Молекулярно-генетические маркеры чувствительности к воздействию факторов производственной среды у шахтеров

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

У 288 рабочих угольных шахт Кузбасса (Западная Сибирь, Россия), выполняющих основные технологические операции под землей, впервые изучена доза активных кластеров рибосомных генов, а также проведена оценка уровня хромосомных аберраций и полиморфизма генов репарации ДНК XPD (rs13181), XPG (rs17655), XRCC2 (rs3218536), XRCC3 (rs861539). Установлено статистически значимое (p = 0,0001) увеличение хромосомной нестабильности у шахтеров по сравнению с мужчинами, не работающими на промышленных предприятиях (n = 676). У шахтеров со средней дозой активных рибосомных генов зарегистрировано статистически значимое увеличение частоты встречаемости одиночных фрагментов (p = 0,016). Выявлена ассоциация с повышенным уровнем хромосомных аберраций вариантов гена XPD (в общей группе шахтеров в рецессивной модели наследования ORadj = 9,96; CI 95 %: 2,33–42,57; padj = 0,0001) и XPG (только у курящих рабочих в рецессивной модели наследования ORadj = 7,82; CI 95 %: 1,73–35,45; padj = 0,017). Проведенный MDR-анализ позволил выявить взаимосвязь дозы активных рибосомных генов и полиморфных вариантов XPD (rs13181) и XPG (rs17655) при формировании повышенного уровня повреждений хромосом у шахтеров.

Об авторах

Анна Александровна Тимофеева

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: annateam86@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9063-0158
SPIN-код: 1542-8153

ведущий инженер-технолог лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Варвара Ивановна Минина

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук

Email: vminina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3485-9123
SPIN-код: 5153-8594

д-р биол. наук, главный научный сотрудник лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Евгения Анатольевна Астафьева

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук, Кемерово

Email: astafeva.evgenia@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5841-6311
SPIN-код: 9814-4382

инженер-технолог лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Татьяна Александровна Головина

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук

Email: goltat86@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2805-0822

инженер-технолог лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Владислав Игоревич Федосеев

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук

Email: fedoseev.vlig@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5359-3845
SPIN-код: 1473-4062

инженер-технолог лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Анастасия Владимировна Рыжкова

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук

Email: kotia1490@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5643-5001
SPIN-код: 5666-2145

ведущий инженер-технолог лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Ольга Александровна Соболева

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук

Email: soboleva.olga88@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7183-6647
SPIN-код: 6089-2499

ведущий инженер-технолог лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Яна Александровна Савченко

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук

Email: yasavchenko@ya.ru
ORCID iD: 0000-0003-0754-306X
SPIN-код: 3783-7268

канд. биол. наук, старший научный ссотрудник лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Марина Леонидовна Баканова

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт экологии человека Федерального исследовательского центра угля и углехимии Сибирского отделения Российской академии наук, Кемерово

Email: mari-bakano@ya.ru
ORCID iD: 0000-0002-1238-2427
SPIN-код: 3049-1531

младший научный сотрудник лаборатории цитогенетики

Россия, Кемерово

Антон Андреевич Глушков

Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Новосибирский национальный исследовательский государственный университет»

Email: glushkov.anton2404@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6864-2577
SPIN-код: 5155-1374

студент Института медицины и психологии В. Зельмана

Россия, Новосибирск

Список литературы

  1. Бочков Н.П., Пузырев В.П., Смирнихина С.А. Клиническая генетика: учебник / под ред. Н.П. Бочкова. 4-е изд., доп. и перераб. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2015. – 592 с. [Bochkov NP, Puzyrev VP, Smirnikhina SA. Klinicheskaya genetika: uchebnik. Ed. by N.P. Bochkov. 4th revised and updated. Moscow: GEOTAR-Media; 2015. 592 p. (In Russ.)]
  2. Мун С.А., Ларин С.А., Глушков А.Н. Влияние роста добычи угля на загрязнение атмосферы и заболеваемость раком легкого в Кемеровской области // Современные проблемы науки и образования. – 2013. – № 1. – С. 69. [Mun SA, Larin SA, Glushkov AN. The influence of mining on atmosphere contamination and lung cancer in the kemerovo region. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya. 2013;(1):69. (In Russ.)]
  3. Мун С.А., Глушков А.Н. Расчет прогнозов заболеваемости раком легкого у мужчин в связи с техногенным загрязнением атмосферы в Кемеровской области // Гигиена и санитария. – 2014. – T. 93. – № 2. – С. 37–40. [Mun SA, Glushkov AN. Calculation of prognoses of lung cancer in males from technogenic contamination of atmosphere in the Kemerovo region. Gig Sanit. 2014;93(2):37-40. (In Russ).]
  4. Guerrero-Castilla A, Olivero-Verbel J, Marrugo-Negrete J. Heavy metals in wild house mice from coal-mining areas of Colombia and expression of genes related to oxidative stress, DNA damage and exposure to metals. Mutat Res Genet Toxicol Environ Mutagen. 2014; 762:24-29. https://doi.org/10.1016/j.mrgentox.2013.12.005.
  5. Rohr P, Kvitko K, da Silva FR, et al. Genetic and oxidative damage of peripheral blood lymphocytes in workers with occupational exposure to coal. Mutat Res. 2013;758(1-2):23-28. https://doi.org/10.1016/j.mrgentox.2013.08.006.
  6. León-Mejía G, Quintana M, Debastiani R, et al. Genetic damage in coal miners evaluated by buccal micronucleus cytome assay. Ecotoxicol Environ Saf. 2014;107:133-139. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2014.05.023.
  7. Kloosterman WP, Hochstenbach R. Deciphering the pathogenic consequences of chromosomal aberrations in human genetic disease. Mol Cytogenet. 2014;7(1):100-112. https://doi.org/10.1186/s13039-014-0100-9.
  8. Ensminger M, Iloff L, Ebel C, et al. DNA breaks and chromosomal aberrations arise when replication meets base excision repair. J Cell Biol. 2014;206(1):29-43. https://doi.org/10.1083/jcb.201312078.
  9. Sugasawa K. Regulation of damage recognition in mammalian global genomic nucleotide excision repair. Mutat Res. 2010;685(1-2):29-37. https://doi.org/10.1016/j.mrfmmm.2009.08.004.
  10. Lindström MS, Jurada D, Bursac S, et al. Nucleolus as an emerging hub in maintenance of genome stability and cancer pathogenesis. Oncogene. 2018;37(18):2351-2366. https://doi.org/10.1038/s41388-017-0121-z.
  11. Weeks SE, Metge BJ, Samant RS. The nucleolus: a central response hub for the stressors that drive cancer progression. Cell Mol Life Sci. 2019;76(22):4511-4524. https://doi.org/10.1007/s00018-019-03231-0.
  12. Wang J, Zhang ZQ, Li FQ, et al. Triptolide interrupts rRNA synthesis and induces the RPL23MDM2p53 pathway to repress lung cancer cells. Oncol Rep. 2020;43(6):1863-1874. https://doi.org/10.3892/or.2020.7569.
  13. McStay B. Nucleolar organizer regions: genomic ‘dark matter’ requiring illumination. Genes Dev. 2016;30(14):1598-1610. https://doi.org/ 10.1101/gad.283838.116.
  14. Ляпунова Н.А., Вейко Н.Н. Рибосомные гены в геноме человека: идентификация четырех фракций, их организация в ядрышке и метафазных хромосомах // Генетика. – 2010. – Т. 46. – № 9. – С. 1205–1209. [Lyapunova NA, Veiko NN. Ribosomal genes in the human genome: identification of four fractions, their organization in the nucleolus and metaphase chromosomes. Russian Journal of Genetics. 2010;46(9):1205-1209. (In Russ.)]. https://doi.org/10.1134/S1022795410090140.
  15. Paredes S, Branco AT, Hartl DL, et al. Ribosomal DNA deletions modulate genome-wide gene expression: “rDNA-Sensitive” genes and natural variation. PLoS Genetics. 2011;7(4): e1001376. https://doi.org/10.1371/journal.pgen. 1001376.
  16. Ляпунова Н.А., Пороховник Л.Н., Косякова Н.В., и др. Жизнеспособность носителей хромосомных аномалий зависит от геномной дозы активных рибосомных генов (генов рРНК) // Генетика. –2017. – Т. 53. – № 6. – С. 722–731. [Lyapunova NA, Porokhovnik LN, Kosyakova NV, et al. Viability of carriers of chromosomal abnormalities depends on genomic dosage of active ribosomal genes (rRNA genes). Russian Journal of Genetics. 2017;53(6):722-731. (In Russ.)]. https://doi.org/10.7868/S0016675817060091.
  17. Мамаев Н.Н. Структурная организация и экспрессия рибосомных генов в физиологических и патологических условиях // Цитология. – 1997. – № 1. – С. 80–83. [Mamaev NN. Strukturnaya organizaciya i ekspressiya ribosomnyh genov v fiziologicheskih i patologicheskih usloviyah. Cell and Tissue Biology. 1997;(1): 80-83. (In Russ.)]
  18. Туганова Т.Н., Болгова Л.С., Махортова Н.Г., Алексеенко О.И. Диагностический алгоритм цитологического исследования фиброаденом и рака молочной железы // Онкология. – 2007. – Т. 9. – № 4. – С. 315–320. [Tuganova TN, Bolgova LS, Mahortova NG, Alekseenko OI. Diagnostic algorithm of cytologic examination of fibroadenomas and breast cancer. Oncology. 2007;9(4):315-320. (In Russ.)]
  19. Derenzini M, Trere D, O’Donohue M-F, Ploton D. Interphase nucleolar organiser regions in tumour pathology. Chapter 7. In: Crocker J, Murray PG, ed. Molecular biology in cellular pathology. John Wiley & Sons, Ltd.; 2003. Р. 137-152. https://doi.org/10.1002/0470867949.ch7.
  20. Frankowski KJ, Wang C, Patnaik S, et al. Metarrestin, a perinucleolar compartment inhibitor, effectively suppresses metastasis. Sci Transl Med. 2018;10(441): eaap8307. https://doi.org/10. 1126/scitranslmed.aap8307.
  21. Kanis MJ, Qiang W, Pineda M, et al. A small molecule inhibitor of the perinucleolar compartment, ML246, attenuates growth and spread of ovarian cancer. Gynecol Oncol Res Pract. 2018;5(7):1-9. https://doi.org/10.1186/s40661-018-0064-2.
  22. Вейко Н.Н., Терехов С.М., Шубаева Н.О., и др. «Ранний» и «поздний» ответ культивируемых фибробластов кожи здоровых доноров и больных ревматоидным артритом на окислительный стресс. Взаимосвязь между интенсивностью гибели клеток и количеством активных копий рибосомных генов // Молекулярная биология. – 2005. – Т. 39. – № 2. – С. 264–275. [Veiko NN, Terekhov SM, Shubaeva NO, et al. Vzaimosvyaz’ mezhdu intensivnost’yu gibeli kletok i kolichestvom aktivnykh kopiy ribosomnykh genov. Molecular Biology. 2005;39(2):264-275. (In Russ.)]
  23. Porokhovnik LN, Passekov VP, Gorbachevskaya NL, et al. Active ribosomal genes, translational homeostasis and oxidative stress in the pathogenesis of schizophrenia and autism. Psychiatr Genet. 2015;25(2):79-87. https://doi.org/10.1097/ypg.0000000000000076.
  24. Hungerford PA. Leukocytes cultured from small inocula of whole blood and the preparation of metaphase chromosomes by treatment with hypotonic KCl. Stain Techn. 1965;40(6):333-338. https://doi.org/10.3109/10520296509116440.
  25. Minina V, Sinitsky M, Druzhinin V, et al. Chromosome aberrations in peripheral blood lymphocytes of lung cancer patients exposed to radon and air pollution. Eur J Cancer Prev. 2016;27(1):6-12. https://doi.org/10.1097/CEJ. 0000000000000270.
  26. Howell WM, Black DA. Controlled silver-staining of nucleolus organizer regions with a protective colloidal developer: a1-step method. Experientia. 1980;36(8):1014-1015. https://doi.org/ 10.1007/BF01953855.
  27. Moore JH, Gilbert JC, Tsai CT, et al. A flexible computational framework for detecting, characterizing, and interpreting statistical patterns of epistasis in genetic studies of human disease susceptibility. J Theor Biol. 2006;241(2):252-261. https://doi.org/10.1016/j.jtbi.2005.11.036.
  28. IGSR: The International Genome Sample Resource. Supporting open human variation data [cited 2020 March 18]. Available from: https://www.internationalgenome.org/.
  29. Ляпунова Н.А., Еголина Н.А., Цветкова Т.Г., и др. Рибосомные гены в геноме человека: вклад в генетическую индивидуальность и фенотипической проявление дозы гена // Вестник РАМН. – 2000. – № 5. – С. 19–23. [Lyapunova NA, Egolina NA, Tsvetkova TG, et al. Ribosomnye geny v genome cheloveka: vklad v geneticheskuyu individual’nost’ i fenotipicheskoy proyavlenie dozy gena. Annals of the Russian Academy of Medical Sciences. 2000;(5):19-23. (In Russ.)]
  30. Волобаев В.П., Синицкий М.Ю., Кулемин Ю.Е. Цитогенетический статус шахтеров угольных шахт с легочными профессиональными заболеваниями и влияние на него аллелей генов XPD и XPG // Экологическая генетика. – 2015. – Т. 13. – № 4. – С. 12–15. [Volobaev VP, Sinitsky MYu, Kulemin YuE. Cytogenetic status in coal-miners with occupational pulmonary diseases and influence the polymorphisms of XPD and XPG genes. Ecological genetics. 2015;13(4):12-15. (In Russ.)]. https://doi.org/org/10.1781/ecogen13412-15.
  31. Harms C, Salama SA, Sierra-Torres CH, et al. Polymorphisms in DNA repair genes, chromosome aberrations and lung cancer. Environ Mol Mutagen. 2004;44(1):74-82. https://doi.org/10.1002/em.20031.
  32. Сальникова Л.Е., Чумаченко А.Г., Веснина И.Н., и др. Полиморфизм генов репарации и цитогенетические эффекты облучения // Радиационная биология. Радиоэкология. –2010. –Т. 50. –№ 6. – С. 656–662. [Sal’nikova LE, Chumachenko AG, Vesnina IN, et al. Polymorphism of repair genes and cytogenetic radiation effects. Radiobiology and Radioecology. 2010;50(6):656-662. (In Russ.)]. https://doi.org/10.1134/s0006350911020266.
  33. Trego Kelly S. Non-catalytic roles for XPG with BRCA1 and BRCA2 in homologous recombination and genome stability. Mol Cell. 2016;61(4):535-546. https://doi.org/10.1016/j.molcel.2015.12.026.
  34. Musak L, Polakova V, Halasova E, et al. Effect of occupational exposure to cytostatics and nucleotide excision repair polymorphism on chromosomal aberrations frequency. Interdiscip Toxicol. 2009;2(1):13-17. https://doi.org/10.2478/v10102-009-0002-6.
  35. Sinitsky MY, Larionov AV, Asanov MA, Druzhinin VG. Associations of DNA-repair gene polymorphisms with a genetic susceptibility to ionizing radiation in residents of areas with high radon (222Rn) concentration. Int J Radiat Biol. 2015;91(6):486-494. https://doi.org/10.3109/09553002.2015.1012306.
  36. Минина В.И., Дружинин В.Г. Геномные дозы активных генов рРНК у рабочих коксохимического производства // Генетика. – 2004. – Т. 40. – № 12. – С. 1702–1708. [Minina VI, Druzhinin VG. Genomic dosages of active rRNA genes in coke-oven workers. Russian Journal of Genetics. 2004;40(12):1702-1708. (In Russ.)]. https://doi.org/10.1007/s11177-005-0074-0.
  37. Тимофеева А.А, Минина В.И., Дружинин В.Г., и др. Цитогенетические эффекты сверхнормативного воздействия радона в зависимости от индивидуальной дозы активных рибосомных генов // Экологическая генетика. –2017. –Т. 15. –№ 4. –С. 33–40. [Timofeeva AA, Minina VI, Druzhinin VG, et al. Cytogenetic effects of excessive radon exposure depending on the individual dosage of active ribosomal genes. Ecological genetics. 2017;15(4):33-40. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17816/ecogen15433-40.
  38. Викторова Т.В., Хуснутдинова Э.К., Викторов В.В., и др. Анализ хромосомных аберраций и ядрышкообразующих районов хромосом у рабочих производства пиромеллитового диангидрида: о возможной адаптивной роли вариантов Ag-ЯОР // Генетика. – 1994. – Т. 30. – № 7. – С. 992–998. [Viktorova TV, Khusnutdinova EK, Viktorov VV, et al. Analiz khromosomnykh aberratsiy i yadryshkoobrazuyushchikh raionov khromosom u rabochikh proizvodstva piromellitovogo diangidrida: o vozmozhnoy adaptivnoy roli variantov Ag-YaOR. Russian Journal of Genetics. 1994;30(7):992-998. (In Russ.)]
  39. Амелина И.В., Медведев И.Н. Частота хромосомных аберраций и активность ядрышкообразующих районов хромосом у человека // Фундаментальные исследования. –2007. –№ 1. –С. 33–35. [Amelina IV, Medvedev IN. Chastota khromosomnykh aberratsiy i aktivnost’ yadryshkoobrazuyushchikh raionov khromosom u cheloveka. Fundamental’nie issledovaniia. 2007;(1):33-35. (In Russ.)]
  40. Grewal SI, Jia ST. Heterochromatin revisited. Nat Rev Genet. 2007;8(1):35-46. https://doi.org/10.1038/nrg2008.
  41. Killen MW, Stults DM, Adachi N, et al. Loss of Bloom syndrome protein destabilizes human gene cluster architecture. Hum Mol Genet. 2009;18(18):3417-3428. https://doi.org/10. 1093/hmg/ddp282.
  42. Hallgren J, Pietrzak M, Rempala G, et al. Neurodegeneration-associated instability of ribosomal DNA. Biochim Biophys Acta. 2014;1842(6): 860-868. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2013. 12.012.
  43. Pietrzak M, Rempala G, Nelson PT, et al. Epigenetic silencing of nucleolar rRNA genes in Alzheimer’s disease. PLoS One. 2011;6(7): e22585. https://doi.org/10.1371/journal.pone. 0022585.
  44. Parlato R, Kreiner G. Nucleolar activity in neurodegenerative diseases: a missing piece of the puzzle? J Mol Med (Berl). 2013;91(5): 541-547. https://doi.org/10.1007/s00109-012-0981-1.
  45. MacLeod RA, Spitzer D, Bar-Am I, et al. Karyotypic dissection of Hodgkin’s disease cell lines reveals ectopic subtelomeres and ribosomal DNA at sites of multiple jumping translocations and genomic amplification. Leukemia. 2000;14(10): 1803-14. https://doi.org/10.1038/sj.leu.2401894.
  46. Ляпунова Н.А., Пороховник Л.Н., Косякова Н.В., и др. Жизнеспособность носителей хромосомных аномалий зависит от геномной дозы активных рибосомных генов (генов рРНК) // Генетика. – 2017. – Т. 53. – № 6. – С. 722–731. [Lyapunova NA, Porokhovnik LN, Kosyakova NV, et al. Viability of carriers of chromosomal abnormalities depends on genomic dosage of active ribosomal genes (rRNA Genes). Russian Journal of Genetics. 2017;53(6):722-731. (In Russ.)]. https://doi.org/10.7868/S0016675817060091.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Частота одиночных фрагментов хромосом у шахтеров с различной дозой активных рибосомных генов (АкРГ). *p = 0,016, отличие от шахтеров с низкой дозой АкРГ

Скачать (31KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Частота хромосомных аберраций в зависимости от полиморфизма гена XPD и дозы активных рибосомных генов

Скачать (83KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Кластерный анализ межгенных взаимодействий при формировании хромосомных нарушений в общей выборке шахтеров. Короткие линии указывают на сильное взаимодействие генных локусов; длинные — на слабую связь; светло-серым и темно-серым — дублирование эффектов между локусами

Скачать (11KB)
Метаданные

© Тимофеева А.А., Минина В.И., Астафьева Е.А., Головина Т.А., Федосеев В.И., Рыжкова А.В., Соболева О.А., Савченко Я.А., Баканова М.Л., Глушков А.А., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах