Методы изучения генетических модификаций


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Рассмотрены объекты и современные методы редактирования генома. Охарактеризована иммунная система прокариот и их защитные механизмы, препятствующие целевому редактированию генома в интересах исследователя. Таким механизмом у прокариот являются кластерные регулятивные межпространственные короткие палиндромные повторы. Число таких повторов у различных объектов отличается, что в итоге не позволяет получить идеальную стандартную модель. В настоящее время идентифицированы три типа таких систем, имеющих свой механизм для генерации белков. Охарактеризованы белки, которые в настоящее время чаще всего используются для редактирования генома и выявления участков протоспейсерных соседних мотивов. Дана подробная характеристика организации иммунной системы прокариот и фаз ее активности. На сегодняшний день идентифицированы три типа систем с короткими палиндромными повторами, расположенными группами или ассоциированным (ферментным) белком Cas9. Каждая система использует свой механизм для генерации белков, катализирующих расщепление нуклеиновых кислот. Чаще всего используется система с короткими палиндромными повторами II типа, лучше адаптированная для редактирования генома из-за своей простоты. Установлено, что систему с короткими палиндромными повторами-Cas9 можно использовать для точечного редактирования генома и у эукариот. Это осуществляется либо посредством негомологичного присоединения конца, либо путем гомологически направленной репарации. Перспективным вариантом генетического моделирования является использование фермента-эндонуклеазы Cpf1, являющейся эффекторным белком систем с короткими палиндромными повторами-Cas V типа. Cpf1 мельче, чем ферментный белок Cas9, и для функционирования системы нужны только спейсеры рибонуклеиновой кислоты без дополнительной рибонуклеиновой кислоты. В отличие от Cas9, который разрезает обе цепи дезоксирибонуклеиновой кислоты в одном и том же месте, Cpf1 генерирует разрез, создавая «липкие» концы, которые можно использовать для вставки интересующих последовательностей путем комплементации и лигирования. Вероятно, что система с использованием фермента-эндонуклеазы Cpf1 будет удобнее системы, где используется белок – Cas9, так как расширяется диапазон редактирования управляемого генома рибонуклеиновой кислоты для осуществления необходимых правок.

Об авторах

А. В. Москалев

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Автор, ответственный за переписку.
Email: vmeda-nio@mil.ru
Россия, Санкт-Петербург

Б. Ю. Гумилевский

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: vmeda-nio@mil.ru
Россия, Санкт-Петербург

В. Я. Апчел

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова; Российский государственный педагогический университет им. А.И. Герцена

Email: vmeda-nio@mil.ru
Россия, Санкт-Петербург

В. Н. Цыган

Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова

Email: vmeda-nio@mil.ru
Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Москалев, А.В. Общая иммунология с основами клинической иммунологии / А.В. Москалев, В.Б. Сбойчаков, А.С. Рудой. – М.: Гэотар-Медиа, 2015. – 351 с.
  2. Ярилин, А.А. Иммунология / А.А. Ярилин. – М.: Гэотар-Медиа, 2010. – 957 с.
  3. Abbas, A.K. Cellular and Molecular Immunology. ‒ 9-th edition / A.K. Abbas, A.H. Lichtman, S. Pillai. ‒ Philadelphia, Pennsylvania: W. B. Saunders Company, 2018. – 565 p.
  4. Bhaya, D. CRISPR-Cas systems in bacteria and archaea: Versatile small RNAs for adaptive defense and regulation / D. Bbhay [et al.] // Annu. Rev. Genet. – 2011. – Vol. 45. – P. 273–297.
  5. Cai, L. Suppression of hepatocyte growth factor production impairs the ability of adipose-derived stem cells to promote ischemic tissue revascularization / L. Cai [et al.] // Stem Cells. – 2007. – Vol. 25. – P. 3234–3243
  6. Hilton, I.B. Epigenome editing by a CRISPR-Cas9 – based acetyltransferase activates genes from promoters and enhancers / I.B. Hilton [et al.] // Nat. Biotechnol. – 2015. – Vol. 33. – P. 510–517.
  7. Gilbert, L.A. CRISPR–mediated modular RNA-guided regulation of transcription in eukaryotes / L.A. Gilbert [et al.] // Cell, – 2013. – Vol. 154. – P. 442 – 451.
  8. Kern, S.E. Comparative analysis of mesenchymal stem cells from bone marrow, umbilical cord blood, or adipose tissue / S.E. Kern [et al.] // Stem Cells. – 2006. – Vol. 24. – P. 1294–1301.
  9. Lee, J. Human adipose-derived stem cells display myogenic potential and perturbed function in hypoxic conditions / J. Lee [et al.] // Biochem. Biophys. Res. Commun. – 2006. – Vol. 341. – P. 882–888.
  10. Li, B. Adipose tissue stromal cells transplantation in rats of acute myocardial infarction / B. Li [et al.] // Coron Artery Dis. – 2007. – Vol. 18. – P. 221–227.
  11. McDonald, J.I. Reprogrammable CRISPR/Cas9-based system for inducing site-specific DNA methylation / J.I. McDonald [et al.] // Biol. Open. – 2016. – Vol. 5. – P. 866–874.
  12. Olson, K. Contemporary clinical immunology and serology / K. Olson, E. De Nardin. ‒ New Jersey: Upper Saddle River, 2013. – 439 p.
  13. Rose, N.R. The autoimmune diseases. ‒ fith edition / N.R. Rose, I.R. Mackay. ‒ Philadelphia, 2018. ‒ 1265 p.
  14. Slack, J.M.W. The science of stem cells / J.M.W. Slack. – Wiley, 2018. – 248 p.
  15. Sternberg, S.H. DNA interrogation by the CRISPR RNA-guided endonuclease Cas9 / S.H. Sterberg // Nature. – 2014. – Vol. 507. – P. 62–67.
  16. Thakore, P.I. Highly specific epigenome editing by CRISPR-Cas9 repressors for silencing of distal regulatory elements / P.I. Thakore [et al.] // Nat. Methods. – 2015. – Vol. 12. – P. 1143–1149.
  17. Wu, Y. Mesenchymal stem cells enhance wound healing through differentiation and angiogenesis / Y. Wu [et al.] // Stem Cells. – 2007. – Vol. 25. – P. 2648–2659.
  18. Zabriskie, J.B. Essential clinical immunology / J.B. Zabriskie – N. Y., 2009. – 362 p.
  19. Zetsche, B. Cpf1 is a single RNA – guided endonuclease of a class 2 CRISPR-Cas system / B. Zetsche [et al.] // Cell. – 2016. – Vol. 163. – P. 759–771.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Внедрение чужеродных векторов в локус CRISPR

Скачать (114KB)
3. Рис. 2. Редактирование генома белком Cas9 S. pyogenes

Скачать (106KB)
4. Рис. 3. Расщепление ДНК разными доменами Cas9

Скачать (74KB)
5. Рис. 4. Роль системы CRISPR-dCas9 в репрессии и активации генов

Скачать (127KB)
6. Рис. 5. Создание трансгенных мышей из ЭСК: а – клетки модифицируются путем введения рекомбинантных клонов, отобранных и протестированных. Они вводятся в бластоцисты матки мышей-рецепиентов; б – механизм позитивной и негативной селекции (neo – неомицин-резистентные гены. TK – ген тимидин киназы); в – один из методов использования CRISPR-Cas9 для трансгенной модификации зигот. Здесь компоненты вводятся в пронуклеусы

Скачать (300KB)

© Москалев А.В., Гумилевский Б.Ю., Апчел В.Я., Цыган В.Н., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах