Проявление признаков резистентности к инсектоакарицидам в инбредных линиях обыкновенного паутинного клеща при дизруптивном отборе

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

На 20 инбредных генерациях проведен дизруптивный отбор самок обыкновенного паутинного клеща по наличию или отсутствию признаков резистентности к четырем инсектоакарицидам различных химических классов - диметоату, бифентрину, абамектину и бромпропилату. При дифферециации генотипов во всех резистентных к токсикантам линиях в каждом поколении присутствовало в среднем около 30 % самок без признака резистентности к акарициду из-за гапло-диплоидного способа размножения клещей. У единичных самок сравниваемых линий клещей выявлена активность карбоксилэстеразных фракций при электрофоретическом разделении ферментов. Клещи протестированы диагностическими концентрациями диметоата, бифентрина, пиридабена. Сопоставлено синергистическое действие на них ингибитора монооксигеназ - пиперонил бутоксида. Сделан вывод, что индукция карбоксилэстеразной и монооксигеназной активности является универсальной реакцией адаптивного ответа организма членистоногих при проявлении резистентности к любым инсектоакарицидам острого токсического действия.

Об авторах

Олег Вениаминович Сундуков

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений»

Email: Sunduckov.oleg@yandex.ru
к. б. н., старший научный сотрудник, лаборатория экотоксикологии

Ирина Анатольевна Тулаева

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений»

Email: zubanov63@rambler.ru
к. б. н., научный сотрудник, лаборатория экотоксикологии

Евгений Александрович Зубанов

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений»

Email: zubanov63@rambler.ru
научный сотрудник, лаборатория экотоксикологии

Список литературы

  1. Беленький М. Л. (1959) Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. Рига: АН Латв. ССР.
  2. Маурер Г. (1971) Диск-электрофорез. М.: Мир.
  3. Сингер М., Берг П. (1998) Гены и геномы. М.: Мир, Т. 2.
  4. Сундуков О. В. (2012) Этиология острой токсичности инсектоакарицидов и физиологические факторы, определяющие избирательность их действия на членистоногих. СПб.: Наука.
  5. Сундуков О. В., Тулаева И. А., Зубанов Е. А. (2014) Наследование признаков резистентности к акарицидам в инбредных линиях обыкновенного паутинного клеща. Экол. генетика. Т. 12 (3): С. 43-51.
  6. Урбах В. Ю. (1964) Биометрические методы. М.: Наука.
  7. Bass Ch., Field L. M. (2011) Gene amplification and insecticide resistance. Pest Manag. Sci. V. 67 (8): P. 886-890.
  8. Dermauw W., Ilias A., Riga M. et al. (2012) The cys-loop ligand-gated ion channel gene family of Tetranychus urticae: Implications for acaricide toxicology and novel mutation associaned with abamectin resistance. Insect Biochem. Mol. Biol. V. 42: P. 455-465.
  9. Karnovsky M. J., Roots L. (1964) A “direct-coloring” thiocholine method for cholinesterases. J. Histochem. Cytochem. V.12: P. 219-221.
  10. Kwon D. H., Yoon K. S., Clark J. M., Lee S. H. (2010) A point mutation in a glutamate-gated chloride channel confers abamectin resistance in the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch. Insect Mol. Biol. V. 19: P. 583-591.
  11. Leeuwen T. van, Pottelberge S. van, Tirri L. (2005) Comparative acaricide susceptibility and detoxifying enzyme activities in field-collected resistant and susceptible strains of Tetranychus urticae. Pest Manag. Sci. V. 61 (5): P. 499-507.
  12. Leeuwen T. van, Pottelberge S. van, Tirry L. (2006) Biochemical analysis of chlorfenapyr-selected resistant strain of Tetranychus urticae Koch. Pest Manag. Sci. V. 62 (5): P. 425-433.
  13. Leeuwen T. van, Tirri L. (2007) Esterase-mediated bifenthrin resistance in a multiresistant strain of the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae. Pest Manag. Sci. V. 63 (2): P. 150-156.
  14. Nyoni B. N., Gorman K., MzilahowaT., et al. (2011) Pyrethroid resistance in the tomato spider mite, Tetranychus evansi, is associated with mutation of the para-type sodium channel. Pest Manag. Sci. V. 67 (8): P. 891-897.
  15. Ya-ning F., Shu Zh., Wei S., et al. (2011) The sodium channel gene in Tetranychus cinnabarinus (Boisduval): identification and expression analysis of a mutation associated with pyrethroid resistance. Pest Manag. Sci. V. 67 (8): P. 904-912.
  16. Zhao X., Salgado V. L. (2010) The role of GABA and glutamate receptors in susceptibility and resistance to chloride channel blocker insecticides. Pest. Biochem. Physiol. V. 97: P. 153-160.

© Сундуков О.В., Тулаева И.А., Зубанов Е.А., 2015

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах