Роль эндогенного H2S при экспериментальном метаболическом синдроме
- Авторы: Бирулина Ю.Г.1, Иванов В.В.1, Буйко Е.Е.1, Воронкова О.В.1, Чернышов Н.А.1, Гусакова С.В.1
-
Учреждения:
- Сибирский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 28, № 3 (2024): ФИЗИОЛОГИЯ. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ФИЗИОЛОГИЯ
- Страницы: 331-339
- Раздел: ФИЗИОЛОГИЯ. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ФИЗИОЛОГИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/2313-0245/article/view/319748
- DOI: https://doi.org/10.22363/2313-0245-2024-28-3-331-339
- EDN: https://elibrary.ru/AFKRGE
- ID: 319748
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. Газовый трансмиттер сероводород (H2S) известен как сигнальная молекула, участвующая в регуляции многих клеточных функций в норме и при патологических состояниях. В последнее время активно изучаются биологические эффекты H2S при ожирении и метаболическом синдроме (МС) с позиции перспективы разработки фармакологических агентов, обеспечивающих патогенетически обоснованную коррекцию данного синдрома и ассоциированных с ним заболеваний. Цель работы состояла в изучении роли эндогенно продуцируемого H2S в патогенезе метаболических нарушений при экспериментальном МС. Материалы и методы. Моделирование диет-индуцированного МС выполняли на крысах-самцах Wistar с помощью высокожировой и высокоуглеводной диеты. У животных определяли массу тела и жировой ткани. В сыворотке крови измеряли показатели углеводного и липидного обмена с использованием наборов реагентов. В жировой ткани фотометрически анализировали уровень активных форм кислорода (АФК) и восстановленного глутатиона (GSH). Концентрацию H2S в сыворотке крови, жировой ткани и интенсивность его продукции регистрировали спектрофотометрически. Результаты и обсуждение. Установлено, что на фоне гипергликемии и инсулинорезистентности снижалась концентрация H2S в сыворотке крови, жировой ткани и интенсивность продукции H2S клетками жировой ткани. Выявлена отрицательная корреляция между содержанием H2S, его продукцией в жировой ткани крыс и массой висцеральной жировой ткани. Обнаружена отрицательная взаимосвязь между концентрацией глюкозы, инсулина, лептина, АФК и уровнем H2S в сыворотке крови и жировой ткани. Напротив, повышение GSH в жировой ткани прямо коррелировало с увеличением уровня H2S в сыворотке крови и клетках жировой ткани. Выводы. Несмотря на всестороннее изучение регуляторного действия H2S на функцию клеток-мишеней, сведения о его значимости в развитии и прогрессировании МС весьма неоднозначны и продолжают раскрываться. В нашей работе показано, что в условиях метаболической патологии происходит снижение сывороточной концентрации H2S и его продукции в жировой ткани, которое коррелирует с развитием ожирения, гипергликемии, инсулинемии, лептинемии, нарушением редокс-статуса.
Ключевые слова
Об авторах
Ю. Г. Бирулина
Сибирский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: birulina20@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1237-9786
SPIN-код: 4878-1005
г. Томск, Российская Федерация
В. В. Иванов
Сибирский государственный медицинский университет
Email: birulina20@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9348-4945
SPIN-код: 4961-9959
г. Томск, Российская Федерация
Е. Е. Буйко
Сибирский государственный медицинский университет
Email: birulina20@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6714-1938
SPIN-код: 6383-3580
г. Томск, Российская Федерация
О. В. Воронкова
Сибирский государственный медицинский университет
Email: birulina20@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9478-3429
SPIN-код: 8005-8110
г. Томск, Российская Федерация
Н. А. Чернышов
Сибирский государственный медицинский университет
Email: birulina20@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4008-5606
SPIN-код: 7863-9900
г. Томск, Российская Федерация
С. В. Гусакова
Сибирский государственный медицинский университет
Email: birulina20@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5047-8668
SPIN-код: 8973-8056
г. Томск, Российская Федерация
Список литературы
- Kolluru GK, Shen X, Yuan S, Kevil CG. Gasotransmitter Heterocellular Signaling. Antioxid Redox Signal. 2017;26(16):936-960. doi: 10.1089/ars.2016.6909
- Cirino G, Szabo C, Papapetropoulos A. Physiological roles of hydrogen sulfide in mammalian cells, tissues, and organs. Physiol Rev. 2023;103(1):231-276. doi: 10.1152/physrev.00028.2021
- Hendriks KD, Maassen H, van Dijk PR, Henning RH, van Goor H, Hillebrands JL. Gasotransmitters in health and disease: a mitochondria-centered view. Curr Opin Pharmacol. 2019;45:87-93. doi: 10.1016/j.coph.2019.07.001
- Liu YH, Lu M, Hu LF, Wong PT, Webb GD, Bian JS. Hydrogen sulfide in the mammalian cardiovascular system. Antioxid Redox Signal. 2012;17(1):141-185. doi: 10.1089/ars.2011.4005
- Nagpure BV, Bian JS. Brain, Learning, and Memory: Role of H2S in Neurodegenerative Diseases. Handb Exp Pharmacol. 2015;230:193-215. doi: 10.1007/978-3-319-18144-8_10
- Comas F, Moreno-Navarrete JM. The Impact of H2S on Obesity-Associated Metabolic Disturbances. Antioxidants (Basel). 2021;10(5):633. doi: 10.3390/antiox10050633
- Pandey T, Pandey V. Hydrogen sulfide (H2S) metabolism: Unraveling cellular regulation, disease implications, and therapeutic prospects for precision medicine. Nitric Oxide. 2024;144:20-28. doi: 10.1016/j.niox.2024.01.004
- Filipovic MR, Zivanovic J, Alvarez B, Banerjee R. Chemical Biology of H2S Signaling through Persulfidation. Chem Rev. 2018;118(3):1253-1337. doi: 10.1021/acs.chemrev.7b00205
- Wu Z, Barayeu U, Schilling D, Dick TP, Pratt DA. Emergence of (hydro)persulfides as suppressors of lipid peroxidation and ferroptotic cell death. Curr Opin Chem Biol. 2023;76:102353. doi: 10.1016/j.cbpa.2023.102353
- Bełtowski J, Wiórkowski K. Role of Hydrogen Sulfide and Polysulfides in the Regulation of Lipolysis in the Adipose Tissue: Possible Implications for the Pathogenesis of Metabolic Syndrome. Int J Mol Sci. 2022;23(3):1346. doi: 10.3390/ijms23031346
- Gheibi S., Jeddi S., Kashfi K., Ghasemi A. Effects of Hydrogen Sulfide on Carbohydrate Metabolism in Obese Type 2 Diabetic Rats. Molecules. 2019;24(1):190. doi: 10.3390/molecules24010190
- Birulina JG, Ivanov VV, Buyko EE, Bykov VV, Smagliy LV., Nosarev AV, Petrova IV, Gusakova SV, Popov OS, Vasilev VN. High-fat, high-carbohydrate diet-induced experimental model of metabolic syndrome in rats. Bulletin of Siberian Medicine. 2020;19(4):14-20. (In Russian). doi: 10.20538/1682-0363-2020-4-14-20
- Li L, Bhatia M, Zhu YZ, Zhu YC, Ramnath RD, Wang ZJ, Anuar FB, Whiteman M, Salto-Tellez M, Moore PK. Hydrogen sulfide is a novel mediator of lipopolysaccharide-induced inflammation in the mouse. FASEB J. 2005;19(9):1196-1198. doi: 10.1096/fj.04-3583fje
- Mok YY, Atan MS, Yoke Ping C, Zhong Jing W, Bhatia M, Moochhala S, Moore PK. Role of hydrogen sulphide in haemorrhagic shock in the rat: protective effect of inhibitors of hydrogen sulphide biosynthesis. Br J Pharmacol. 2004;143(7):881-889. doi: 10.1038/sj.bjp.0706014
- Liu L, Zou P, Zheng L, Linarelli LE, Amarell S, Passaro A, Liu D, Cheng Z. Tamoxifen reduces fat mass by boosting reactive oxygen species. Cell Death Dis. 2015;6(1): e1586. doi: 10.1038/cddis.2014.553
- Revenko O, Pavlovskiy Y, Savytska M, Yashchenko A, Kovalyshyn V, Chelpanova I, Varyvoda O, Zayachkivska O. Hydrogen Sulfide Prevents Mesenteric Adipose Tissue Damage, Endothelial Dysfunction, and Redox Imbalance From High Fructose Diet-Induced Injury in Aged Rats. Front Pharmacol. 2021;12:693100. doi: 10.3389/fphar.2021.693100
- Feng X, Chen Y, Zhao J, Tang C, Jiang Z, Geng B. Hydrogen sulfide from adipose tissue is a novel insulin resistance regulator. Biochem Biophys Res Commun. 2009;380(1):153-159. doi: 10.1016/j.bbrc.2009.01.059
- Abramavicius S, Petersen AG, Renaltan NS, Prat-Duran J, Torregrossa R, Stankevicius E, Whiteman M, Simonsen U. GYY4137 and Sodium Hydrogen Sulfide Relaxations Are Inhibited by L-Cysteine and KV7 Channel Blockers in Rat Small Mesenteric Arteries. Front Pharmacol. 2021;12:613989. doi: 10.3389/fphar.2021.613989
- Katsouda A, Szabo C, Papapetropoulos A. Reduced adipose tissue H2S in obesity. Pharmacol Res. 2018;128:190-199. doi: 10.1016/j.phrs.2017.09.023
- Yang G, Ju Y, Fu M, Zhang Y, Pei Y, Racine M, Baath S, Merritt TJS, Wang R, Wu L. Cystathionine gamma-lyase/hydrogen sulfide system is essential for adipogenesis and fat mass accumulation in mice. Biochim Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids. 2018;1863(2):165-176. doi: 10.1016/j.bbalip.2017.11.008
- Ren H, Liu TC, Lu Y, Zhang K, Xu Y, Zhou P, Tang X. A comparison study of the influence of milk protein versus whey protein in high-protein diets on adiposity in rats. Food Funct. 2021;12(3):1008-1019. doi: 10.1039/d0fo01960g
- Alkhouri N, Eng K, Cikach F, Patel N, Yan C, Brindle A, Rome E, Hanouneh I, Grove D, Lopez R, Hazen SL, Dweik RA. Breathprints of childhood obesity: changes in volatile organic compounds in obese children compared with lean controls. Pediatr Obes. 2015;10(1):23-9. doi: 10.1111/j.2047-6310.2014.221.x
- Comas F, Latorre J, Ortega F, Arnoriaga Rodríguez M, Lluch A, Sabater M, Rius F, Ribas X, Costas M, Ricart W, Lecube A, Fernández-Real JM, Moreno-Navarrete JM. Morbidly obese subjects show increased serum sulfide in proportion to fat mass. Int J Obes (Lond). 2021;45(2):415-426. doi: 10.1038/s41366-020-00696-z
- Zhang L, Yang G, Tang G, Wu L, Wang R. Rat pancreatic level of cystathionine γ-lyase is regulated by glucose level via specificity protein 1 (SP1) phosphorylation. Diabetologia. 2011;54(10):2615-25. doi: 10.1007/s00125-011-2187-4
- Wu L, Yang W, Jia X, Yang G, Duridanova D, Cao K, Wang R. Pancreatic islet overproduction of H2S and suppressed insulin release in Zucker diabetic rats. Lab Invest. 2009;89(1):59-67. doi: 10.1038/labinvest.2008.109
- Manna P, Jain SK. Vitamin D up-regulates glucose transporter 4 (GLUT4) translocation and glucose utilization mediated by cystathionine-γ-lyase (CSE) activation and H2S formation in 3T3L1 adipocytes. J Biol Chem. 2012;287(50):42324-32. doi: 10.1074/jbc.M112.407833
Дополнительные файлы
