Аномалии волосяного стержня: обзор литературы

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Дефекты стержней волос вследствие врождённой или приобретённой патологии обычно сопровождаются нарушением их физических характеристик и изменением внешнего вида: они становятся тусклыми, сухими, неэластичными, ломкими, непослушными. В основу классификации разнородных аномалий волосяного стержня легло определение наличия ломкости волос.

Сходство клинической симптоматики и невозможность визуальной верификации диагноза диктует необходимость применения дополнительных методов исследования (дерматоскопии, микроскопии, гистологии), результаты которых помогут правильно диагностировать то или иное состояние. Знание нюансов клинической картины, основных дерматоскопических и микроскопических маркеров, отличительных особенностей течения различных аномалий волосяных стержней расширяет возможности практикующих трихологов, косметологов, дерматовенерологов и врачей других специальностей в области диагностики, терапии и профилактики структурных изменений волос.

В обзоре литературы представлены основные клинические, дерматоскопические, микроскопические и гистологические признаки различных аномалий волосяного стержня.

Об авторах

Ирина Владимировна Звездина

Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И. Евдокимова

Email: zvezdinhome@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5532-0672
SPIN-код: 2883-2408

кандидат медицинских наук, ассистент кафедры кожных и венерических болезней

Россия, 127473, Москва, ул. Делегатская, д. 20/1

Дина Евгеньевна Ключникова

Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И. Евдокимова

Email: dina_kl@list.ru
ORCID iD: 0000-0001-6595-1825
SPIN-код: 1809-7581

канд. мед. наук, ассистент

127473, Москва, ул. Делегатская, д. 20/1

Екатерина Владимировна Задионченко

Московский государственный медико-стоматологический университет имени А.И. Евдокимова

Автор, ответственный за переписку.
Email: z777kat@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0001-9295-5178
SPIN-код: 7446-8412

канд. мед. наук, ассистент

Россия, 127473, Москва, ул. Делегатская, д. 20/1

Список литературы

  1. Менг Ф.М. К вопросу о распространенности заболеваний волос среди населения // Сибирский медицинский журнал. 2006. Т. 59, № 1. С. 23–26.
  2. Ahmed A., Almohanna H., Griggs J., Tosti A. Genetic hair disorders: A review // Dermatol Ther (Heidelb). 2019. Vol. 9, N 3. Р. 421–448. doi: 10.1007/s13555-019-0313-2
  3. Корнишева В.Г., Ежков Г.А. Патология волос и кожи волосистой части головы. Санкт-Петербург: Фолиант, 2012. 197 с.
  4. Urea Cycle Disorders Conference group. Consensus statement from a conf Suppl erence for the management of patients with urea cycle disorders // J Pediatr. 2001. Vol. 138, N 1, Suppl. Р. 1–5. doi: 10.1067/mpd.2001.111830
  5. Дрибноход Ю.Ю. Лечение волос в косметологи. Санкт-Петербург: СпецЛит, 2015. 524 с.
  6. Rogers M. Hair shaft abnormalities: Part I // Australas J Dermatol. 1995. Vol. 36, N 4. Р. 179–184; quiz 185–186. doi: 10.1111/j.1440-0960.1995.tb00969.x
  7. Miyamoto M., Tsuboi R., Oh-I T. Case of acquired trichorrhexis nodosa: Scanning electron microscopic observation // J Dermatol. 2009. Vol. 36, N 2. Р. 109–110. doi: 10.1111/j.1346-8138.2009.00600.x
  8. Gari S.A. A case of acquired trichorrhexis nodosa after applying new hair spray // J Saudi Soc Dermatol Dermatol Sur. 2013. Vol. 17, N 2. Р. 73–75. doi: 10.1016/j.jssdds.2013.01.001
  9. Гребенюк В.Н., Гришко Т.Н., Баконина Н.В., Заторская Н.Ф. Клиническое наблюдение синдрома Нетертона в динамике // Клиническая дерматология и венерология. 2015. Т. 14, № 6. С. 62–65. doi: 10.17116/klinderma201514662-65
  10. Бакулев А.Л., Каракаева А.В., Куляев К.А., и др. Клинический случай синдрома Нетертона // Саратовский научно-медицинский журнал. 2013. Т. 9, № 3. С. 605–607.
  11. De Berker D.A., Paige D.G., Ferguson D.J., Dawber R.P. Golf tee hairs in Netherton disease // Pediatr Dermatol. 1995. Vol. 12, N 1. Р. 7–11. doi: 10.1111/j.1525-1470.1995.tb00115.x
  12. Bittencourt M.J., Moure E.R., Pies O.T., et al. Trichoscopy as a diagnostic tool in trichorrhexis invaginata and Netherton syndrome // An Bras Dermatol. 2015. Vol. 90, N 1. Р. 114–116. doi: 10.1590/abd1806-4841.20153011
  13. Akkurt Z.M., Tuncel T., Ayhan E., et al. Rapid and easy diagnosis of Netherton syndrome with dermoscopy // J Cutaneous Med Sur. 2014. Vol. 18, N 4. Р. 280–282. doi: 10.2310/7750.2013.13106
  14. Herz-Ruelas M.E., Chavez-Alvarez S., Garza-Chapa J.I., et al. Netherton syndrome: Case report and review of the literature // Skin Appendage Disord. 2021. Vol. 7, N 5. Р. 346–350. doi: 10.1159/000514699
  15. Ito M., Ito K., Hashimoto K. Pathogenesis in trichorrhexis invaginata (bamboo hair) // J Invest Dermatol. 1984. Vol. 83, N 1. Р. 1–6. doi: 10.1111/1523-1747.ep12261618
  16. Rakowska A., Slowinska M., Kowalska-Oledzka E., Rudnicka L. Trichoscopy in genetic hair shaft abnormalities // J Dermatol Case Rep. 2008. Vol. 2, N 2. Р. 14–20. doi: 10.3315/jdcr.2008.1009
  17. Chabchoub I., Souissi A. Monilethrix. 2022 Feb 22. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2022.
  18. Rakowska A., Slowinska M., Czuwara J., et al. Dermoscopy as a tool for rapid diagnosis of monilethrix // J Drugs Dermatol. 2007. Vol. 6, N 2. Р. 222–224.
  19. Shimomura Y. Congenital hair loss disorders: Rare, but not too rare // J Dermatol. 2012. Vol. 39, N 1. Р. 3–10. doi: 10.1111/j.1346-8138.2011.01395.x
  20. Bindurani S., Rajiv S. Monilethrix with variable expressivity // Int J Trichology. 2013. Vol. 5, N 1. Р. 53–55. doi: 10.4103/0974-7753.114703
  21. Rudnicka L., Olszewska M., Waśkiel A., Rakowska A. Trichoscopy in hair shaft disorders // Dermatol Clin. 2018. Vol. 36, N 4. Р. 421–430. doi: 10.1016/j.det.2018.05.009
  22. Oliveira E.F., Araripe A.L. Monilethrix: A typical case report with microscopic and dermatoscopic findings // An Bras Dermatol. 2015. Vol. 90, N 1. Р. 126–127. doi: 10.1590/abd1806-4841.20153357
  23. Zitelli J.A. Pseudomonilethrix. An artifact // Arch Dermatol. 1986. Vol. 122, N 6. Р. 688–690. doi: 10.1001/archderm.122.6.688
  24. Guichard A., Puzenat E., Fanian F., Humbert P. [Pseudomonilethrix: More an artifact than a disease (In French).] // Ann Dermatol Venereol. 2015. Vol. 142, N 3. Р. 206–209. doi: 10.1016/j.annder.2014.11.020
  25. Camacho F., Ferrando J., Rodriguez-Pichardo A. Acquired pseudomonilethrix in a family with monilethrix // Eur J Dermatol. 1993. N 3. Р. 651–655.
  26. Kelekci K.H., Koç K., Gürbüzel M., Özeren M. Olmsted syndrome associated with pseudomonilethrix: A new case from Turkey // J Turk Acad Dermatol. 2014. Vol. 8, N 3. Р. 1483c6. doi: 10.6003/jtad.1483c6
  27. Vidal J., Mieras C., Boronat M., et al. [Acrodermatitis enteropathica and pseudomonilethrix (In Spanish).] // Actas Dermosifiliogr. 1981. Vol. 72, N 1-2. Р. 75–80.
  28. Traupe H., Happle R., Gröbe H., Bertram H.P. Polarization microscopy of hair in acrodermatitis enteropathica // Pediatr Dermatol. 1986. Vol. 3, N 4. Р. 300–303. doi: 10.1111/j.1525-1470.1986.tb00529.x
  29. Lobato-Berezo A., Olmos-Alpiste F., Pujol R.M., Saceda-Corralo D. Pohl-Pinkus constrictions in trichoscopy. What do they mean? // Actas Dermosifiliogr. 2019. Vol. 110, N 4. Р. 315–316. doi: 10.1016/j.adengl.2019.03.003
  30. Williamson P.J., de Berker D. Pohl-Pinkus constrictions of hair following chemotherapy for Hodgkin’s disease // Br J Haematol. 2005. Vol. 128, N 5. Р. 582. doi: 10.1111/j.1365-2141.2005.05367.x
  31. Saki N., Aslani F.S., Sepaskhah M., et al. Intermittent chronic telogen effluvium with an unusual dermoscopic finding following COVID-19 // Clin Case Rep. 2022. Vol. 10, N 8. Р. e6228. doi: 10.1002/ccr3.6228
  32. Adya K.A., Inamadar A.C., Palit A., et al. Light microscopy of the hair: A simple tool to “untangle” hair disorders // Int J Trichology. 2011. Vol. 3, N 1. Р. 46–56. doi: 10.4103/0974-7753.82124
  33. Faghri S., Tamura D., Kraemer K.H., Digiovanna J.J. Trichothiodystrophy: A systematic review of 112 published cases characterises a wide spectrum of clinical manifestations // J Med Genet. 2008. Vol. 45, N 10. Р. 609–621. doi: 10.1136/jmg.2008.058743
  34. Price V.H., Odom R.B., Ward W.H., Jones F.T. Trichothiodystrophy: Sulfur-deficient brittle hair as a marker for a neuroectodermal symptom complex // Arch Dermatol. 1980. N 116. Р. 1375–1384. doi: 10.1001/archderm.116.12.1375
  35. Kraemer K.H., Patronas N.J., Schiffmann R., et al. Xeroderma pigmentosum, trichothiodystrophy and Cockayne syndrome: A complex genotype-phenotype relationship // Neuroscience. 2007. Vol. 145, N 4. Р. 1388–1396. doi: 10.1016/j.neuroscience.2006.12.020
  36. Liang C., Kraemer K.H., Morris A., et al. Characterization of tiger-tail banding and hair shaft abnormalities in trichothiodystrophy // J Am Acad Dermatol. 2005. Vol. 52, N 2. Р. 224–232. doi: 10.1016/j.jaad.2004.09.013
  37. Sperling L.C., di Giovanna J.J. “Curly” wood and tiger tails: An explanation for light and dark banding with polarization in trichothiodystrophy // Arch Dermatol. 2003. Vol. 139, N 9. Р. 1189–1192. doi: 10.1001/archderm.139.9.1189
  38. Mirmirani P., Samimi S.S., Mostow E. Pili torti: Clinical findings, associated disorders, and new insights into mechanisms of hair twisting // Cutis. 2009. N 84. Р. 143–147.
  39. Hoffmann A., Waśkiel-Burnat A., Żółkiewicz J., et al. Pili torti: A feature of numerous congenital and acquired conditions // J Clin Med. 2021. Vol. 10, N 17. Р. 3901. doi: 10.3390/jcm10173901
  40. Maruyama T., Toyoda M., Kanei A., Morohashi M. Pathogenesis in pili torti: Morphological study // J Dermatol Sci. 1994. N 7, Suppl. Р. 5–12. doi: 10.1016/0923-1811(94)90029-9
  41. Whiting D.A. Hair shaft defects. In: Disorders of hair growth: Diagnosis and treatment, 2nd ed.; E.A. Olsen, ed.; McGraw Hill: New York, NY, USA, 2003. Р. 123–175.
  42. Ankad B.S., Naidu M.V., Beergouder S.L., Sujana L. Trichoscopy in trichotillomania: A useful diagnostic tool // Int J Trichology. 2014. Vol. 6, N 4. Р. 160–163. doi: 10.4103/0974-7753.142856
  43. Lee Y.J., Ihm C.W. Three cases of trichoptilosis // Korean J Dermatol. 2004. Vol. 42, N 6. Р. 762–766.
  44. Lee H.W., Choi J.H., Moon K.C., Koh J.K. Trichoptilosis developing after first exposure to hair gels // Pediatr Dermatol. 2008. Vol. 25, N 1. Р. 139–140. doi: 10.1111/j.1525-1470.2007.00613.x
  45. Cot-Ventós J., Vives-Rego J., Fontarnau R. [Structural lesions of human hair caused by permanents (In Spanish).] // Med Cutan Ibero Lat Am. 1978. Vol. 6, N 3-4. Р. 193–201.
  46. Srivastava A.K., Gupta B.N. The role of human hairs in health and disease with special reference to environmental exposures // Vet Hum Toxicol. 1994. Vol. 36, N 6. Р. 556–560.
  47. Camacho F.M., Happle R., Tosti A., Whiting D. The different faces of pili bifurcate. A review // Eur J Dermatol. 2000. Vol. 10, N 5. Р. 337–340.
  48. Detwiler S.P., Carson J.L., Woosley J.T, et al. Bubble hair. Case caused by an overheating hair dryer and reproducibility in normal hair with heat // J Am Acad Dermatol. 1994. Vol. 30, N 1. Р. 54–60. doi: 10.1016/s0190-9622(94)70008-7
  49. Gummer C.L. Bubble hair: a cosmetic abnormality caused by brief, focal heating of damp hair fibres // Br J Dermatol. 1994. Vol. 131, N 6. Р. 901–903. doi: 10.1111/j.1365-2133.1994.tb08599.x
  50. Miteva M., Tosti A. Dermatoscopy of hair shaft disorders // J Am Acad Dermatol. 2013. Vol. 68, N 3. Р. 473–481. doi: 10.1016/j.jaad.2012.06.041
  51. Trüeb R.M. Trichonodosis neurotica and familial trichonodosis // J Am Acad Dermatol. 1994. Vol. 31, N 6. Р. 1077–1078. doi: 10.1016/s0190-9622(09)80099-6
  52. Kumaresan M., Deepa M. Trichonodosis // Int J Trichology. 2014. Vol. 6, N 1. Р. 31–33. doi: 10.4103/0974-7753.136760
  53. Kim S.Y., Yun S.J., Lee S.C., Lee J.B. Twisted and rolled body hairs: A new report in Asians // Ann Dermatol. 2015. Vol. 27, N 2. Р. 216–218. doi: 10.5021/ad.2015.27.2.216
  54. Giacaman A., Ferrando J. Claves diagnósticas en displasias pilosas II // Actas Dermosifiliogr. 2022. Vol. 113, N 2. Р. 150–156. doi: 10.1016/j.ad.2021.06.003
  55. Castelli E., Fiorella S., Caputo V. Pili annulati coincident with alopecia areata, autoimmune thyroid disease, and primary IgA deficiency: Case report and considerations on the literature // Case Rep Dermatol. 2012. Vol. 4, N 3. Р. 250–255. doi: 10.1159/000345469
  56. Hutchinson P.E., Cairns R.J., Wells R.S. Woolly hair. Clinical and general aspects // Trans St Johns Hosp Dermatol Soc. 1974. Vol. 60, N 2. Р. 160–177.
  57. Fernandes K.A., Fernandes K.A., Vargas T.J., Melo D.F. Wooly hair nevus // An Bras Dermatol. 2017. Vol. 92, N 5, Suppl. 1. Р. 163–165. doi: 10.1590/abd1806-4841.20175289
  58. Torres T., Machado S., Selores M. [Generalized woolly hair: Case report and literature review (In Portuguese).] // An Bras Dermatol. 2010. Vol. 85, N 1. Р. 97–100. doi: 10.1590/s0365-05962010000100016
  59. Pavone P., Falsaperla R., Barbagallo M., et al. Clinical spectrum of woolly hair: Indications for cerebral involvement // Ital J Pediatr. 2017. Vol. 43, N 1. Р. 99. doi: 10.1186/s13052-017-0417-1
  60. Patil S., Marwah M., Nadkarni N., et al. The medusa head: Dermoscopic diagnosis of woolly hair syndrome // Int J Trichology. 2012. Vol. 4, N 3. Р. 184–185. doi: 10.4103/0974-7753.100094
  61. Mathur M., Acharya P., Karki A., et al. Diagnosis of woolly hair using trichoscopy // Case Rep Dermatol Med. 2019. N 2019. Р. 8951093. doi: 10.1155/2019/8951093
  62. Veraitch O., Perez A., Hoque S.R., et al. Hair follicle miniaturization in a woolly hair nevus: A novel “Root” perspective for a mosaic hair disorder // Am J Dermatopathol. 2016. Vol. 38, N 3. Р. 239–243. doi: 10.1097/DAD.0000000000000525
  63. Hebert A.A., Charrow J., Esterly N.B., Fretzin D.F. Uncombable hair (pili trianguli et canaliculi): Evidence for dominant inheritance with complete penetrance based on scanning electron microscopy // Am J Med Genet. 1987. Vol. 28, N 1. Р. 185–193. doi: 10.1002/ajmg.1320280126
  64. Basmanav F.B., Cau L., Tafazzoli A., et al. Mutations in three genes encoding proteins involved in hair shaft formation cause uncombable hair syndrome // Am J Hum Genet. 2016. Vol. 99, N 6. Р. 1292–1304. doi: 10.1016/j.ajhg.2016.10.004
  65. Rieubland C., de Viragh P.A., Addor M.C. Uncombable hair syndrome: A clinical report // Eur J Med Genet. 2007. Vol. 50, N 4. Р. 309–314. doi: 10.1016/j.ejmg.2007.03.002
  66. Ramot Y., Zlotogorski A., Molho-Pessach V. Spontaneous quick resolution of uncombable hair syndrome-like disease // Skin Appendage Disord. 2019. Vol. 5, N 3. Р. 162–164. doi: 10.1159/000493649
  67. Itin P.H., Bühler U., Büchner S.A., Guggenheim R. Pili trianguli et canaliculi: A distinctive hair shaft defect leading to uncombable hair // Dermatology. 1993. Vol. 187, N 4. Р. 296–298. doi: 10.1159/000247273
  68. Hicks J., Metry D.W., Barrish J., Levy M. Uncombable hair (cheveux incoiffables, pili trianguli et canaliculi) syndrome: Brief review and role of scanning electron microscopy in diagnosis // Ultrastruct Pathol. 2001. Vol. 25, N 2. Р. 99–103.
  69. Ferrando J., Fontarnau R., Gratacos M.R., Mascaro J.M. [Pili canaliculi (uncombable hair syndrome or spun glass hair syndrome). A scanning electron microscope study of ten new cases (author’s transl) (In French).] // Ann Dermatol Venereol. 1980. Vol. 107, N 4. Р. 243–248.
  70. Novoa A., Azón A., Grimalt R. [Uncombable hair syndrome (In Spanish).] // An Pediatr (Barc). 2012. Vol. 77, N 2. Р. 139–140. doi: 10.1016/j.anpedi.2012.01.014
  71. Messenger A.G., de Berker D.A., Sinclair R.D. Disorders of hair. In: T. Burns, S. Breathnach, N. Cox, C. Griffiths, ed. Rook’s textbook of dermatology. 8th ed. West Sussex: Wiley-Blackwell, 2010. Р. 70–72.
  72. Swamy S.S., Ravikumar B.C., Vinay K.N., et al. Uncombable hair syndrome with a woolly hair nevus // Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2017. N 83. Р. 87–88.
  73. Chagas F.S., Donati A., Soares I.I., et al. Trichostasis spinulosa of the scalp mimicking alopecia areata black dots // An Bras Dermatol. 2014. Vol. 89, N 4. Р. 685–687. doi: 10.1590/abd1806-4841.20142407
  74. White S.W., Rodman O.G. Trichostasis spinulosa // J Natl Med Assoc. 1982. Vol. 74, N 1. Р. 31–33.
  75. Kelati A., Aqil N., Mernissi F.Z. Dermoscopic findings and their therapeutic implications in trichostasis spinulosa: A retrospective study of 306 patients // Skin Appendage Disord. 2018. Vol. 4, N 4. Р. 291–295. doi: 10.1159/000486541
  76. Chung T.A., Lee J.B., Jang H.S., et al. A clinical, microbiological, and histopathologic study of trichostasis spinulosa // J Dermatol. 1998. Vol. 25, N 11. Р. 697–702. doi: 10.1111/j.1346-8138.1998.tb02486.x
  77. Sidwell R.U., Francis N., Bunker C.B. Diffuse trichostasis spinulosa in chronic renal failure // Clin Exp Dermatol. 2006. Vol. 31, N 1. Р. 86–88. doi: 10.1111/j.1365-2230.2005.01985.x
  78. Strobos M.A., Jonkman M.F. Trichostasis spinulosa: Itchy follicular papules in young adults // Int J Dermatol. 2002. Vol. 41, N 10. Р. 643–646. doi: 10.1046/j.1365-4362.2002.01508.x
  79. Chun S.H., Bak H., Park C.O., et al. Trichostasis spinulosa arising within syringoma // J Dermatol. 2005. Vol. 32, N 7. Р. 611–613. doi: 10.1111/j.1346-8138.2005.tb00808.x
  80. Harford R.R., Cobb M.W., Miller M.L. Trichostasis spinulosa: A clinical simulant of acne open comedones // Pediatr Dermatol. 1996. Vol. 13, N 6. Р. 490–492. doi: 10.1111/j.1525-1470.1996.tb00731.x
  81. Kositkuljorn C., Suchonwanit P. Trichostasis spinulosa: A case report with an unusual presentation // Case Rep Dermatol. 2020. Vol. 12, N 3. Р. 178–185. doi: 10.1159/000509993
  82. Baddireddy K., Vasani R. Trichostasis spinulosa: An entity with cosmetic concern // CosmoDerma. 2021. N 1. Р. 48. doi: 10.25259/CSDM_52_2021

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Эко-Вектор, 2023

Ссылка на описание лицензии: https://eco-vector.com/for_authors.php#07
 


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах