Сравнительный анализ микрочипирования микроРНК в образцах меланомы в зависимости от способа фиксации материала


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Меланома кожи является злокачественным новообразованием, характеризующимся быстрой прогрессией, высокой инвазивностью и как следствие низкими показателями выживаемости. В этой связи сохраняется актуальность совершенствования способов ранней диагностики данной опухоли. В настоящее время все большее распространение получают молекулярно-генетические методы исследования опухолей, одним из которых является микрочипирование (микроэррей), позволяющее анализировать изменения экспрессии сразу нескольких тысяч генов в клетке. Однако этот метод предъявляет высокие требования к качеству образцов и проведению исследования. В настоящее время для сохранения опухолевых тканей в практической медицине стандартно используется фиксация гистологических образцов формалином с последующим заключением в парафин, что обеспечивает сохранность образцов и возможность проведения в дальнейшем исследований на основе использования архивного материала. Вместе с тем известно, что данный способ фиксации может приводить к нарушениям в структуре и доступности нуклеиновых кислот для дальнейшего анализа. В данном исследовании проведена попытка оценить влияние фиксации гистологических образцов меланомы кожи на результат микрочипирования с целью оценки уровней экспрессии микроРНК. В этой связи проведен сравнительный анализ микроРНК на основе микрочипирования образцов меланомы кожи, фиксированных формалином и специфическим стабилизатором, содержащим ингибиторы РНКаз. Показано, что фиксация формалином по сравнению с фиксацией аммонийными солями, ингибирующими РНКазы, влечет за собой изменение уровня 454 микроРНК, при этом среди них оказываются микроРНК, которые играют важную роль в развитии меланомы. Таким образом, для молекулярных исследований биоптатов кожи на основе микроэррея требуется более тщательная стандартизация способов фиксации материалов или использование специфичных стабилизаторов. Возможность использования метода фиксации на основе формалина для экспрессионного анализа микроРНК в тканях подлежит дальнейшему изучению.

Об авторах

А. В Комина

ГБОУ ВПО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

660022, г. Красноярск, Российская Федерация

Н. В Палкина

ГБОУ ВПО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

660022, г. Красноярск, Российская Федерация

М. Б Аксененко

ГБОУ ВПО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

660022, г. Красноярск, Российская Федерация

Татьяна Геннадьевна Рукша

ГБОУ ВПО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Email: tatyana_ruksha@mail.ru
доктор медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой патологической физиологии им. проф. В.В. Иванова ГБОУ ВПО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого Минздрава России 660022, г. Красноярск, Российская Федерация

Список литературы

  1. Имянитов Е.Н. Эпидемиология и биология опухолей кожи. Практическая онкология. 2012; 13(2): 61-8.
  2. Ascierto P.A., Kirkwood J.M., Grob J.J., Simeone E., Grimaldi A.M., Maio M., et al. The role of BRAF V600 mutation in melanoma. J. Transl. Med. 2012; 10: 85. doi: 10.1186/1479-5876-10-85.
  3. Woodman S.E., Trent J.C., Stemke-Hale K., Lazar A.J., Pricl S., Pavan G.M., et al. Activity of dasatinib against L576P KIT mutant melanoma: molecular, cellular, and clinical correlates. Mol. Cancer Ther. 2009; 8(8): 2079-85.
  4. Fadiel A., Naftolin F. Microarray applications and challenges: a vast array of possibilities. Int. Arch. Biosci. 2003; 2003: 1111-21.
  5. Snijders A.M., Meijer G.A., Brakenhoff R.H., van den Brule A.J., van Diest P.J. Microarray techniques in pathology: tool or toy? Mol. Pathol. 2000; 53(6): 289-94.
  6. Ambros V. The functions of animal microRNAs. Nature. 2004; 431(7006): 350-5.
  7. Berg D., Malinowsky K., Reischauer B., Wolff C., Becker K.F. Use of formalin-fixed and paraffin-embedded tissues for diagnosis and therapy in routine clinical settings. Methods Mol. Biol. 2011; 785: 109-22. doi: 10.1007/978-1-61779-286-1-8.
  8. Evers D.L., Fowler C.B., Cunningham B.R., Mason J.T., O’Leary T.J. The effect of formaldehyde fixation on RNA. J. Mol. Diagn. 2011; 13(3): 282-8.
  9. Sengüven B., Baris E., Oygur T., Berktas M. Comparison of Methods for the Extraction of DNA from Formalin-Fixed, Paraffin-Embedded Archival Tissues. Int. J. Med. Sci. 2014; 11(5): 494-9.
  10. Masuda N. Ohnishi T., Kawamoto Sh., Monden M. and Okubo K. Analysis of chemical modification of RNA from formalin-fixed samples and optimization of molecular biology applications for such samples. Nucl. Acids Res. 1999; 27(22): 4436-43.
  11. Ji L., Chen X. Regulation of small RNA stability: methylation and beyond. Cell Res. 2012; 22(4): 624-36. doi: 10.1038/cr.2012.36.
  12. Matsuda Y., Fujii T., Suzuki T., Yamahatsu K., Kawahara K., Teduka K., et al. Comparison of fixation methods for preservation of morphology, RNAs, and proteins from paraffin-embedded human cancer cell-implanted mouse models. J. Histochem. Cytochem. 2011; 59(1): 68-75.
  13. Van Eijsden R.G., Stassen C., Daenen L., Van Mulders S.E., Bapat P.M., Siewers V., et al. A universal fixation method based on quaternary ammonium salts (RNAlater) for omics-technologies: Saccharomyces cerevisiae as a case study. Biotechnol. Lett. 2013; 35(6): 891-900.
  14. Sand M., Skrygan M., Sand D., Georgas D., Gambichler T., Hahn S.A., et al. Comparative microarray analysis of microRNA expression profiles in primary cutaneous malignant melanoma, cutaneous malignant melanoma metastases, and benign melanocytic nevi. Cell Tissue Res. 2013; 351(1): 85-98. doi: 10.1007/s00441-012-1514-5.
  15. Melnik B.C. MiR-21: an environmental driver of malignant melanoma? J. Transl. Med. 2015; 13: 202. doi: 10.1186/s12967-015-0570-5.
  16. Forloni M., Dogra S.K., Dong Y., Conte D. Jr., Ou J., Zhu L.J., et al. miR-146a promotes the initiation and progression of melanoma by activating Notch signaling. Elife. 2014; 3: e01460.
  17. Liu S., Tetzlaff M.T., Cui R., Xu X. miR-200c inhibits melanoma progression and drug resistance through down-regulation of BMI-1. Am. J. Pathol. 2012; 181(5): 1823-35.
  18. Kozubek J., Altaf F., Dadras S.S. MicroRNA biomarkers in melanoma. In: Murphy M.J., ed. Diagnostic and Prognostic Biomarkers and Therapeutic Targets in Melanoma. New York: Springer; 2012: 113-26.
  19. Wei Y., Du Y., Chen X., Li P., Wang Y., Zang W., et al. Expression patterns of microRNA-218 and its potential functions by targeting CIP2A and BMI1 genes in melanoma. Tumour Biol. 2014; 35(8): 8007-15.
  20. Bennett P.E., Bemis L., Norris D.A., Shellman Y.G. miR in melanoma development: miRNAs and acquired hallmarks of cancer in melanoma. Physiol. Genomics. 2013; 45(22): 1049-59.
  21. Penna E., Orso F., Cimino D., Tenaglia E., Lembo A., Quaglino E., et al. MicroRNA-214 contributes to melanoma tumour progression through suppression of TFAP2C. EMBO J. 2011; 30(10): 1990-2007. doi: 10.1038/emboj.201 1.102.
  22. Mazar J., Qi F., Lee B., Marchica J., Govindarajan S., Shelley J., et al. MicroRNA 211 functions as a metabolic switch in human melanoma cells. Mol. Cell. Biol. 2016; 36(7): 1090-108. doi: 10.1128/MCB.00762-15.
  23. Glud M., Klausen M., Gniadecki R., Rossing M., Hastrup N., Nielsen F.C., et al. MicroRNA expression in melanocytic nevi: the usefulness of formalin-fixed, paraffin-embedded material for miRNA microarray profiling. J. Invest. Dermatol. 2009; 129(5): 1219-24.
  24. Kashofer K., Viertler Ch., Pichler M., Zatloukal K. Quality control of RNA preservation and extraction from paraffin-embedded tissue: implications for RT-PCR and microarray analysis. PLoS ONE. 2013; 8(7): e70714.
  25. Li J., Smyth P., Flavin R., Cahill S., Denning K., Aherne S., et al. Comparison of miRNA expression patterns using total RNA extracted from matched samples of formalin-fixed paraffinembedded (FFPE) cells and snap frozen cells. BMC Biotechnol. 2007; 7: 36.
  26. Flores O., Kennedy E.M., Skalsky R.L., Cullen B.R. Differential RISC association of endogenous human microRNAs predicts their inhibitory potential. Nucleic Acids Res. 2014; 42(7): 1-11.
  27. Bail S., Swerdel M., Liu H., Jiao X., Goff L.A., Hart R.P., et al. Differential regulation of microRNA stability. RNA. 2010; 16(5): 1032-9. doi: 10.1261/rna.1851510.
  28. Davoren P.A., McNeill R.E., Lowery A.J., Kerin M.J., Miller N. Identification of suitable endogenous control genes for micro-RNA gene expression analysis in human breast cancer. BMC Mol. Biol. 2008; 9: 76. doi: 10.1186/1471-2199-9-76.
  29. Carlsson J., Helenius G., Karlsson M., Lubovac Z., Andrén O., Olsson B., et al. Validation of suitable endogenous control genes for expression studies of miRNA in prostate cancer tissues. Cancer Genet. Cytogenet. 2010; 202(2): 71-5.
  30. Srinivasan M., Sedmak D., Jewell S. Effect of fixatives and tissue processing on the content and integrity of nucleic acids. Am. J. Pathol. 2002; 161(6): 1961-71.

© ООО "Эко-Вектор", 2016


 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах