doi: 10.1186/1471-2431-13-128
- Haridan U.S., Mokhtar U., Machado L.R., et al. A comparison of assays for accurate copy number measurement of the low-affinity Fc gamma receptor genes FCGR3A and FCGR3B // PLoS One. 2015. Vol. 10, N 1. Р. e0116791. doi: 10.1371/journal.pone.0116791
- Nagelkerke S.Q., Kuijpers T.W. Immunomodulation by IVIg and the Role of Fc-Gamma Receptors: Classic Mechanisms of Action after all? // Front Immunol. 2015. Vol. 5. Р. 674. doi: 10.3389/fimmu.2014.00674
- Filias A., Theodorou G.L., Mouzopoulou S., et al. Phagocytic ability of neutrophils and monocytes in neonates // BMC Pediatr. 2011. Vol. 11. Р. 29. doi: 10.1186/1471-2431-11-29
- Falconer A.E., Carr R., Edwards S.W. Impaired neutrophil phagocytosis in preterm neonates: lack of correlation with expression of immunoglobulin or complement receptors // Biol Neonate. 1995. Vol. 68, N 4. Р. 264–269. doi: 10.1159/000244245
- Källman J., Schollin J., Schalèn C., et al. Impaired phagocytosis and opsonisation towards group B streptococci in preterm neonates // Arch Dis Child Fetal Neonatal Ed. 1998. Vol. 78, N 1. Р. F46–50. doi: 10.1136/fn.78.1.f46
- Ohlsson A., Lacy J.B. Intravenous immunoglobulin for suspected or proven infection in neonates // Cochrane Database Syst Rev. 2020. Vol. 1, N 1. Р. CD001239. doi: 10.1002/14651858.CD001239.pub6
- Allen R.C. Neutrophil leukocyte: combustive microbicidal action and chemiluminescence // J Immunol Res. 2015. Vol. 2015. Р. 794072. doi: 10.1155/2015/794072
- Grunwell J.R., Giacalone V.D., Stephenson S., et al. Neutrophil dysfunction in the airways of children with acute respiratory failure due to lower respiratory tract viral and bacterial coinfections // Sci Rep. 2019. Vol. 9, N 1. Р. 2874. doi: 10.1038/s41598-019-39726-w
- Brinkmann V., Reichard U., Goosmann C., et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria // Science. 2004. Vol. 303, N 5663. Р. 1532–1535. doi: 10.1126/science.1092385
- Mesa M.A., Vasquez G. NETosis // Autoimmune Dis. 2013. Vol. 2013. Р. 651497. doi: 10.1155/2013/651497
- Sørensen O.E., Borregaard N. Neutrophil extracellular traps – the dark side of neutrophils // J Clin Invest. 2016. Vol. 126, N 5. Р. 1612–1620. doi: 10.1172/JCI84538
- Desai J., Mulay S.R., Nakazawa D., Anders H.J. Matters of life and death. How neutrophils die or survive along NET release and is “NETosis” = necroptosis? // Cell Mol Life Sci. 2016. Vol. 73, N 11–12. Р. 2211–2219. doi: 10.1007/s00018-016-2195-0
- Yost C.C., Cody M.J., Harris E.S., et al. Impaired neutrophil extracellular trap (NET) formation: a novel innate immune deficiency of human neonates // Blood. 2009. Vol. 113, N 25. Р. 6419–6427. doi: 10.1182/blood-2008-07-171629
- Byrd A.S., O’Brien X.M., Laforce-Nesbitt S.S., et al. NETosis in neonates: evidence of a reactive oxygen species-independent pathway in response to fungal challenge // J Infect Dis. 2016. Vol. 213, N 4. Р. 634–639. doi: 10.1093/infdis/jiv435
- Bizzarro M.J., Dembry L.M., Baltimore R.S., Gallagher P.G. Changing patterns in neonatal Escherichia coli sepsis and ampicillin resistance in the era of intrapartum antibiotic prophylaxis // Pediatrics. 2008. Vol. 121, N 4. Р. 689–696. doi: 10.1542/peds.2007-2171
- Cotten CM, Taylor S, Stoll B, et al.; NICHD Neonatal Research Network. Prolonged duration of initial empirical antibiotic treatment is associated with increased rates of necrotizing enterocolitis and death for extremely low birth weight infants // Pediatrics. 2009. Vol. 123, N 1. Р. 58–66. doi: 10.1542/peds.2007-3423
- Zeissig S., Blumberg R.S. Life at the beginning: perturbation of the microbiota by antibiotics in early life and its role in health and disease // Nat Immunol. 2014. Vol. 15, N 4. Р. 307–310. doi: 10.1038/ni.2847
- Kanoh S., Rubin B.K. Mechanisms of action and clinical application of macrolides as immunomodulatory medications // Clin Microbiol Rev. 2010. Vol. 23, N 3. Р. 590–615. doi: 10.1128/CMR.00078-09
- Warner B.B., Deych E., Zhou Y., et al. Gut bacteria dysbiosis and necrotising enterocolitis in very low birthweight infants: a prospective case-control study // Lancet. 2016. Vol. 387, N 10031. Р. 1928–1936. doi: 10.1016/S0140-6736(16)00081-7
- Khosravi A. Yáñez A., Price J.G., et al. Gut bacteria dysbiosis and necrotising enterocolitis in very low birthweight infants: a prospective case-control study. Gut microbiota promote hematopoiesis to control bacterial infection // Cell Host Microbe. 2014. Vol. 15, N 3. Р. 374–381. doi: 10.1016/j.chom.2014.02.006
- Iwamura C., Bouladoux N., Belkaid Y., et al. Sensing of the microbiota by NOD1 in mesenchymal stromal cells regulates murine hematopoiesis // Blood. 2017. Vol. 129, N 2. Р. 171–176. doi: 10.1182/blood-2016-06-723742
- Koh A., De Vadder F., Kovatcheva-Datchary P., Bäckhed F. From dietary fiber to host physiology: short-chain fatty acids as key bacterial metabolites // Cell. 2016. Vol. 165, N 6. Р. 1332–1345. doi: 10.1016/j.cell.2016.05.041
- Vieira A.T., Galvão I., Macia L.M., et al. Dietary fiber and the short-chain fatty acid acetate promote resolution of neutrophilic inflammation in a model of gout in mice // J Leukoc Biol. 2017. Vol. 101, N 1. Р. 275–284. doi: 10.1189/jlb.3A1015-453RRR
- Guo C., Xie S., Chi Z., et al. Bile acids control inflammation and metabolic disorder through inhibition of NLRP3 inflammasome // Immunity. 2016. Vol. 45, N 4. Р. 802–816. doi: 10.1016/j.immuni.2016.09.008
- Kobayashi S.D., Voyich J.M., Whitney A.R., DeLeo F.R. Spontaneous neutrophil apoptosis and regulation of cell survival by granulocyte macrophage-colony stimulating factor // J Leukoc Biol. 2005. Vol. 78, N 6. Р. 1408–1418. doi: 10.1189/jlb.0605289
- Contrino J., Krause P.J., Slover N., Kreutzer D. Elevated interleukin-1 expression in human neonatal neutrophils // Pediatr Res. 1993. Vol. 34, N 3. Р. 249–252. doi: 10.1203/00006450-199309000-00002
- Wynn J.L., Levy O. Role of innate host defenses in susceptibility to early-onset neonatal sepsis // Clin Perinatol. 2010. Vol. 37, N 2. Р. 307–337. doi: 10.1016/j.clp.2010.04.001
- Hou P.C., Yu H.R., Kuo H.C., et al. Different modulating effects of adenosine on neonatal and adult polymorphonuclear leukocytes // Scientific World Journal. 2012. Vol. 2012. Р. 387923. doi: 10.1100/2012/387923
- Sundqvist M., Osla V., Jacobsson B., et al. Cord blood neutrophils display a galectin-3 responsive phenotype accentuated by vaginal delivery // BMC Pediatr. 2013. Vol. 13. Р. 128. doi: 10.1186/1471-2431-13-128
- Liu W., Yan M., Sugui J.A., et al. Olfm4 deletion enhances defense against Staphylococcus aureus in chronic granulomatous disease // J Clin Invest. 2013. Vol. 123, N 9. Р. 3751–3755. doi: 10.1172/JCI68453
- Welin A., Amirbeagi F., Christenson K., et al. The human neutrophil subsets defined by the presence or absence of OLFM4 both transmigrate into tissue in vivo and give rise to distinct NETs in vitro // PLoS One. 2013. Vol. 8, N 7. Р. e69575. doi: 10.1371/journal.pone.0069575
- Hanna N., Vasquez P., Pham P., et al. Mechanisms underlying reduced apoptosis in neonatal neutrophils // Pediatr Res. 2005. Vol. 57, N 1. Р. 56–62. doi: 10.1203/01.PDR.0000147568.14392.F0
- Kotecha S., Mildner R.J., Prince L.R., et al. The role of neutrophil apoptosis in the resolution of acute lung injury in newborn infants // Thorax. 2003. Vol. 58, N 11. Р. 961–967. doi: 10.1136/thorax.58.11.961.