ПРИМЕНЕНИЕ БЕТАМЕТАЗОНА В ЛЕЧЕНИИ МЕСТНЫХ ПОСТТАТУАЖНЫХ ОСЛОЖНЕНИЙ

  • Авторы: Карымов О.Н.1, Воробьев А.А.2, Калашникова С.А.3, Полякова Л.В.3, Выскуб М.Н.4
  • Учреждения:
    1. Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента Здравоохранения Москвы
    2. Федеральное государственное бюджетное учреждение высшего образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
    3. Пятигорский медико-фармацевтический институт - филиал Федерального государственного бюджетного учреждения высшего образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации
    4. ГАУЗ «Медицинский центр»
  • Выпуск: Том 8, № 1 (2020)
  • Страницы: 48-56
  • Раздел: Статьи
  • URL: https://journals.rcsi.science/2307-9266/article/view/111630
  • DOI: https://doi.org/10.19163/2307-9266-2020-8-1-48-56
  • ID: 111630

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. Определить эффективность применения бетаметазона в лечении местных посттатуажных осложнений в зависимости от способа введения.

Материалы и методы. Работа выполнена на 90 крысах-самцах, которым наносили татуировки (n=30 – негативный контроль; n=30 – группа сравнения: подкожное введение 1 мл раствора бетаметазона; n=30 – опытная группа: введение 1 мл раствора бетаметазона с помощью тату-машинки), 15 – интактные крысы. Выведение из эксперимента на 3, 10, 21 сут. Образцы кожи фиксировали в 10% формалине с последующей гистологической проводкой и изготовлением микропрепаратов, окраской гематоксилином и эозином, по ван Гизону. Морфометрическое исследование включало определение объемной доли (ОД) эпидермиса; волокон дермы; пигмента; клеток воспалительного ряда; макрофагов (%), а также глубину залегания пигмента (мкм) и выраженность отека.

Результаты. В ходе исследования установлено, что введение бетаметазона с помощью тату-машинки препарат равномерно вводился на всю площадь татуировки, в связи с этим, явления отека и воспалительной инфильтрации были незначительными. Волокна дермы располагались соответственно каждому слою без признаков отека и с единичными клетками воспаления. Данные гистологического исследования полностью согласовывались с результатами морфометрии, в результате которой было установлено, что в опытной группе достоверно уменьшался отек, снижалась объемная доля пигмента и макрофагов, увеличивалась объемная доля волокон дермы. Оценка воспалительной реакции проводилась по морфометрическим параметрам ОД клеток воспалительного ряда и имел достоверные различия во всех экспериментальных группах, уменьшаясь в ряду: группа негативного контроля > группа сравнения > опытная группа >группа интактных животных (р<0,05).

Заключение. На основании полученных данных доказана эффективность применения бетаметазона при лечении местных посттатуажных осложнений. При этом наиболее предпочтительным является введение данного препарата не традиционно подкожно, а с использованием тату-машинки, дающей возможность адресной доставки вещества в зону патологического процесса.

Об авторах

Олег Наильевич Карымов

Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента Здравоохранения Москвы

Email: med_lazer@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7048-3605

кандидат медицинских наук, заведующий отделением лазеротерапии и других аппаратных методов лечения и диагностики Московского научно-практического центра дерматовенерологии и косметологии.

Россия, Москва

Александр Александрович Воробьев

Федеральное государственное бюджетное учреждение высшего образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: cos@volgmed.ru
ORCID iD: 0000-0001-8378-0505

доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой оперативной хирургии и топографической анатомии ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России.

Россия, Волгоград

Светлана Александровна Калашникова

Пятигорский медико-фармацевтический институт - филиал Федерального государственного бюджетного учреждения высшего образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: kalashnikova-sa@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7688-9366

доктор медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой морфологии Пятигорского медико-фармацевтического института – филиала ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России.

Россия, Пятигорск

Людмила Викторовна Полякова

Пятигорский медико-фармацевтический институт - филиал Федерального государственного бюджетного учреждения высшего образования «Волгоградский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: lvpolyakova7@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5349-1435

кандидат медицинских наук, доцент кафедры морфологии Пятигорского медико-фармацевтического института – филиала ФГБОУ ВО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России.

Россия, Пятигорск

Максим Николаевич Выскуб

ГАУЗ «Медицинский центр»

Автор, ответственный за переписку.
Email: elsi2002@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-8652-8089

врач-косметолог, ГАУЗ «Медицинский центр».

Россия, Волгоград

Список литературы

  1. Wenzel S.M., Rittmann I., Landthaler S.M., Baumer W. Adverse reactions after tattooing: review of the literature and comparison to results of a survey // Dermatology. – 2013. – V. 226. – P. 138–147. doi: 10.1159/000346943
  2. Карымов О.Н., Калашникова С.А., Воробьев А.А. Классификация осложнений татуажа // Клиническая дерматология и венерология. – 2018. – № 6. – С. 98–107. doi: 10.17116/klinderma20181706198
  3. Карымов О.Н., Калашникова С.А. Клинический случай образования келоидного рубца на месте татуировки // Волгоградский научно-медицинский журнал – 2017. – №1. – С. 59–61.
  4. Tiong W., Basiron N. Challenging diagnosis of a rare case of spontaneous keloid scar // Case Report. – 2014. – V. 5, N 8. – P. 466–469. DOI: http://dx.doi.org/10.14740/jmc1887w
  5. Шаробаро В.И., Романец О.П., Гречишников М.И., Баева А.А. Методы оптимизации лечения и профилактики рубцов // Хирургия. – 2015. – №9. – С. 85–90.
  6. Рыбакова А.В., Макарова М.Н. Методы эвтаназии лабораторных животных в соответствии с европейской директивой 2010/63 // Международный вестник ветеринарии. – 2015. – №2. – С. 96–107.
  7. Рыбакова А.В. Макарова М.Н. Санитарный контроль экспериментальных клиник (вивариев) в соответствии с локальными и международными требованиями // Международный вестник ветеринарии. – 2015. – №4. – С. 81–89.
  8. Автандилов Г.Г. Основы количественной патологической анатомии. – М.: Медицина, 2002. – 240 с.
  9. Anzi O.E., Hassam B. Black henna tattoo: risk of developing allergic contact eczema // The Pan African Medical Journal. – 2018. – V.8, N 30. P. 46. doi: 10.11604/pamj.2018.30.46.15563.
  10. Foss-Skiftesvik M.H., Johansen J.D., Thyssen J.P. Sign of the kiss’ from black henna tattoos // Contact Dermatitis. – 2015. V. 73. N 6: P. 370–371. doi: 10.1111/cod.12451.
  11. Борхунова Е.Н., Таганов А.В. Келоидные и гипертрофические рубцы: особенности патогенеза, гистоархитектоники и аспекты дифференциальной диагностики // Косметика & медицина. – 2016. - №3. – С. 30–38.
  12. Bassi A., Campolmi P., Giovanni С. Tattoo-associated skin reaction: the importance of an early diagnosis and proper treatment // Biomed Research International. – 2014. V. 2014. P. 7. doi: 10.1155/2014/354608.
  13. Ballard M.S. Contact dermatitis after henna skin tattooing // J. R. Army Med Corps. – 2006. V. 152. N 4. P. 242–243. DOI: http://dx.doi.org/10.1136/jramc-152-04-10
  14. Tiew S. Tattoo-associated panuveitis: A 10-year follow-up // Eur J Ophthalmol. – 2019. V. 29. P. 18–21. DOI: http://dx.doi.org/10.1177/1120672119846341.
  15. Greywal T., Cohen P.R. Cosmetic tattoo pigment reaction // Dermatol Online J. 2016. V. 22. N 7. PII: 13030/qt3rc114rg.
  16. Tanner S.L., Menzies S. Cutaneous sarcoid granulomas within a cosmetic tattoo // BMJ. – 2017.Jan 5;356:i6324. DOI: http://dx.doi.org/10.1136/bmj.i6324.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рисунок 2 – Гистологическое строение кожи крыс группы положительного контроля (интактные животные) на 3 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×100

3. Рисунок 3 – Гистологическое строение кожи крыс группы негативного контроля (кожа зоны татуажа без лечения) на 3 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×200

4. Рисунок 4 – Гистологическое строение кожи животных группы сравнения (внутрикожное введение бетаметазона) на 3 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×100

5. Рисунок 6 – Гистологическое строение кожи крыс группы положительного контроля (интактные животные) на 21 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×100

6. Рисунок 7 – Гистологическое строение кожи крыс группы негативного контроля (кожа зоны татуажа без лечения) на 21 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×200

7. Рисунок 8 – Гистологическое строение кожи животных группы сравнения (внутрикожное введение бетаметазона) на 21 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×100

8. Рисунок 9 – Гистологическое строение кожи крыс опытной группы (введение бетаметазона с помощью машинки для татуажа) на 21 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×200

9. Рисунок 5 – Гистологическое строение кожи крыс опытной группы (введение бетаметазона с помощью машинки для татуажа) на 3 сут. эксперимента. Окраска гематокилином и эозином. Ув. ×200


© Карымов О.Н., Воробьев А.А., Калашникова С.А., Полякова Л.В., Выскуб М.Н., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах