Фолликулярная жидкость и исходы программ вспомогательных репродуктивных технологий (обзор литературы)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В обзоре представлены данные о метаболитах фолликулярной жидкости (ФЖ) с позиций репродуктивной медицины и их использовании с целью предикции исходов программ вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Рассматриваются различные составляющие данной биологической среды (гормоны, липиды, мелатонин и др.) с оценкой их предиктивной значимости в прогнозировании эффективности программ экстракорпорального оплодотворения (ЭКО). Приведены данные об экспериментальных направлениях в этой области и перспективах их использования в клинической практике. Подчеркивается необходимость расширения и интенсификации исследований в области анализа состава ФЖ вследствие растущей клинической потребности и нерешенности задачи повышения эффективности программ ВРТ.

Материалы и методы. В обзор включены данные зарубежных и отечественных статей, найденных в PubMed по данной теме, опубликованных в последние годы.

Результаты. В качестве неинвазивных маркеров качества ооцитов/эмбрионов активно изучаются различные метаболиты ФЖ, учитывая установленный факт прямого влияния ее состава на рост и созревание ооцитов, а в последующем и на процесс фертилизации. Приведены данные об экспериментальных направлениях в этой области и перспективах их использования в клинической практике. Однако данные клинических исследований в отношении связи уровней различных метаболитов ФЖ и исходов программ ЭКО противоречивы.

Заключение. Необходимы расширение и интенсификация исследований в области поиска и применения надежных предикторов в прогнозировании исходов программ ВРТ вследствие больших экономических затрат на дорогостоящее лечение бесплодия методом ЭКО.

Об авторах

Анна Георгиевна Бурдули

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: burdulianna@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2849-5426

канд. мед. наук, ст. науч. сотр. отд-ния вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. Б.В. Леонова

Россия, Москва

Наталья Алексеевна Кициловская

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: kitsilovskyana@gmail.com

специалист лаб. протеомики и метаболомики в репродукции человека в отд. системной биологии

Россия, Москва

Юлия Вячеславовна Сухова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: j_bezzubenko@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9657-5375

врач клин. лабораторной диагностики клинико-диагностической лаб.

Россия, Москва

Ирина Александровна Ведихина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: i_vedikhina@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-0591-4325

биолог клинико-диагностической лаб.

Россия, Москва

Татьяна Юрьевна Иванец

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: t_ivanets@oparina4.ru

д-р мед. наук, зав. клинико-диагностической лаб.

Россия, Москва

Виталий Викторович Чаговец

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: vvchagovets@gmail.com

канд. физ.-мат. наук, ст. науч. сотр. лаб. протеомики и метаболомики репродукции человека отд. системной биологии в репродукции

Россия, Москва

Наталия Леонидовна Стародубцева

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: n_starodubtseva@oparina4.ru

канд. биол. наук, зав. лаб. протеомики репродукции человека

Россия, Москва

Владимир Евгеньевич Франкевич

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: v_frankevich@oparina4.ru

канд. физ.-мат. наук, рук. отд. системной биологии в репродукции

Россия, Москва

Список литературы

  1. Hennet M, Combelles C. The antral follicle: a microenvironment for oocyte differentiation. Int J Dev Biol 2012; 56: 819–31.
  2. Edwards R. Follicular fluid. Reproduction 1974; 37 (1): 189–219.
  3. Rodgers R, Irving-Rodgers H. Formation of the ovarian follicular antrum and follicular fluid. Biol Reprod 2010; 82: 1021–9.
  4. Basuino L, Silveira C. Human follicular fluid and effects on reproduction. JBRA Assist Reprod 2016; 20 (1): 38–40.
  5. Lebbe M, Taylor AE, Visser JA et al. The steroid metabolome in the isolated ovarian follicle and its response to androgen exposure and antagonism. Endocrinology 2017; 158: 1474–85.
  6. Handelsman D. Mass spectrometry, immunoassay and valid steroid measurements in reproductive medicine and science. Hum Reprod 2017; p. 1–4.
  7. De Sutter P, Dhont M, Vanluchene E et al. Correlations between follicular fluid steroid analysis and maturity and cytogenetic analysis of human oocytes that remained unfertilized after in vitro fertilization. Fertil Steril 1991; 55: 958–63.
  8. Rosen M, Zamah A, Shen S et al. The effect of follicular fluid hormones on oocyte recovery after ovarian stimulation: FSH level predicts oocyte recovery. Reprod Biol Endocrinol 2009; 7: 35.
  9. Wen X, Li D, Tozer A et al. Estradiol, progesterone, testosterone profiles in human follicular fluid and cultured granulosa cells from luteinized pre-ovulatory follicles. Reprod Biol Endocrinol 2010; 8: 117.
  10. Kushnir M, Naessen T, Wanggren K et al. Exploratory study of the association of steroid profiles in stimulated ovarian follicular fluid with outcomes of IVF treatment. J Steroid Biochem Mol Biol 2016; 162: 126–33.
  11. Walters K, Eid S, Edwards M et al. Steroid profiles by liquid chromatography-mass spectrometry of matched serum and single dominant ovarian follicular fluid from women undergoing IVF. Reproductive BioMedicine Online 2018. doi: 10.1016/j.rbmo.2018.10.006
  12. Kedem-Dickman A, Maman E, Yung Y et al. Anti-Mullerian hormone is highly expressed and secreted from cumulus granulosa cells of stimulated preovulatory immature and atretic oocytes. Reprod BioMed Online 2012; 24 (5): 540–6.
  13. Kim J, Lee J, Chang H et al. Anti-Mullerian hormone levels in the follicular fluid of the preovulatory follicle: a predictor for oocyte fertilization and quality of embryo. J Korean Med Sci 2014; 29 (9): 1266–70.
  14. Nagy B, Poto L, Farkas N et al. Follicular fluid progesterone level associated with fertilization outcome during in vitro fertilization: a systematic review and meta-analysis. Reproductive BioMedicine Online 2019. doi: 10.1016/j.rbmo.2018.12.045
  15. O’Brien Y et al. Anti-Müllerian hormone and progesterone levels in human follicular fluid are predictors of embryonic development. Reprod Biol Endocrinol 2019; 17 (1): 47. doi: 10.1186/s12958-019-0492-9
  16. Emori M, Drapkin R. The hormonal composition of follicular fluid and its implications for ovarian cancer pathogenesis. Reprod Biol Endocrinol 2014; 12: 60. doi: 10.1186/1477-7827-12-60
  17. De los Santos M, Garcia-Laez V, Beltran-Torregrosa D et al. Hormonal and molecular characterization of follicular fluid, cumulus cells and oocytes from pre-ovulatory follicles in stimulated and unstimulated cycles. Hum Reprod 2012; 27: 1596–605.
  18. Polyzos N, Anckaert E, Guzman L et al. Vitamin D deficiency and pregnancy rates in women undergoing single embryo, blastocyst stage, transfer (SET) for IVF/ICSI. Hum Reprod 2014; 29: 2032–40.
  19. Van de Vijver A, Drakopoulos P, Van Landuyt L et al. Vitamin D deficiency and pregnancy rates following frozen–thawed embryo transfer: a prospective cohort study. Hum Reprod 2016; 31: 1749–54.
  20. Vanni V, Vigano P, Somigliana E et al. Vitamin D and assisted reproduction technologies: current concepts. Reprod Biol Endocrinol 2014; 12: 47.
  21. Lv S, Ji Y, Wang X et al. Serum vitamin D status and in vitro fertilization outcomes: a systematic review and meta-analysis. Arch Gynecol Obstet 2016; 293: 1339–45.
  22. Zhao J, Huang X, Xu B et al. Whether vitamin D was associated with clinical outcome after IVF/ICSI: a systematic review and meta-analysis. Reprod Biol Endocrinol 2018; 16 (1).
  23. Shehadeh A et al. A shift in follicular fluid from triacylglycerols to membrane lipids is associated with positive pregnancy outcome. FASEB J 2019: fj201900318RR. doi: 10.1096/fj.201900318RR
  24. Browne R, Bloom M, Shelly W et al. Follicular fluid high density lipoprotein-associated micronutrient levels are associated with embryo fragmentation during IVF. J Assist Reprod Genet 2009; 26: 557.
  25. Cordeiro F, Montani D, Pilau E et al. Ovarian environment aging: follicular fluid lipidomic and related metabolic pathways. J Assist Reprod Genet 2018; 35: 1385.
  26. Cataldi T, Cordeiro F, Costa Ldo V et al. Lipid profiling of follicular fluid from women undergoing IVF: young poor ovarian responders versus normal responders. Hum Fertil 2013; 16: 269–77.
  27. Cordeiro F, Cataldi T, do Vale Teixeira da Costa L et al. Follicular fluid lipid fingerprinting from women with PCOS and hyper response during IVF treatment. J Assist Reprod Genet 2015; 32: 45–5.
  28. Ruebel M, Cotter M, Sims C et al. Obesity modulates inflammation and lipid metabolism oocyte gene expression: a single-cell transcriptome perspective. J Clin Endocrinol Metab 2017; 102: 2029–38.
  29. Manchester L, Coto-Montes A, Boga J et al. Melatonin: an ancient molecule that makes oxygen metabolically tolerable. J Pineal Res 2015; 59: 403–19.
  30. Reiter R, Tamura H, Tan D et al. Melatonin and the circadian system: contributions to successful female reproduction. Fertil Steril 2014; 102: 321–8.
  31. Tong J, Sheng S, Sun Y et al. Melatonin levels in follicular fluid as markers for IVF outcomes and predicting ovarian reserve. Reproduction 2017; 153 (4): 443–51.
  32. Zheng M, Tong J, Li W-P et al. Melatonin concentration in follicular fluid is correlated with antral follicle count (AFC) and in vitro fertilization (IVF) outcomes in women undergoing assisted reproductive technology (ART) procedures. Gynecol Endocrinol 2017; 34 (5): 446–50.
  33. Fang L, Hu X, Cui L et al. Serum and follicular fluid fetuin-B levels are correlated with fertilization rates in conventional IVF cycles. J Assist Reprod Genet 2019; 36: 1101.
  34. Li Zewu et al. Leukaemia inhibitory factor in serum and follicular fluid of women with polycystic ovary syndrome and its correlation with IVF outcome. Reproductive BioMedicine Online 2018; 36 (Issue 4): 483–9.
  35. Alfaidy N, Baron Ch, Antoine Y et al. Prokineticin 1 (PROK1) is a new biomarker of human oocyte competence: expression and hormonal regulation throughout late folliculogenesis. Biol Reprod 2019; pii: ioz114.
  36. Rao M, Zhou F, Tang L et al. Follicular fluid humanin concentration is related to ovarian reserve markers and clinical pregnancy after IVF–ICSI: a pilot study. Reproductive BioMedicine Online 2018. doi: 10.1016/j.rbmo.2018.11.002

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО "Консилиум Медикум", 2019

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).