Аллерген-спе-цифическая иммунотерапия мономерным аллергоидом из клещей домашней пыли Dermatophagoides pteronyssinus на модели экспериментального аллергического ринита


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель работы. Изучение эффективности экспериментальной аллерген-специфической иммунотерапии (АСИТ) мономерным аллергоидом (sD1), полученным путем сукцинилирования аллергенного экстракта из клещей домашней пыли Dermatophagoides pteronyssinus (D1), на экспериментальной (мышиной) модели аллергического ринита (ЭМАР). Материалы и методы. Мышей линии BALB/c иммунизировали немодифицированным экстрактом (D1) из клещей домашней пыли Dermatophagoides pteronyssinus (Der p) в смеси с гидроокисью алюминия [Al(OH)3] трижды с интервалом в три недели, после чего через 6 нед подвергали челленджированию (разрешающему воздействию) путем интраназального введения аллергенного экстракта D1. Экспериментальную АСИТ проводили в интервале между последней иммунизацией и началом челленджирования. Первая группа животных получила «ложную АСИТ» в виде 16 подкожных (п/к) инъекций фосфатно-солевого буферного раствора (PBS); вторая - 16 п/к инъекций немодифицированного Dl в возрастающих дозах (белкового эквивалента): 1; 10; 100 и 1000 мкг/мышь; третья - 8 п/к инъекций sDl в возрастающих дозах (белкового эквивалента): 100; 550 и 1000 мкг/мышь; четвертая - комбинированную АСИТ: 4 п/к инъекций sD1 в дозах 100; 550; 1000 мкг/мышь и 4 сублингвальных (с/л) введения sD1 в дозе 1000 мкг/мышь. Пятая группа служила отрицательным контролем: иммунизация, экспериментальная АСИТ и челленджирование осуществлялись введениями PBS. Сразу после последнего челленджирования оценивали клиническую симптоматику экспериментального ринита (по количеству чиханий в минуту), а через 24 ч после окончания челленджирования проводили оценку частоты дыхания при помощи использования неинвазивной плетизмографии. Через 48 ч после последнего челленджирования животных всех групп умерщвляли и проводили забор материала для гистологического исследования (голова целиком) с целью оценки гистологической картины выраженности аллергического ринита в носовой полости. Забор крови для получения сывороток у животных производили трижды: через 7 дней после последней иммунизации, за 1 день до челленджирования и через 24 ч после последнего челленджирования. Уровни анти-Der p IgE, IgG1, IgG2a в индивидуальных сыворотках определяли твердофазным иммуноферментным анализом (ИФА). Результаты и обсуждение. Показано, что все три варианта АСИТ (группы 2, 3, 4) существенно снижали число актов чихания, причем наибольшее снижение происходило в 3-й группе, получавшей АСИТ мономерным аллергоидом sD1. Количество дыхательных актов в минуту у животных 2- и 4-й групп, получавших АСИТ соответственно немодифицированным D1 и sD1 (комбинированное п/к и с/л введение), было достоверно выше такового в 1-й группе (модель ЭМАР). Уровни анти-Der p IgE в 1-4-й группах после 3-й иммунизации возрастал по сравнению с 5-й группой (отрицательный контроль). После завершения АСИТ уровни анти-Der p IgE во 2-, 3- и 4-й группах повышались как относительно 5-й группы (отрицательный контроль), так и относительно 1-й группы (положительный контроль - модель ЭМАР). Однако после проведения челленджирования наивысшие уровни анти-Der p IgE отмечались в 1- и 4-й группах, в то время как в 3-й группе отмечалась тенденция к снижению, а во 2-й группе уровень анти-Der p IgE был существенно ниже такового в 1-й группе (контроль ЭМАР). Анти-Der p IgG1 достоверно повышался во 2-, 3-, 4-й группах (получавших АСИТ), причем это повышение сохранялось и после челленджирования. Анти-Der p IgG2a демонстрировал тенденцию к увеличению после АСИТ в 3-, 4-й группах, причем после челленджирования уровень анти-Derp IgG2a в 4-й группе был достоверно выше такового 1-й группы. При гистологической оценке общая картина воспаления, слизистая экссудация, гиперплазия слизистой оболочки были существенно более выражены в 1- и 2-й группах по сравнению с 5-й группой (отрицательный контроль). В то же время во 2-й группе наблюдалась тенденция к снижению вышеназванных показателей, а в 3- и 4-й группах (АСИТ sD1 и комбинированная п/к и с/л АСИТ sD1) наблюдалось полное подавление этих показателей. Заключение. По совокупности полученных данных можно сделать вывод о том, что АСИТ мономерным аллергоидом из клещей домашней пыли D. pteronyssinus, полученным методом сукцинилирования, может быть новым эффективным и безопасным подходом в терапии аллергического ринита, включая проведение комбинированного курса инъекционной и сублингвальной АСИТ, что может повысить эффект лечения и в конечном счете - качество жизни пациентов.

Об авторах

А А Ласкин

ФГБУ «ГНЦ Институт иммунологии» ФМБА России

г. Москва

А А Бабахин

ФГБУ «ГНЦ Институт иммунологии» ФМБА России

Email: alexbabahin@list.ru
г. Москва

О Ю Камышников

ФГБУ «ГНЦ Институт иммунологии» ФМБА России

г. Москва

И С Гущин

ФГБУ «ГНЦ Институт иммунологии» ФМБА России

г. Москва

М Р Хаитов

ФГБУ «ГНЦ Институт иммунологии» ФМБА России

г. Москва

Список литературы

  1. Akdis M. New treatments for allergen immunotherapy. World Allergy Organization Journal. 2014, v. 7, p. 23-27.
  2. Howarth P., Malling H.J., Molimard M., Devillier P Analysis of allergen immunotherapy studies shows increased clinical efficacy in highly symptomatic patients. Allergy. 2012, v. 67, p. 321-327.
  3. Курбачева О.М., Ильина Н.И. Лечение аллергического ринита: когда, как и зачем? Рос. Аллергол. Журн. 2006, № 2, с. 66-75.
  4. Noon L. Prophylactic inoculation against hay fever. Lancet. 1911, v. 1, p. 1572-1573.
  5. Freeman J. Further observation of the treatment of hay fever by hypodermic inoculations of pollen vaccines. Lancet. 1911, v. 2, p. 814-817.
  6. Nelson H.S. Allergen Immunotherapy. Where is it now? J. Allergy Clin. Immunol. 2007, v. 119, p. 769-777.
  7. Epstein TG., Liss G.L., Murphy-Berendts K., Bemstein D.I. Risk factors for fatal and nonfatal reactions to subcutaneous immunotherapy: National surveillance study on allergen immunotherapy (2008-2013). Ann. Allergy, Asthma, Immunol. 2016, v. 116, p. 354-359.
  8. Бабахин А.А., Гущин И.С., Андреев С.М. и соавт. Химическая модификация аллергена, ведущая к изменению его эпитопной активности. Пат. физиол. 1999, № 1, с. 17-20.
  9. Platt-Mills T.A. The future of allergy and clinical immunology lies in evaluation, treatment and research on allergic disease. J. Allergy Clin. Immunol. 2002, v. 110, p. 565-566.
  10. Platt-Mills T.A., Ervin E.A., Heymann P.W., Woodfolk J.I. Pro: The evidence for a causal role of dust mites in asthma. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2009, v. 180, p. 109-121.
  11. Cui Y. Structural biology of mite allergens. Mol. Biol. Resp. 2013, v. 40, p. 681-686.
  12. Бабахин А.А., Ласкин А.А., Смирнов В.В. и соавт. Мономерный аллергоид из клещей домашней пыли Dermatophagoides pteronyssinus: иммунологические свойства. Рос. Аллергол. Журн. 2016, № 4-5, с. 29-36.
  13. Бабахин А.А., Ласкин А.А., Камышников О.Ю. и соавт. Модель экспериментальной бронхиальной астмы, индуцированной у мышей аллергенным экстрактом из клещей домашней пыли Dermatophagoides pteronyssinus. Рос. Аллергол. Журн. 2015, № 6, с. 25-33.
  14. Лилли Р.Д. Руководство «Патогистологическая техника и практическая гистохимия» (пер. с англ.). М., 1969, 646 с.
  15. Ennis D.P., Cassidy J.P., Mahon B.Pю Acellular Pertussis Vaccine Protects against Exacerbation of Allergic Asthma Due to Bordetella pertussis in a Murine Model. Clin. Diagnostic. Lab. Immun. 2005, v. 3, p. 409-417.
  16. Van Oosternhout A.J., van Esch B., Hofman G., Hofstra C.L., van Ark I., Nijkamp F.P., Weller F.R. Allergen immunotherapy inhibits airway eosinophilia and hyperresponsiveness associated with decreased IL-4 production by lymphocytes in a mature model of allergic asthma. Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 1998, v. 4, p. 622-628.
  17. Jenssen E.M., van Oosterhout A.J., van Rensen A.J. et al. Modulation of Th2 responses by peptide analogues in a murine model of allergic asthma: amelioration ordeterioration of the disease process depends on Th1 or Th2 skewing characteristics of the therapeutic peptide. J. Immunol. 2000, v. 164, p. 580-588.
  18. Durham S.R., Nelson H. Allergen immunotherapy: A Centenary celebration. WAO Journal. 2011, v. 4, p. 104-106.
  19. Takahashi Y., Kagawa Y., Izawa K. et al. Effect of histamine H4 receptor antagonist on allergic rhinitis in mice. Int. Immunopharmacol. 2009, v. 9, p. 734-738.
  20. Wagner J.G., Harkema J.R. Rodent models of allergic rhinitis: Relevance to human pathophysiology. Curr. Allergy Asthma Rep. 2007, v. 7, p. 134-140.
  21. Shin J.H., Kim B.Y., Park H.R., Kim S.W. The effect of pneumococcal polysaccharide vaccine in a mouse model of allergic rhinitis. Otolaryngol. Head Neck Surg. 2013, v. 148, p. 383-390.
  22. Tasaniyananda N., Chaisri U., Tungtrongchitr A. et al. Mouse model of cat allergic rhinitis and intranasal liposome-adjuvanted refined Fel d 1 vaccine. PLoS One. 2016, v. 11, e0150463c.
  23. Huang C.F., Wu T.C., Chu Y.H. et al. Effect of neonatal sublingual vaccination with native or denatured ovalbumin and adjuvant CpG or cholera toxin on systemic and mucosal immunity in mice. Scand. J. Immunol. 2008, v. 68, p. 502-510.
  24. Rask C., Brimnes J., Lund K. Shorter dosing intervals of sublingual immunotherapy lead to more efficacious treatment in a mouse model of allergic inflammation. Scand J. Immunol. 2010, v. 71, p. 403-412.
  25. Nacaroglu H.T., Erdem S.B., Sumer O. et al. Local and systemic reactions to subcutaneous allergen immunotherapy: Ten years’ experience in a pediatric clinic. Ann. Allergy Asthma Immunol. 2016, v. 116, p. 349-353.
  26. Epstein T.G., Liss G.L., Murphy-Berendts K., Bemstein D.I. Risk factors for fatal and nonfatal reactions to subcutaneous immunotherapy: National surveillance study on allergen immunotherapy (2008-2013). Ann. Allergy Asthma Immunol. 2016, v. 116, p. 354-359.

© Фармарус Принт Медиа, 2016

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах