Экспериментальное моделирование дисбактериоза детского кишечника с применением биореакторной системы искусственного желудочно-кишечного тракта
- Авторы: Чемисова О.С.1, Седова Д.А.1, Головин С.Н.1, Ермаков А.М.1
-
Учреждения:
- Донской государственный технический университет
- Выпуск: Том 32, № 10 (2025)
- Страницы: 694-704
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/1728-0869/article/view/356881
- DOI: https://doi.org/10.17816/humeco690049
- EDN: https://elibrary.ru/MTJMUA
- ID: 356881
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Обоснование. Традиционные методы культивирования микроорганизмов не позволяют воспроизвести сложные межмикробные взаимодействия, характерные для кишечного биоценоза in vivo. В связи с этим актуальны разработка и применение современных биореакторных систем для экспериментального моделирования дисбактериоза кишечника у детей, которые обеспечат стандартизацию условий эксперимента и воспроизводимость результатов без этических ограничений.
Цель. Разработка и валидация методики экспериментального моделирования дисбактериоза детского кишечника с использованием биореакторной системы искусственного желудочно-кишечного тракта для изучения патогенетических механизмов нарушений микробиоценоза и оценки эффективности корректирующих воздействий.
Методы. Исследование проводили с использованием автоматизированной системы моделирования желудочно-кишечного тракта, включающей три реактора (желудок, двенадцатиперстная кишка, толстая кишка) с контролируемыми параметрами температуры, pH и анаэробных условий. Исследование проведено с использованием образца фекалий от донора 6 лет. Период наблюдения составлял 35 дней после внесения фекальной суспензии в реакторы. Критериями валидации были соответствие микробного профиля искусственного микробиоценоза клиническому профилю исходного образца и стабильность микробного сообщества по ключевым таксонам. Методы оценки включали бактериологическое исследование на селективных средах и количественную ПЦР с использованием набора «Колонофлор-16». Критерием стабильности устанавливали коэффициент вариации ≤20% для основных бактериальных популяций.
Результаты. В исходном образце фекалий методами ПЦР и бактериологическим исследованием выявлены критический дефицит облигатной микрофлоры (снижение количества лактобактерий и бифидобактерий) и избыточный рост условно-патогенных микроорганизмов, что соответствует дисбактериозу III степени. Разработанная биореакторная модель успешно воспроизвела дисбиотические изменения. Общая бактериальная масса в реакторе толстой кишки составила 13,21±0,20 lg копий ДНК/мл на 8-й день и 13,38±0,09 lg копий ДНК/мл на 35-й день при исходном значении 13,30 lg копий ДНК/мл. Созданная модель обеспечивает воспроизведение основных характеристик детского дисбактериоза, включая дефицит облигатной микрофлоры (Lactobacillus spp. и Bifidobacterium spp.) и избыточный рост условно-патогенных микроорганизмов (E. coli, C. perfringens, Enterobacter spp. и др.). Анализ стабильности показал достижение коэффициентов вариации менее 20% для всех ключевых популяций со второй недели культивирования. Модель обеспечила стабильное воспроизведение дисбактериоза III степени в течение 35-дневного периода наблюдения.
Заключение. В ходе исследования успешно разработана и валидирована методика экспериментального моделирования дисбактериоза детского кишечника с использованием системы искусственного желудочно-кишечного тракта. Разработанная модель открывает новые возможности для углублённого изучения патогенетических механизмов нарушений микробиоценоза в детском возрасте, скрининга и оценки эффективности пробиотических препаратов, пребиотиков и других корректирующих воздействий в условиях, приближенных к физиологическим.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ольга Сергеевна Чемисова
Донской государственный технический университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: chemisova@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0002-4059-2878
SPIN-код: 1129-7436
канд. биол. наук
Россия, Ростов-на-ДонуДарья Андреевна Седова
Донской государственный технический университет
Email: dased0va@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1194-7251
SPIN-код: 6197-7220
Россия, Ростов-на-Дону
Сергей Николаевич Головин
Донской государственный технический университет
Email: labbiobez@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1929-6345
SPIN-код: 5345-4005
Россия, Ростов-на-Дону
Алексей Михайлович Ермаков
Донской государственный технический университет
Email: amermakov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9834-3989
SPIN-код: 5358-3424
Россия, Ростов-на-Дону
Список литературы
- Sender R, Fuchs S, Milo R. Revised estimates for the number of human and bacteria cells in the body. PLoS Biol. 2016;14(8):e1002533. doi: 10.1371/journal.pbio.1002533
- Almeida A, Mitchell AL, Boland M, et al. A new genomic blueprint of the human gut microbiota. Nature. 2019;568(7753):499–504. doi: 10.1038/s41586-019-0965-1
- Rinninella E, Raoul P, Cintoni M, et al. What is the healthy gut microbiota composition? a changing ecosystem across age, environment, diet, and diseases. Microorganisms. 2019;7(1):14. doi: 10.3390/microorganisms7010014
- Tamburini S, Shen N, Wu HC, Clemente JC. The microbiome in early life: implications for health outcomes. Nat Med. 2016;22(7):713–722. doi: 10.1038/nm.4142
- Voroshilina ES, Moskvina MV, Kirillov MYu, et al. Fundamentals of modern approaches to assessing gut microbiota in children. Neonatology: News, Views, Education. 2023;11(3):47–59. doi: 10.33029/2308-2402-2023-11-3-47-59 EDN: LAWLUP
- Kalashnikova IG, Nekrasova AI, Makarov VV, et al. Features of gut microbiota in atopic dermatitis and food allergy in children. Laboratory Diagnostics. Eastern Europe. 2024;13(S1):300–302. (In Russ.) EDN: BUFJCU
- Ma T, Bu S, Nzerem AC, et al. Association of the infant gut microbiome with temperament at nine months of age: a michigan cohort study. Microorganisms. 2024;12(1):214. doi: 10.3390/microorganisms12010214
- Schoultz I, Claesson MJ, Dominguez-Bello MG, et al. Gut microbiota development across the lifespan: Disease links and health-promoting interventions. J Intern Med. 2025;297(6):560–583. doi: 10.1111/joim.20089
- Kozlovsky AA. Topical aspects of intestinal dysbiosis in children. Pediatrics. Eastern Europe. 2022;10(4):576–590. doi: 10.34883/PI.2022.10.4.012 EDN: VPCQWL
- Zhu W, Zhang X, Wang D, et al. Simulator of the human intestinal microbial ecosystem (SHIME®): current developments, applications, and future prospects. Pharmaceuticals (Basel). 2024;17(12):1639. doi: 10.3390/ph17121639
- Marzorati M, Vanhoecke B, De Ryck T, et al. The HMI™ module: a new tool to study the Host-Microbiota Interaction in the human gastrointestinal tract in vitro. BMC Microbiol. 2014;14:133. doi: 10.1186/1471-2180-14-133
- Isenring J, Bircher L, Geirnaert A, Lacroix C. In vitro human gut microbiota fermentation models: opportunities, challenges, and pitfalls. Microbiome Res Rep. 2023;2(1):2. doi: 10.20517/mrr.2022.15
- Biagini F, Daddi C, Calvigioni M, et al. Designs and methodologies to recreate in vitro human gut microbiota models. Bio-des Manuf. 2022;6(10):298–318. doi: 10.1007/s42242-022-00210-6
- O’Hara AM, Shanahan F. The gut flora as a forgotten organ. EMBO Rep. 2006;7(7):688–693. doi: 10.1038/sj.embor.7400731
- Brodkorb A, Egger L, Alminger M, et al. INFOGEST static in vitro simulation of gastrointestinal food digestion. Nat Protoc. 2019;14(4):991–1014. doi: 10.1038/s41596-018-0119-1
- Possemiers S, Verthé K, Uyttendaele S, Verstraete W. PCR-DGGE-based quantification of stability of the microbial community in a simulator of the human intestinal microbial ecosystem. FEMS Microbiol Ecol. 2004;49(3):495–507. doi: 10.1016/j.femsec.2004.05.002
- Repetskaya MN, Burdina OM, Toropova EA. Dysbiotic bowel disorders in children under modern conditions. Medical Newsletter of Vyatka. 2017;(4):19–23. EDN: YLYIZI
- Zafar H, Saier MH Jr. Gut Bacteroides species in health and disease. Gut Microbes. 2021;13(1):1–20. doi: 10.1080/19490976.2020.1848158
- Muramatsu MK, Winter SE. Nutrient acquisition strategies by gut microbes. Cell Host Microbe. 2024;32(6):863–874. doi: 10.1016/j.chom.2024.05.011
- Sitkin SI, Vakhitov TYa, Tkachenko EI, et al. Gut microbiota in ulcerative colitis and celiac disease. Experimental and Clinical Gastroenterology Journal. 2017;(1):8–30. EDN: ZFVTVN
Дополнительные файлы

