НЕСЕЛЕКТИВНАЯ ЭКСПРЕССИЯ КОРОТКОВОЛНОВОГО КОЛБОЧКОВОГО ОПСИНА УЛУЧШАЕТ ОБУЧЕНИЕ МЫШЕЙ С ДЕГЕНЕРАЦИЕЙ СЕТЧАТКИ В ЗАДАЧЕ С ВОСПРИЯТИЕМ ЗРИТЕЛЬНЫХ СТИМУЛОВ
- Авторы: Иджилова О.С.1,2, Колотова Д.Е.1,2, Смирнова Г.Р.1,2, Абонакур А.1,3, Долгих Д.А.2,4,5, Петровская Л.Е.4, Кирпичников М.П.4,5, Островский М.А.2,5, Малышев А.Ю.1
-
Учреждения:
- Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии Российской академии наук
- Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля Российской академии наук
- Московский физико-технический институт (национальный исследовательский университет)
- Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук
- Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
- Выпуск: Том 510, № 1 (2023)
- Страницы: 297-302
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.rcsi.science/2686-7389/article/view/135701
- DOI: https://doi.org/10.31857/S268673892360005X
- EDN: https://elibrary.ru/QHNHBW
- ID: 135701
Цитировать
Аннотация
Работа посвящена исследованию возможности использования нетаргетированной экспрессии животного опсина в различных нейрональных элементах дегенеративной сетчатки для восстановления нарушенной зрительной функции. В ходе исследования нокаутным мышам, являющимся моделью дегенеративных заболеваний сетчатки, была произведена интравитреальная инъекция суспензии вирусных частиц, несущих ген коротковолнового колбочкового опсина, связанного с репортерным флуоресцентным белком, или контрольных вирусов, несущих модифицированный флуоресцентный белок с повышенной тропностью к мембране. Было показано, что вирусная трансдукция вызывает выраженную экспрессию опсина в ганглиозных, биполярных и горизонтальных нейронах сетчатки. Поведенческие тестирования инъецированных мышей, проведенные в трапециевидном водном лабиринте Морриса, показали частичное восстановление возможности обучения в задаче с восприятием зрительных стимулов у животных, сетчатка которых была трансдуцирована колбочковым опсином.
Об авторах
О. С. Иджилова
Институт высшей нервной деятельностии нейрофизиологии Российской академии наук; Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля Российской академии наук
Email: malyshev@ihna.ru
Россия,
Москва; Россия, Москва
Д. Е. Колотова
Институт высшей нервной деятельностии нейрофизиологии Российской академии наук; Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля Российской академии наук
Email: malyshev@ihna.ru
Россия,
Москва; Россия, Москва
Г. Р. Смирнова
Институт высшей нервной деятельностии нейрофизиологии Российской академии наук; Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля Российской академии наук
Email: malyshev@ihna.ru
Россия,
Москва; Россия, Москва
А. Абонакур
Институт высшей нервной деятельностии нейрофизиологии Российской академии наук; Московский физико-технический институт (национальный исследовательский университет)
Email: malyshev@ihna.ru
Россия,
Москва; Россия, Долгопрудный, Московская область
Д. А. Долгих
Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля Российской академии наук; Институт биоорганической химииим. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова
Российской академии наук; Московский государственный университет
имени М.В. Ломоносова
Email: malyshev@ihna.ru
Россия, Москва; Россия, Москва; Россия, Москва
Л. Е. Петровская
Институт биоорганической химииим. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова
Российской академии наук
Email: malyshev@ihna.ru
Россия, Москва
М. П. Кирпичников
Институт биоорганической химииим. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова
Российской академии наук; Московский государственный университет
имени М.В. Ломоносова
Email: malyshev@ihna.ru
Россия, Москва; Россия, Москва
М. А. Островский
Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля Российской академии наук; Московский государственный университетимени М.В. Ломоносова
Email: malyshev@ihna.ru
Россия, Москва; Россия, Москва
А. Ю. Малышев
Институт высшей нервной деятельностии нейрофизиологии Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: malyshev@ihna.ru
Россия,
Москва
Список литературы
- Островский М.А., Кирпичников М.П. Перспективы оптогенетического протезирования дегенеративной сетчатки глаза // Биохимия, 2019. Т. 84. № 5. С. 634–647.
- Sahel J., Marazova K., Audo I. Clinical characteristics and current therapies for inherited retinal degenerations // Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine, 2014. V. 5. № 2. P. a017111.
- Bi A., Cui J., Ma Y., et al. Ectopic expression of a microbial-type rhodopsin restores visual responses in mice with photoreceptor degeneration // Neuron, 2006. V. 50. № 1. P. 23–33.
- Tomita H., Sugano E., Yawo H., et al. Restoration of visual response in aged dystrophic RCS rats using AAV-mediated channelopsin-2 gene transfer // Investigative Ophthalmology & Visual Science, 2007. V. 48. № 8. P. 3821–3826.
- Doroudchi M., Greenberg K., Liu J., et al. Virally delivered channelrhodopsin-2 safely and effectively restores visual function in multiple mouse models of blindness // Molecular Therapy, 2011. V. 19. № 7. P. 1220–1229.
- Prosseda P., Tran M., Kowal T., et al. Advances in Ophthalmic Optogenetics: Approaches and Applications // Biomolecules, 2022. V. 12. № 2. P. 269.
- Sahel J., Boulanger-Scemama E., Pagot C., et al. Partial recovery of visual function in a blind patient after optogenetic therapy // Nature Medicine, 2021. V. 27. P. 1223–1229.
- Lin B., Koizumi A., Tanaka N., et al. Restoration of visual function in retinal degeneration mice by ectopic expression of melanopsin // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2008. V. 105. № 41. P. 16009–16014.
- Berry M., Holt A., Salari A., et al. Restoration of high-sensitivity and adapting vision with a cone opsin // Nature Communications, 2019. V. 10. P. 1221.
- Cehajic-Kapetanovic J., Eleftheriou C., Allen A., et al. Restoration of Vision with Ectopic Expression of Human Rod Opsin // Current Biology, 2015. V. 25. № 16. P. 2111–2122.
- Ермолаева М.Э., Ротов А.Ю., Сопова Ю.В., и др. Механизмы дегенерации сетчатки при пигментном ретините – роль ответа на несвернутый белок. В сб.: Рецепторы и внутриклеточная сигнализация. Под редакцией А.В. Бережнова, В.П. Зинченко. Пущино: ФГБУН ФИЦ “Пущинский научный центр биологических исследований РАН”, 2021. С. 525–530.
- Bowes C., Li T., Danciger M., et al. Retinal degeneration in the rd mouse is caused by a defect in the beta subunit of rod cGMP-phosphodiesterase // Nature, 1990. V. 347. P. 677–680.
- Nishiguchi K., Carvalho L., Rizzi M., et al. Gene therapy restores vision in rd1 mice after removal of a confounding mutation in Gpr179 // Nature Communications, 2015. V. 6. № 1. P. 1–10.
- Prusky G., West P., Douglas R. Behavioral assessment of visual acuity in mice and rats // Vision Research, 2000. V. 40. № 16. P. 2201–2209.
- Gradinaru V., Zhang F., Ramakrishnan C., et al. Molecular and cellular approaches for diversifying and extending optogenetics // Cell, 2010. V. 141. №1. P. 154–165.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)