Апо-форма рекомбинантного лактоферрина человека изменяет уровень полногеномного метилирования ДНК и степень компактизации хроматина в клеточной линии нейробластомы IMR-32
- Авторы: Сучкова И.О.1, Шарруф К.А.1, Сасина Л.К.1, Дергачева Н.И.1, Баранова Т.В.1, Паткин Е.Л.1
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 22, № 4 (2022)
- Страницы: 77-96
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://journals.rcsi.science/MAJ/article/view/131490
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ112498
- ID: 131490
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Нейробластома — одна из часто встречающихся экстракраниальных солидных опухолей детского возраста. На современном этапе значительную роль в развитии новообразований отводят эпигенетическим нарушениям. Поскольку процесс эпигенетических изменений в клетке достаточно динамичен и обратим, то актуально выявление экзогенных веществ, способных влиять на эпигеном и которые могут быть использованы для эпигенетической таргетной терапии различных типов опухолей. Одним из таких потенциальных молекул является лактоферрин. В настоящее время описаны противоопухолевые свойства этого белка из семейства трансферринов, однако практически не известно о его влиянии на эпигеном клеток различных типов новообразований, в том числе нейробластомы.
Цель — исследовать влияние апо-формы экзогенного рекомбинантного лактоферрина человека на жизнеспособность и эпигеномный статус клеток нейробластомы IMR-32.
Материалы и методы. В работе исследованы клетки нейробластомы человека линии IMR-32 после 72 ч воздействия 8 доз рекомбинантного аполактоферрина человека: 0,1, 0,5, 1, 5, 10, 50, 100 и 500 мкг/мл. Проведена количественная оценка уровня полногеномного метилирования ДНК и степени компактизации хроматина в клетках IMR-32 с использованием коммерческих наборов 5-mC DNA ELISA Kit, Global DNA Methylation – LINE-1 Kit, а также ферментативного гидролиза MspI / HpaII и DNaseI.
Результаты. Обнаружено, что рекомбинантный аполактоферрин снижает жизнеспособность IMR-32 и в зависимости от дозы дифференциально влияет на уровень полногеномного метилирования ДНК (СpG-динуклеотидов, CCGG-сайтов, LINE-1-повторов) и степень компактизации хроматина. При этом наблюдается сложная картина эпигеномного клеточного ответа на воздействие аполактоферрина (нелинейная немонотонная зависимость доза – эффект).
Заключение. Предполагается, что аполактоферрин способен модулировать активность генов через эпигенетические механизмы, в частности изменяя паттерн метилирования ДНК и влияя на структуру хроматина, что может быть одним из молекулярных механизмов его противоопухолевого действия.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ирина Олеговна Сучкова
Институт экспериментальной медицины
Автор, ответственный за переписку.
Email: irsuchkova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2127-0459
SPIN-код: 4155-7314
Scopus Author ID: 6602838276
ResearcherId: H-4484-2014
канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории молекулярной цитогенетики развития млекопитающих отдела молекулярной генетики
Россия, Санкт-ПетербургКинда Али Шарруф
Институт экспериментальной медицины
Email: kinda996@yahoo.com
ORCID iD: 0000-0003-0926-0549
магистр биологии, аспирант лаборатории молекулярной цитогенетики развития млекопитающих отдела молекулярной генетики
Россия, Санкт-ПетербургЛюдмила Константиновна Сасина
Институт экспериментальной медицины
Email: sassinal@googlemail.com
ORCID iD: 0000-0002-5848-5544
SPIN-код: 6374-1649
Scopus Author ID: 6602092195
ResearcherId: J-8619-2018
канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории молекулярной цитогенетики развития млекопитающих отдела молекулярной генетики
Россия, Санкт-ПетербургНаталья Игоревна Дергачева
Институт экспериментальной медицины
Email: natalia-9999@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1643-9558
SPIN-код: 3343-2970
Scopus Author ID: 57198516110
ResearcherId: J-8543-2018
магистр биологии, научный сотрудник лаборатории молекулярной цитогенетики развития млекопитающих отдела молекулярной генетики
Россия, Санкт-ПетербургТатьяна Валерьевна Баранова
Институт экспериментальной медицины
Email: tanjabaranova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8269-8881
SPIN-код: 1356-1402
Scopus Author ID: 57205972796
канд. биол. наук, младший научный сотрудник лаборатории молекулярной цитогенетики развития млекопитающих отдела молекулярной генетики
Россия, Санкт-ПетербургЕвгений Львович Паткин
Институт экспериментальной медицины
Email: elp44@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6292-4167
SPIN-код: 4929-4630
Scopus Author ID: 7003713993
ResearcherId: J-7779-2013
д-р биол. наук, профессор, заведующий лабораторией молекулярной цитогенетики развития млекопитающих отдела молекулярной генетики
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Строганова А.М., Карселадзе А.И. Нейробластома: морфологическая структура, молекулярно-генетические особенности и прогностические факторы // Успехи молекулярной онкологии. 2016. Т. 3, № 1. С. 32–43. doi: 10.17650/2313-805X.2016.3.1.32-43
- Gómez S., Castellano G., Mayol G. et al. DNA methylation fingerprint of neuroblastoma reveals new biological and clinical insights // Genome Data. 2015. Vol. 5. P. 360–363. doi: 10.1016/j.gdata.2015.07.016
- Campos Cogo S., Gradowski Farias da Costa do Nascimento T., de Almeida Brehm Pinhatti F. et al. An overview of neuroblastoma cell lineage phenotypes and in vitro models // Exp. Biol. Med. (Maywood). 2020. Vol. 245, No. 18. P. 1637–1647. doi: 10.1177/1535370220949237
- Fetahu I.S., Taschner-Mandl S. Neuroblastoma and the epigenome // Cancer Metastasis Rev. 2021. Vol. 40, No. 1. P. 173–189. doi: 10.1007/s10555-020-09946-y
- Yang Q., Tian Y., Ostler K.R. et al. Epigenetic alterations differ in phenotypically distinct human neuroblastoma cell lines // BMC Cancer. 2010. Vol. 10. P. 286. doi: 10.1186/1471-2407-10-286
- Jubierre L., Jiménez C., Rovira E. et al. Targeting of epigenetic regulators in neuroblastoma // Exp. Mol. Med. 2018. Vol. 50, No. 4. P. 1–12. doi: 10.1038/s12276-018-0077-2
- Upton K., Modi A., Patel K. et al. Epigenomic profiling of neuroblastoma cell lines // Sci. Data. 2020. Vol. 7, No. 1. P. 116. doi: 10.1038/s41597-020-0458-y
- Yáñez Y., Grau E., Rodríguez-Cortez V.C. et al. Two independent epigenetic biomarkers predict survival in neuroblastoma // Clin. Epigenetics. 2015. Vol. 7, No. 1. P. 16. doi: 10.1186/s13148-015-0054-8
- Olsson M., Beck S., Kogner P. et al. Genome-wide methylation profiling identifies novel methylated genes in neuroblastoma tumors // Epigenetics. 2016. Vol. 11, No. 1. P. 74–84. doi: 10.1080/15592294.2016.1138195
- Kiss N.B., Kogner P., Johnsen J.I. et al. Quantitative global and gene-specific promoter methylation in relation to biological properties of neuroblastomas // BMC Med. Genet. 2012. Vol. 13. P. 83. doi: 10.1186/1471-2350-13-83
- Gómez S., Castellano G., Mayol G. et al. DNA methylation fingerprint of neuroblastoma reveals new biological and clinical insights // Epigenomics. 2015. Vol. 7, No. 7. P. 1137–1153. doi: 10.2217/epi.15.49
- Muotri A.R., Marchetto M.C., Coufal N.G. et al. L1 retrotransposition in neurons is modulated by MeCP2 // Nature. 2010. Vol. 468, No. 7322. P. 443–446. doi: 10.1038/nature09544
- Giorgi G., Marcantonio P., Del Re B. LINE-1 retrotransposition in human neuroblastoma cells is affected by oxidative stress // Cell Tissue Res. 2011. Vol. 346, No. 3. P. 383–391. doi: 10.1007/s00441-011-1289-0
- Jönsson M.E., Ludvik Brattås P., Gustafsson C. et al. Activation of neuronal genes via LINE-1 elements upon global DNA demethylation in human neural progenitors // Nat. Commun. 2019. Vol. 10, No. 1. P. 3182. doi: 10.1038/s41467-019-11150-8
- Dyachenko O.V., Schevchuk T.V., Kretzner L. et al. Human non-CG methylation: are human stem cells plant-like? // Epigenetics. 2010. Vol. 5, No. 7. P. 569–572. doi: 10.4161/epi.5.7.12702
- Whongsiri P., Pimratana C., Wijitsettakul U. et al. Oxidative stress and LINE-1 reactivation in bladder cancer are epigenetically linked through active chromatin formation // Free Radic. Biol. Med. 2019. Vol. 134. P. 419–428. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2019.01.031
- Ak T., Gülçin I. Antioxidant and radical scavenging properties of curcumin // Chem. Biol. Interact. 2008. Vol. 174, No. 1. P. 27–37. doi: 10.1016/j.cbi.2008.05.003
- Zhai K., Brockmüller A., Kubatka P. Curcumin’s beneficial effects on neuroblastoma: Mechanisms, challenges, and potential solutions // Biomolecules. 2020. Vol. 10, No. 11. P. 1469. doi: 10.3390/biom10111469
- Борзенкова Н.В., Балабушевич Н.Г., Ларионова Н.И. Лактоферрин: физико-химические свойства, биологические функции, системы доставки, лекарственные препараты и биологически активные добавки (обзор) // Биофармацевтический журнал. 2010. Т. 2, № 3. С. 3–19.
- Hao L., Shan Q., Wei J. et al. Lactoferrin: major physiological functions and applications // Curr. Protein Pept. Sci. 2019. Vol. 20, No. 2. P. 139–144. doi: 10.2174/1389203719666180514150921
- Алешина Г.М. Лактоферрин — эндогенный регулятор защитных функций организма // Медицинский академический журнал. 2019. Т. 19, № 1. С. 35–44. doi: 10.17816/MAJ19135-44
- Zakharova E.T., Kostevich V.A., Sokolov A.V., Vasilyev V.B. Human apo-lactoferrin as a physiological mimetic of hypoxia stabilizes hypoxia-inducible factor-1 alpha // Biometals. 2012. Vol. 25, No. 6. P. 1247–1259. doi: 10.1007/s10534-012-9586-y
- Sokolov A.V., Dubrovskaya N.M., Kostevich V.A. et al. Lactoferrin Induces erythropoietin synthesis and rescues cognitive functions in the offspring of rats subjected to prenatal hypoxia // Nutrients. 2022. Vol. 14, No. 7. P. 1399. doi: 10.3390/nu14071399
- Suzuki Y.A., Lopez V., Lönnerdal B. Mammalian lactoferrin receptors: structure and function // Cell Mol. Life Sci. 2005. Vol. 62, No. 22. P. 2560–2575. doi: 10.1007/s00018-005-5371-1
- Li Y.Q., Guo C. A review on lactoferrin and central nervous system diseases // Cells. 2021. Vol. 10, No. 7. P. 1810. doi: 10.3390/cells10071810
- García-Montoya I.A., Cendón T.S., Arévalo-Gallegos S., Rascón-Cruz Q. Lactoferrin a multiple bioactive protein: an overview // Biochim. Biophys. Acta. 2012. Vol. 1820, No. 3. P. 226–236. doi: 10.1016/j.bbagen.2011.06.018
- Gibbons J.A., Kanwar R.K., Kanwar J.R. Lactoferrin and cancer in different cancer models // Front. Biosci. (Schol Ed). 2011. Vol. 3, No. 3. P. 1080–1088. doi: 10.2741/212
- Zhang Y., Lima C.F., Rodrigues L.R. Anticancer effects of lactoferrin: underlying mechanisms and future trends in cancer therapy // Nutr. Rev. 2014. Vol. 72, No. 12. P. 763–773. doi: 10.1111/nure.12155
- Iijima H., Tomizawa Y., Iwasaki Y. et al. Genetic and epigenetic inactivation of LTF gene at 3p21.3 in lung cancers // Int. J. Cancer. 2006. Vol. 118, No. 4. P. 797–801. doi: 10.1002/ijc.21462
- Mariller C., Hardivillé S., Hoedt E. et al. Delta-lactoferrin, an intracellular lactoferrin isoform that acts as a transcription factor // Biochem. Cell Biol. 2012. Vol. 90, No. 3. P. 307–319. doi: 10.1139/o11-070
- Porter C.M., Haffner M.C., Kulac I. et al. Lactoferrin CpG island hypermethylation and decoupling of mRNA and protein expression in the early stages of prostate carcinogenesis // Am. J. Pathol. 2019. Vol. 189, No. 11. P. 2311–2322. doi: 10.1016/j.ajpath.2019.07.016
- Zhou Y., Zeng Z., Zhang W. et al. Lactotransferrin: a candidate tumor suppressor-deficient expression in human nasopharyngeal carcinoma and inhibition of NPC cell proliferation by modulating the mitogen-activated protein kinase pathway // Int. J. Cancer. 2008. Vol. 123, No. 9. P. 2065–2072. doi: 10.1002/ijc.23727
- Zalutskii I.V., Lukianova N.Y., Storchai D.M. et al. Influence of exogenous lactoferrin on the oxidant/antioxidant balance and molecular profile of hormone receptor-positive and -negative human breast cancer cells in vitro // Exp. Oncol. 2017. Vol. 39, No. 2. P. 106–111.
- Li H.Y., Li P., Yang H.G. et al. Investigation and comparison of the anti-tumor activities of lactoferrin, α-lactalbumin, and β-lactoglobulin in A549, HT29, HepG2, and MDA231-LM2 tumor models // J. Dairy Sci. 2019. Vol. 102, No. 11. P. 9586–9597. doi: 10.3168/jds.2019-16429
- Li H., Yao Q., Min L. et al. The combination of two bioactive constituents, lactoferrin and linolenic acid, inhibits mouse xenograft esophageal tumor growth by downregulating lithocholyltaurine and inhibiting the JAK2/STAT3-related pathway // ACS Omega. 2020. Vol. 5, No. 33. P. 20755–20764. doi: 10.1021/acsomega.0c01132
- Elizarova A., Sokolov A., Kostevich V. et al. Interaction of lactoferrin with unsaturated fatty acids: in vitro and in vivo study of human lactoferrin/oleic acid complex cytotoxicity // Materials (Basel). 2021. Vol. 14, No. 7. P. 1602. doi: 10.3390/ma14071602
- Cutone A., Rosa L., Ianiro G. et al. Lactoferrin’s anti-cancer properties: safety, selectivity, and wide range of action // Biomolecules. 2020. Vol. 10, No. 3. P. 456. doi: 10.3390/biom10030456
- Eliassen L.T., Berge G., Leknessund A. et al. The antimicrobial peptide, lactoferricin B, is cytotoxic to neuroblastoma cells in vitro and inhibits xenograft growth in vivo // Int. J. Cancer. 2006. Vol. 119, No. 3. P. 493–500. doi: 10.1002/ijc.21886
- Arcella A., Oliva M.A., Staffieri S. et al. In vitro and in vivo effect of human lactoferrin on glioblastoma growth // J. Neurosurg. 2015. Vol. 123, No. 4. P. 1026–1035. doi: 10.3171/2014.12.JNS14512
- Verduci E., Banderali G., Barberi S. et al. Epigenetic effects of human breast milk // Nutrients. 2014. Vol. 6, No. 4. P. 1711–1724. doi: 10.3390/nu6041711
- Zhang T.N., Liu N. Effect of bovine lactoferricin on DNA methyltransferase 1 levels in Jurkat T-leukemia cells // J. Dairy Sci. 2010. Vol. 93, No. 9. P. 3925–3930. doi: 10.3168/jds.2009-3024
- Lebedev D.V., Zabrodskaya Y.A., Pipich V. et al. Effect of alpha-lactalbumin and lactoferrin oleic acid complexes on chromatin structural organization // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2019. Vol. 520, No. 1. P. 136–139. doi: 10.1016/j.bbrc.2019.09.116
- Jögi A., Øra I., Nilsson H. et al. Hypoxia alters gene expression in human neuroblastoma cells toward an immature and neural crest-like phenotype // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2002. Vol. 99, No. 10. P. 7021–7026. doi: 10.1073/pnas.102660199
- Westerlund I., Shi Y., Toskasa K. et al. Combined epigenetic and differentiation-based treatment inhibits neuroblastoma tumor growth and links HIF2α to tumor suppression // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2017. Vol. 114, No. 30. P. e6137–e6146. doi: 10.1073/pnas.1700655114
- Camuzi D., de Amorim Í., Ribeiro Pinto L.F. et al. Regulation is in the air: the relationship between hypoxia and epigenetics in cancer // Cells. 2019. Vol. 8, No. 4. P. 300. doi: 10.3390/cells8040300
- D’Anna F., Van Dyck L., Xiong J. et al. DNA methylation repels binding of hypoxia-inducible transcription factors to maintain tumor immunotolerance // Genome Biol. 2020. Vol. 21, No. 1. P. 182. doi: 10.1186/s13059-020-02087-z
- Шаруфф К.А., Сучкова И.О. Влияние лактоферрина на эпигенетические характеристики клеток млекопитающих разного типа // Медицинский академический журнал. 2021. Т. 21. № 1. С. 85–95. doi: 10.17816/MAJ6410
- Лебедев Т.Д., Спирин П.В., Орлова Н.Н. и др. Сравнительный анализ экспрессии генов-мишеней противоопухолевой терапии, в клеточных линиях нейробастомы // Молекулярная биология. 2015. Т. 49, № 6. С. 1048–1051. doi: 10.7868/S0026898415050225
- Harenza J.L., Diamond M.A., Adams R.N. et al. Transcriptomic profiling of 39 commonly-used neuroblastoma cell lines // Sci. Data. 2017. Vol. 4. P. 170033. doi: 10.1038/sdata.2017.33
- Ram Kumar R.M., Schor N.F. Methylation of DNA and chromatin as a mechanism of oncogenesis and therapeutic target in neuroblastoma // Oncotarget. 2018. Vol. 9, No. 31. P. 22184–22193. doi: 10.18632/oncotarget.25084
- Полянская Г.Г., Сакута Г.А., Еропкин М.Ю. и др. Каталог российской коллекции клеточных культур позвоночных (РККК П) [Электронный ресурс]. Санкт-Петербург, 2018. Режим доступа: https://incras.ru/wp-content/uploads/2022/05/katalog_rccc_v_2018_rus.pdf. Дата обращения 10.02.2022.
- Lee J-M., Anderson P.C., Padgitt J.K. et al. Nrf2, not the estrogen receptor, mediates catechol estrogen-induced activation of the antioxidant responsive element // Biochim. Biophys. Acta. 2003. Vol. 1629, No. 1–3. P. 92–101. doi: 10.1016/j.bbaexp.2003.08.006
- Su C., Rybalchenko N., Schreihofer D.A. et al. Cell models for the study of sex steroid hormone neurobiology // J. Steroids Horm. Sci. 2012. Vol. S2. P. 003. doi: 10.4172/2157-7536.s2-003
- El-Maarri O., Walier M., Behne F. et al. Methylation at global LINE-1 repeats in human blood are affected by gender but not by age or natural hormone cycles // PLoS One. 2011. Vol. 6, No. 1. P. e16252. doi: 10.1371/journal.pone.0016252
- Hsu C.C., Leu Y.W., Tseng M.J. et al. Functional characterization of Trip10 in cancer cell growth and survival // J. Biomed. Sci. 2011. Vol. 18. P. 12. doi: 10.1186/1423-0127-18-12
- Semak I., Budzevich A., Maliushkova E. et al. Development of dairy herd of transgenic goats as biofactory for large-scale production of biologically active recombinant human lactoferrin // Transgenic Res. 2019. Vol. 28, No. 5–6. P. 465–478. doi: 10.1007/s11248-019-00165-y
- Митрошина Е.В., Мищенко Т.А., Ведунова М.В. Определение жизнеспособности клеточных культур: учебно-методическое пособие. Нижний Новгород: Нижегородский госуниверситет им. Н.И. Лобачевского, 2015.
- Suguna S., Nandal D.H., Kamble S. et al. Genomic DNA isolation from human whole blood samples by non-enzymatic salting out method // Int. J. Pharm. Pharmac. Sci. 2014. Vol. 6, No. 6. P. 198–199.
- zymoresearch.com [Электронный ресурс] 5-mC DNA ELISA Kit. Режим доступа: https://www.zymoresearch.com/products/ 5-mc-dna-elisa-kit. Дата обращения: 04.05.2022.
- Suchkova I.O., Sasina L.K., Dergacheva N.I. et al. The influence of low dose bisphenol A on whole genome DNA methylation and chromatin compaction in different human cell lines // Toxicol in Vitro. 2019. Vol. 58. P. 26–34. doi: 10.1016/j.tiv.2019.03.010
- Schneider C.A., Rasband W.S., Eliceiri K.W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis // Nat. Methods. 2012. Vol. 9, No. 7. P. 671–675. doi: 10.1038/nmeth.2089
- Ling G., Waxman D.J. DNase I digestion of isolated nulcei for genome-wide mapping of DNase hypersensitivity sites in chromatin // Methods Mol. Biol. 2013. Vol. 977. P. 21–33. doi: 10.1007/978-1-62703-284-1_3
- Lu Q., Richardson B. DNase I hypersensitivity analysis of chromatin structure // Methods Mol. Biol. 2004. Vol. 287. P. 77–86. doi: 10.1385/1-59259-828-5:077
- Keuser B., Khobta A., Galle K. et al. Influences of histone deacetylase inhibitors and resveratrol on DNA repair and chromatin compaction // Mutagenesis. 2013. Vol. 28, No. 5. P. 569–576. doi: 10.1093/mutage/get034
- VassarStats. Website for statistical computation [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://vassarstats.net. Дата обращения: 08.03.2022.
- Statistics Kingdom [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://www.statskingdom.com. Дата обращения: 08.03.2022.
- BoxPlot online [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://www.physics.csbsju.edu/stats/bulk.stats.n.plot_NGROUP_form.html. Дата обращения: 15.12.2020.
- Navendu Vasavada. Online web statistical calculators. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://astatsa.com. Дата обращения: 05.04.2022.
- МНК и регрессионный анализ Онлайн [Электронный ресурс] // Математический форум Math Help Planet. Режим доступа: http://mathhelpplanet.com/static.php?p=onlayn-mnk-i-regressionniy-analiz. Дата обращения: 05.04.2022.
- Уравнение нелинейной регрессии онлайн [Электронный ресурс] // ООО Новый семестр. Режим доступа: https://math.semestr.ru/corel/noncorel.php. Дата обращения: 05.04.2022.
- Wessa P. Free Statistics Software. Office for Research Development and Education. version 1.2.1 [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.wessa.net. Дата обращения: 05.04.2022.
- Wessa P. Multivariate Correlation Matrix (v1.0.11) in Free Statistics Software (v1.2.1), Office for Research Development and Education. 2016. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.wessa.net/rwasp_pairs.wasp. Дата обращения: 05.04.2022.
- Polynomial Regression Calculator [Электронный ресурс] // Stats Blue. Режим доступа: https://stats.blue/Stats_Suite/polynomial_regression_calculator.html. Дата обращения: 13.10.2022.
- Yanaihara A., Toma Y., Saito H., Yanaihara T. Cell proliferation effect of lactoferrin in human endometrial stroma cells // Mol. Hum. Reprod. 2000. Vol. 6, No. 5. P. 469–473. doi: 10.1093/molehr/6.5.469
- Lorget F., Clough J., Oliveira M. et al. Lactoferrin reduces in vitro osteoclast differentiation and resorbing activity // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2002. Vol. 296, No. 2. P. 261–266. doi: 10.1016/s0006-291x(02)00849-5
- Buccigrossi V., de Marco G., Bruzzese E. et al. Lactoferrin induces concentration-dependent functional modulation of intestinal proliferation and differentiation // Pediatr. Res. 2007. Vol. 61, No. 4. P. 410–414. doi: 10.1203/pdr.0b013e3180332c8d
- Jiang R., Lopez V., Kelleher S.L., Lönnerdal B. Apo- and holo-lactoferrin are both internalized by lactoferrin receptor via clathrin-mediated endocytosis but differentially affect ERK-signaling and cell proliferation in Caco-2 cells // J. Cell Physiol. 2011. Vol. 226, No. 11. P. 3022–3031. doi: 10.1002/jcp.2265
- Бабушкина Н.А., Островская Л.А., Рыкова В.А. и др. Моделирование эффективности действия противоопухолевых препаратов в сверхмалых дозах для оптимизации режимов введения // Проблемы управления. 2005. Т. 4. С. 47–54.
- Генераленко Н.Ю., Крюкова Л.Ю., Пушкин И.А. Эффекты малых и сверхмалых доз биологически активных веществ // Научные и образовательные проблемы гражданской защиты. 2010. № 3. С. 6–7.
- Bellavite P., Ortolani R., Pontarollo F. et al. Immunology and homeopathy. 5. The rationale of the ‘Simile’ // Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2007. Vol. 4, No. 2. P. 149–163. doi: 10.1093/ecam/nel117
- Utsugi T., Schroit A.J., Connor J. et al. Elevated expression of phosphatidylserine in the outer membrane leaflet of human tumor cells and recognition by activated human blood monocytes // Cancer Res. 1991. Vol. 51, No. 11. P. 3062–3066.
- Damiens E., El Yazidi I., Mazurier J. et al. Role of heparan sulphate proteoglycans in the regulation of human lactoferrin binding and activity in the MDA-MB-231 breast cancer cell line // Eur. J. Cell Biol. 1998. Vol. 77, No. 4. P. 344–351. doi: 10.1016/S0171-9335(98)80093-9
- Antequera F. Structure, function and evolution of CpG island promoters // Cell Mol. Life Sci. 2003. Vol. 60, No. 8. P. 1647–1658. doi: 10.1007/s00018-003-3088-6
- Lakshminarasimhan R., Liang G. The role of DNA methylation in cancer // Adv. Exp. Med. Biol. 2016. Vol. 945. P. 151–172. doi: 10.1007/978-3-319-43624-1_7
- Ball M.P., Li J.B., Gao Y. et al. Targeted and genome-scale strategies reveal gene-body methylation signatures in human cells // Nat. Biotechnol. 2009. Vol. 27, No. 4. P. 361–368. doi: 10.1038/nbt.1533
- Fazzari M.J., Greally J.M. Epigenomics: beyond CpG islands // Nat. Rev. Genet. 2004. Vol. 5, No. 6. P. 446–455. doi: 10.1038/nrg1349
- Kulis M., Queirós A.C., Beekman R., Martín-Subero J.I. Intragenic DNA methylation in transcriptional regulation, normal differentiation and cancer // Biochim. Biophys. Acta. 2013. Vol. 1829, No. 11. P. 1161–1174. doi: 10.1016/j.bbagrm.2013.08.001
- Lou S., Lee H.M., Qin H. et al. Whole-genome bisulfite sequencing of multiple individuals reveals complementary roles of promoter and gene body methylation in transcriptional regulation // Genome Biol. 2014. Vol. 15, No. 7. P. 408. doi: 10.1186/s13059-014-0408-0
- Nagarajan R.P., Zhang B., Bell R.J. et al. Recurrent epimutations activate gene body promoters in primary glioblastoma // Genome Res. 2014. Vol. 24, No. 5. P. 761–774. doi: 10.1101/gr.164707.113
- Gurova K.V. Chromatin stability as a target for cancer treatment // Bioessays. 2019. Vol. 41, No. 1. P. e1800141. doi: 10.1002/bies.201800141
- Furmanski P., Li Z.P., Fortuna M.B. et al. Multiple molecular forms of human lactoferrin. Identification of a class of lactoferrins that possess ribonuclease activity and lack iron-binding capacity // J. Exp. Med. 1989. Vol. 170, No. 2. P. 415–429. doi: 10.1084/jem.170.2.415
- Talks K.L., Turley H., Gatter K.C. et al. The expression and distribution of the hypoxia-inducible factors HIF-1alpha and HIF-2alpha in normal human tissues, cancers, and tumor-associated macrophages // Am. J. Pathol. 2000. Vol. 157, No. 2. P. 411–421. doi: 10.1016/s0002-9440(10)64554-3
- Zhong H., De Marzo A.M., Laughner E. et al. Overexpression of hypoxia-inducible factor 1alpha in common human cancers and their metastases // Cancer Res. 1999. Vol. 59, No. 22. P. 5830–5835.
- Kostevich V.A., Sokolov A.V., Kozlov S.O. et al. Functional link between ferroxidase activity of ceruloplasmin and protective effect of apo-lactoferrin: studying rats kept on a silver chloride diet // Biometals. 2016. Vol. 29, No. 4. P. 691–704. doi: 10.1007/s10534-016-9944-2
- Ibuki M., Shoda C., Miwa Y. et al. Lactoferrin has a therapeutic effect // Front. Pharmacol. 2020. Vol. 11. P. 174. doi: 10.3389/fphar.2020.00174
Дополнительные файлы
