Эффективность применения Фарнезола для лечения отитов собак, осложненных Malassezia pachydermatis
- Авторы: Олабодэ И.Р.1, Сачивкина Н.П.1, Киселева Е.В.2,3, Щуров А.И.1
-
Учреждения:
- Российский университет дружбы народов
- Псковский государственный университет
- Цирк Никулина на Цветном бульваре
- Выпуск: Том 18, № 2 (2023)
- Страницы: 250-263
- Раздел: Ветеринария
- URL: https://journals.rcsi.science/2312-797X/article/view/315765
- DOI: https://doi.org/10.22363/2312-797X-2023-18-2-250-263
- EDN: https://elibrary.ru/SLOZKK
- ID: 315765
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В исследовании было задействовано 30 собак с отитом, осложненным Malassezia pachydermatis . Животных разделили на 2 группы: опытную (n = 15) и контрольную (n = 15). Опытной группе были назначены капли ушные ветеринарные Суролан + раствор препарата Фарнезол; контрольной - Суролан. В ходе исследования показано, что при добавлении Фарнезола в схему лечения отитов грибковой этиологии у собак регистрируются небольшие изменения клинического состава крови, характеризующиеся увеличением количества эритроцитов и гемоглобина, снижением числа лейкоцитов; в то же время снижаются показатели эозинофилов и палочкоядерных нейтрофилов в опыте по сравнению с контролем. Кроме того, доказано полное отсутствие Malassezia pachydermatis в мазках ушного содержимого после двухнедельной терапии сочетанным препаратом. Т.е. в опытной группе не было зарегистрировано ни одного случая присутствия дрожжеподобных грибов (ДПГ) в мазке после сочетанной терапии Суролан + Фарнезол, а в контрольной группе из 15 животных у двух при микроскопии мазков ушного экссудата ДПГ наблюдались, но не в большой концентрации. Использование комбинации Суролана и Фарнезола у собак опытной группы привело к уменьшению гиперемии, зуда, отека, ушной зловонной жидкости на 5…7 дни лечения, а полное клиническое выздоровление животных наступало к 10…14 дню терапии. В контрольной группе использовался только Суролан и улучшение клинического состояния наступало на 12…14 дни, а выздоровление - только по завершении полного курса. В итоге обе схемы лечения оказались успешными, однако схема с Фарнезолом дала более быстрые результаты, обусловленные широким спектром действия этого препарата: антимикробным и противовоспалительным.
Ключевые слова
Об авторах
Ифараджими Рафиль Олабодэ
Российский университет дружбы народов
Автор, ответственный за переписку.
Email: 1042205126@rudn.ru
ORCID iD: 0000-0003-2395-7350
аспирант департамента ветеринарной медицины аграрно-технологического института
Российская Федерация, 117198, г. Москва, ул. Миклухо-М аклая, д. 6Надежда Павловна Сачивкина
Российский университет дружбы народов
Email: sachivkina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1100-929X
SPIN-код: 1172-3163
кандидат биологических наук, доцент, доцент кафедры микробиологии им. В.С. Киктенко медицинского института
Российская Федерация, 117198, г. Москва, ул. Миклухо-М аклая, д. 6Екатерина Васильевна Киселева
Псковский государственный университет; Цирк Никулина на Цветном бульваре
Email: kirsanovakaterina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4907-9384
ветеринарный врач, Цирк Никулина на Цветном бульваре; аспирант кафедры зоологии и экологии животных, Псковский государственный университет
Российская Федерация, 127051, г. Москва, Цветной бульвар, д. 13; Российская Федерация, 180000, г. Псков, ул. Советская, д. 21Алексей Игоревич Щуров
Российский университет дружбы народов
Email: shurov_ai@rudn.university
ORCID iD: 0000-0003-2289-9814
SPIN-код: 9286-9577
аспирант департамента ветеринарной медицины, врач центра ветеринарной инновационной медицины, аграрно-технологический институт
Российская Федерация, 117198, г. Москва, ул. Миклухо-М аклая, д. 6Список литературы
- Dutova OG, Kraskova EV, Radyuk I.E. The comparison of otitis etiology and treatment in small nonproducing animals. Bulletin of Altai State Agricultural University. 2016;(9):125–128. (In Russ.).
- White SD, Bourdeau P, Blumstein P, Ibish K, Scott KV, Salman ND, et al. Comparison via cytology and culture of carriage of Malassezia pachydermatis in atopic and healthy dogs. In: Advances in Veterinary Dermatology: volume 3. Proceedings of the Third World Congress of Veterinary Dermatology, Edinburgh, Scotland, 11–14 September, 1996. Oxford: Butterworth-Heinemann Ltd; 1998.
- Kiss G, Radvanyi S, Szigeti G. Characteristics of Malassezia pachydermatis strains isolated from canine otitis externa. Mycoses. 1996;39(7–8):313–321. doi: 10.1111/j.1439–0507.1996.tb00146.x
- Hobi S, Cafarchia C, Romano V, Barrs, VR. Malassezia: Zoonotic Implications, Parallels and Differences in Colonization and Disease in Humans and Animals. Journal of Fungi. 2022;8(7):708. doi: 10.3390/jof8070708
- Puigdemont A, D’Andreano S, Ramió-Lluch L, Cuscó A, Francino O, Brazis P. Effect of an anti inflammatory pomegranate otic treatment on the clinical evolution and microbiota profile of dogs with otitis externa. Veterinary Dermatology. 2021;32(2):158-e37. doi: 10.1111/vde.12930
- Guillot J, Bond R. Malassezia yeasts in veterinary dermatology: an updated overview. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2020;10:79. doi: 10.3389/fcimb.2020.00079
- Korbelik J, Singh A, Rousseau J, Weese JS. Analysis of the otic mycobiota in dogs with otitis externa compared to healthy individuals. Vet. Dermatol. 2018;29(5):417-e138. doi: 10.1111/vde.12665
- Bond R, Ferguson EA, Curtis CF, Craig JM, Lloyd DH. Factors associated with elevated cutaneous Malassezia pachydermatis populations in dogs with pruritic skin disease. J. Small Anim. Pract. 1996;37(3):103–107. doi: 10.1111/j.1748–5827.1996.tb02353.x
- Cafarchia C, Gallo S, Romito D, Capelli G, Chermette R, Guillot J, Otranto D. Frequency, body distribution, and population size of Malassezia species in healthy dogs and in dogs with localized cutaneous lesions. J Vet Diagn Invest. 2005;17(4):316–322.
- Rudenko P, Vatnikov Y, Sachivkina N, Rudenko A, Kulikov E, Lutsay V, Notina E, Bykova I, Petrov A, Drukovskiy S, Olabode IR. Search for promising strains of probiotic microbiota isolated from different biotopes of healthy cats for use in the control of surgical infections. Pathogens. 2021;10(6):667. doi: 10.3390/ pathogens10060667
- Park M, Park S, Jung WH. Skin Commensal Fungus Malassezia and Its Lipases. J Microbiol Biotechnol. 2021;31(5):637–644. doi: 10.4014/jmb.2012.12048
- Gómez-García M, Madrigal I, Puente H, Mencía-Ares Ó, Argüello H, Carvajal A, Fregeneda-Grandes J.M. In vitro activity of essential oils against microbial isolates from otitis externa cases in dogs. Nat Prod Res. 2022;36(17):4552–4556. doi: 10.1080/14786419.2021.1993217
- Sim JXF, Khazandi M, Chan WY, Trott DJ, Deo P. Antimicrobial activity of thyme oil, oregano oil, thymol and carvacrol against sensitive and resistant microbial isolates from dogs with otitis externa. Vet Dermatol. 2019;30(6):524-e159. doi: 10.1111/vde.12794
- Sachivkina NP, Senyagin AN, Podoprigora IV, Brown DG, Vissarionova VV. Modulating the antifungal activity of antimycotic drugs with farnesol. Drug development & registration. 2021;10(4):162–168. (In Russ.). doi: 10.33380/2305–2066–2021–10–4–162–168
- Sachivkina N, Podoprigora I, Bokov D. Morphological characteristics of Candida albicans, Candida krusei, Candida guilliermondii, and Candida glabrata biofilms, and response to Farnesol. Vet. World. 2021;14(6):1608– 1614. doi: 10.14202/vetworld.2021.1608–1614
- Sachivkina N, Lenchenko E, Blumenkrants D, Ibragimova A, Bazarkina O. Effects of farnesol and lyticase on the formation of Candida albicans biofilm. Vet. World. 2020;13(6):1030–1036. doi: 10.14202/ vetworld.2020.1030–1036
- Vatnikov Y, Donnik I, Kulikov E, Karamyan A, Sachivkina N, Rudenko P, Tumanyan A, Khairova N, Romanova E, Gurina R, Sotnikova E, Bondareva I. Research on the antibacterial and antimycotic effect of the Phyto preparation Farnesol on biofilm-forming microorganisms in veterinary medicine. Int. J. Pharm. Res. 2020;12(Suppl.2):1481–1492. doi: 10.31838/ijpr/2020.SP2.164
- Sachivkina N, Senyagin A, Podoprigora I, Vasilieva E, Kuznetsova O, Karamyan A, Ibragimova A, Zhabo N, Molchanova M. Enhancement of the antifungal activity of some antimycotics by farnesol and reduction of Candida albicans pathogenicity in a quail model experiment. Veterinary World. 2022;15(4): 848–854. doi: 10.14202/vetworld.2022.848–854
- Sachivkina N, Podoprigora I, Senyagin A, Ibragimova A, Avdonina M, Shvedova I. The use of Farnesol to increase the antifungal activity of some antibiotics against Candida albicans. FEBS OPEN BIO. 2022;12(Suppl.1):169. P-02.2–007. doi: 10.1002/2211–5463.13440
- Sachivkina N, Karamyan A, Kuznetsova O, Ibragimova A, Ebzeeva A, Mussa R, Akimenkova A. The use of extracts Tilia cordata flowers and Tripleurospermum inodorum flowers against Candida albicans biofilms. FEBS OPEN BIO. 2021;11(Suppl.1):288. P-05.4–08. doi: 10.1002/2211–5463.13205
- Mbarga MJA, Podoprigora IV, Goriainov VS, Fadi H, Yashina NV, Zhigunova AV, Vasilyeva E.A., Senyagin A.N., Sachivkina N. Phytochemical Analysis, Antibacterial and Antibiofilm Activities of Aloe vera Aqueous Extract against Selected Resistant Gram-Negative Bacteria Involved in Urinary Tract Infections. Fermentation. 2022;8(11):626. doi: 10.3390/fermentation8110626
- Sachivkina N, Vasilieva E, Lenchenko E, Kuznetsova O, Karamyan A, Ibragimova A, Zhabo N, Molchanova M. Reduction in Pathogenicity in Yeast-like Fungi by Farnesol in Quail Model. Animals. 2022;12(4):489. doi: 10.3390/ani12040489
- Arfenia K, Sachivkina N, Liseitse A, Alabdallah Z, Byakhova V. Biochemical parameters of quail blood in experimental gastrointestinal tract candidiasis. FEBS OPEN BIO. 2022;12(Suppl.1):292. P-04.5–015. doi: 10.1002/2211–5463.13440
- Theelen B, Cafarchia C, Gaitanis G, Bassukas ID, Boekhout T, Dawson TL. Malassezia ecology, pathophysiology, and treatment. Med. Mycol. 2018;56(Suppl.1):10–25. doi: 10.1093/mmy/myx134
- Bond R, Lloyd DH, Plummer JM. Evaluation of a detergent scrub technique for the quantitative culture of Malassezia pachydermatis from canine skin. Research in Veterinary Science. 1995;58(2):1337. doi: 10.1016/0034– 5288(95)90066–7
- Bond R, Ferguson EA, Curtis CF, Craig JM, Lloyd DH. Factors associated with elevated cutaneous Malassezia pachydermatis populations in dogs with pruritic skin disease. Journal of Small Animal Practice. 1996;37(3):103–107. doi: 10.1111/j.1748–5827.1996.tb02353.x
- Sachivkina N, Lenchenko E, Strizakov A, Zimina V, Gnesdilova L, Gavrilov V, Byakhova V, Germanova S, Zharov A, Molchanova M. The Evaluation of formation of biomembrane by microscopic Fungi of the Candida Genus. Int. J. Pharm. Res. 2018;10(4):738–744.
- Sachivkina NP, Lenchenko EM, Mannapova RT Strizhakov AA, Romanova EV, Lukina DM. Candida Biofi Modeling: Past and Present. Farmatsiya. 2019;68(3):18–22. (In Russ.). doi: 10.29296/25419218–2019–03–03
- Cannizzo FT, Eraso E, Ezkurra PA, Villar-Vidal M, Bollo E, Castellá G, Cabañes FJ, Vidotto V, Quindós G. Biofilm development by clinical isolates of Malassezia pachydermatis. Med Mycol. 2007;45(4):357– 361. doi: 10.1080/13693780701225767
- Yang HO, Cho YJ, Lee JM, Kim KD. Transcriptional interplay between Malassezia restricta and Staphylococcus species co-existing in the skin environment. J Microbiol Biotechnol. 2023;33(3):319. doi: 10.4014/jmb.2212.12026
- Lee K, Zhang I, Kyman S, Kask O, Cope EK. Co-infection of Malassezia sympodialis With Bacterial Pathobionts Pseudomonas aeruginosa or Staphylococcus aureus Leads to Distinct Sinonasal Inflammatory Responses in a Murine Acute Sinusitis Model. Front Cell Infect Microbiol. 2020;10:472. doi: 10.3389/ fcimb.2020.00472
- Forster SL, Real T, Doucette KP, King SB. A randomized placebo-controlled trial of the efficacy and safety of a terbinafine, florfenicol and betamethasone topical ear formulation in dogs for the treatment of bacterial and/ or fungal otitis externa. BMC Vet. Res. 2018;14:262. doi: 10.1186/s12917–018–1589–7
- Yılmaz Öztürk B, Yenice Gürsu B, Dağ İ. In vitro effect of farnesol on planktonic cells and dual biofilm formed by Candida albicans and Escherichia coli. Biofouling. 2022;38(4):355–366. doi: 10.1080/08927014.2022.2066530
- Namba AM, Santos ELS, Garcia MT, Ribeiro FC, Figueiredo-Godoi LMA, Rossoni RD, Junqueira JC. Farnesol as a potentiator of antimicrobial photodynamic inactivation on Enterococcus faecalis. Photodiagnosis Photodyn Ther. 2022;39:102928. doi: 10.1016/j.pdpdt.2022.102928
- Anyutoulou KLD, Mbagra MJA, Podoprigora IV, Yashina NV, Zhigunova AV, Vasilyeva EA, Senyagin AN, Sachivkina N, Gizinger OA, Sharova IN, Das MS. Quorum-Sensing Inhibitors from Probiotics as a Strategy to Combat Bacterial Cell-to-Cell Communication Involved in Food Spoilage and Food Safety. Fermentation. 2022;8(12):711. doi: 10.3390/fermentation8120711
- Ivanova A, Ivanova K, Fiandra L, Mantecca P, Catelani T, Natan M, Banin E, Jacobi G, Tzanov T. Antibacterial, Antibiofilm, and Antiviral Farnesol-Containing Nanoparticles Prevent Staphylococcus aureus from Drug Resistance Development. Int J Mol Sci. 2022;23(14):7527. doi: 10.3390/ijms23147527
- Mahendrarajan V, Bari VK. A critical role of farnesol in the modulation of Amphotericin B and Aureobasidin A antifungal drug susceptibility. Mycology. 2022;13(4):305–317. doi: 10.1080/21501203.2022.2138599
- Bond R, Anthony RM. Characterization of markedly lipid-dependent Malassezia pachydermatis isolates from healthy dogs. Journal of Applied Bacteriology. 1995;78(5): 537–542. doi: 10.1111/j.1365–2672.1995.tb03096.x
- Bond R, Lloyd D. Comparison of media and conditions of incubation for the quantitative culture of Malassezia pachydermatis from canine skin. Research in Veterinary Science. 1996;61(3):273–274. doi: 10.1016/ S0034–5288(96)90078–8
- Chiavassa E, Tizzani P, Peano A. In vitro antifungal susceptibility of Malassezia pachydermatis strains isolated from dogs with chronic and acute otitis externa. Mycopathologia. 2014;178:315–319. doi: 10.1007/ s11046–014–9782–0
- Angileri M, Pasquetti M, De Lucia M, Peano A. Azole resistance of Malassezia pachydermatis causing treatment failure in a dog. Med. Mycol. Case Rep. 2019;23:58–61. doi: 10.1016/j.mmcr.2018.12.004
Дополнительные файлы
