Адоптивный перенос регуляторных В-лимфоцитов предотвращает тяжёлое поражение тканей лёгких при респираторном инфицировании вирусом гриппа A/H1N1
- Авторы: Дьяков И.Н.1, Чернышова И.Н.1, Гаврилова М.В.1, Бушкова К.К.1, Ртищев А.А.1, Абаева Н.Е.1, Маркушин С.Г.1, Хоченков Д.А.2, Булгакова И.Д.1,3, Снегирева Н.А.1, Свитич О.А.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
- ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени Н.Н. Блохина» Минздрава России
- ФГАОУ ВО «Первый МГМУ имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
- Выпуск: Том 102, № 6 (2025)
- Страницы: 737-749
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://journals.rcsi.science/0372-9311/article/view/381678
- DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-784
- EDN: https://elibrary.ru/GCDMOD
- ID: 381678
Цитировать
Аннотация
Цель работы — изучение роли регуляторных В-лимфоцитов в регуляции воспалительного процесса в лёгких на фоне инфекции вирусом гриппа A/H1N1/WSN/1933.
Материалы и методы. Мышам CBA/N на следующий день после интраназального заражения вирусом гриппа A/H1N1/WSN/1933 переносили внутривенно В-клетки мышей CBA: Breg — индуцированные in vitro под действием активаторов, содержание интерлейкин (ИЛ)-10+-регуляторных В-клеток высокое; Bcontr — инкубированные in vitro без активаторов, содержание интерлейкин-10+-регуляторных В-клеток минимальное; BPerC — выделенные В-клетки брюшной полости, без инкубации in vitro. На 4-е сутки после заражения оценивали гистологические изменения в лёгких, число IgM- и IgG-антителопродуцентов в лёгких и селезёнке, а также вирусную нагрузку в лёгких.
Результаты. Интраназальное заражение мышей CBA/N вирусом гриппа A/H1N1/WSN/1933 сопровождалось выявленными на 4-е сутки выраженными морфологическими изменениями лёгочной ткани, включая нарушение структуры тканей и клеточную инфильтрацию. Адоптивный перенос Breg на следующий день после заражения ассоциировался со снижением выраженности гистологических признаков повреждения лёгких по сравнению с группой без переноса. Перенос Bcontr и BPerC также сопровождался уменьшением выявленных тканевых повреждений, однако эффект был менее выраженным, чем при переносе Breg. Во всех группах с переносом B-клеток CBA отмечалось увеличение числа IgM- и IgG-антителопродуцентов в селезёнке и лёгких. При этом различий по показателю вирусной нагрузки в лёгких между сравниваемыми группами не выявлено.
Заключение. Выявленное предотвращение тяжёлого поражения тканей лёгких мышей CBA/N, заражённых вирусом гриппа A/H1N1/WSN/1933, при адоптивном переносе им индуцированных in vitro Breg мышей CBA обусловлено комбинацией факторов: усилением иммунного ответа за счёт переносимых клеток и регуляторной активностью переносимых Breg.
Ключевые слова
Об авторах
Илья Николаевич Дьяков
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Автор, ответственный за переписку.
Email: dyakov.instmech@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5384-9866
канд. биол. наук, в. н. с., зав. лаб. биосинтеза иммуноглобулинов отдела иммунологии и аллергологии НИИВС им. И.И. Мечникова; н. с. лаб. генетики бактерий отдела медицинской микробиологии НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи
Россия, МоскваИрина Николаевна Чернышова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: irina.n.chernyshova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5053-2433
канд. мед. наук, с. н. с. лаб. биосинтеза иммуноглобулинов отдела иммунологии и аллергологии
Россия, МоскваМарина Викторовна Гаврилова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: gavrilovamv@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-6936-2486
канд. биол. наук, н. с. лаб. биосинтеза иммуноглобулинов отдела иммунологии и аллергологии НИИВС им. И.И. Мечникова; н. с. лаб. генетики бактерий НИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи
Россия, МоскваКристина Константиновна Бушкова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: christina_bushkova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4757-0751
н. с. лаб. биосинтеза иммуноглобулинов отдела иммунологии и аллергологии
Россия, МоскваАртём Андреевич Ртищев
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: rtishchevartyom@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4212-5093
н. с. лаб. генетики РНК-содержащих вирусов отдела вирусологии им. О.Г. Анджапаридзе
Россия, МоскваНаталья Евгеньевна Абаева
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: fabaeva.nata@list.ru
ORCID iD: 0000-0003-3984-959X
н. с. лаб. биосинтеза иммуноглобулинов отдела иммунологии и аллергологии
Россия, МоскваСтанислав Георгиевич Маркушин
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: s.g.markushin@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-0994-5337
д-р мед. наук, зав. лаб. генетики РНК-содержащих вирусов отдела вирусологии им. О.Г. Анджапаридзе
Россия, МоскваДмитрий Александрович Хоченков
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени Н.Н. Блохина» Минздрава России
Email: khochenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5694-3492
канд. биол. наук, зав. лаб. биомаркеров и механизмов опухолевого ангиогенеза
Россия, МоскваИрина Дмитриевна Булгакова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»; ФГАОУ ВО «Первый МГМУ имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: bulgakova_i_d@staff.sechenov.ru
ORCID iD: 0000-0002-2629-9616
ассистент каф. микробиологии, вирусологии и иммунологии им. акад. А.А. Воробьева Института общественного здоровья им. Ф.Ф. Эрисмана Сеченовского Университета; м. н. с. лаб. молекулярной иммунологии НИИВС им. И.И. Мечникова
Россия, Москва, МоскваНадежда Анатольевна Снегирева
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: snegireva.nadezda@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5399-3224
н. с. лаб. биосинтеза иммуноглобулинов отдела иммунологии и аллергологии
Россия, МоскваОксана Анатольевна Свитич
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток имени И.И. Мечникова»
Email: svitichoa@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1757-8389
д-р мед. наук, профессор, академик РАН, директор
Россия, МоскваСписок литературы
- McCarthy M.K., Procario M.C., Twisselmann N., et al. Proinflammatory effects of interferon gamma in mouse adenovirus 1 myocarditis. J. Virol. 2015;89(1):468–79. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.02077-14
- Tao W., Zhang G., Liu C., et al. Low-dose LPS alleviates early brain injury after SAH by modulating microglial M1/M2 polarization via USP19/FOXO1/IL-10/IL-10R1 signaling. Redox Biol. 2023;66:102863. DOI: https://doi.org/10.1016/j.redox.2023.102863
- Niederman M.S., Torres A. Respiratory infections. Eur. Respir. Rev. 2022;31(166):220150. DOI: https://doi.org/10.1183/16000617.0150-2022
- GBD 2016 Lower Respiratory Infections Collaborators. Estimates of the global, regional, and national morbidity, mortality, and aetiologies of lower respiratory infections in 195 countries, 1990–2016: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2016. Lancet Infect. Dis. 2018;18(11):1191–210. DOI: https://doi.org/10.1016/S1473-3099(18)30310-4
- Nair H., Brooks W.A., Katz M., et al. Global burden of respiratory infections due to seasonal influenza in young children: a systematic review and meta-analysis. Lancet. 2011;378(9807):1917–30. DOI: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(11)61051-9
- Корчевая Е.Р., Грачева А.В., Дьяков И.Н. и др. Живые аттенуированные вакцины против COVID-19: подходы к разработке и перспективы клинического применения. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2023;100(3):225–236. Korchevaya E.R., Gracheva A.V., Dyakov I.N., et al. Live attenuated COVID-19 vaccines: approaches to development and prospects for clinical use. Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2023;100(3):225–236. DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-404
- Брико Н.И., Коршунов В.А., Краснова С.В. и др. Клинико-эпидемиологические особенности пациентов, госпитализированных с COVID-19 в различные периоды пандемии в Москве. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022;99(3):287–299. Briko N.I., Korshunov V.A., Krasnova S.V., et al. Clinical and epidemiological characteristics of hospitalized patients with COVID-19 during different pandemic periods in Moscow. Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology. 2022;99(3):287–299. DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-272
- Gusev E., Sarapultsev A., Solomatina L., Chereshnev V. SARS-CoV-2-specific immune response and the pathogenesis of COVID-19. Int. J. Mol. Sci. 2022;23(3):1716. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms23031716
- Zanza C., Romenskaya T., Manetti A.C., et al. Cytokine storm in COVID-19: immunopathogenesis and therapy. Medicina (Kaunas). 2022;58(2):144. DOI: https://doi.org/10.3390/medicina58020144
- Brandes M., Klauschen F., Kuchen S., Germain R.N. A systems analysis identifies a feedforward inflammatory circuit leading to lethal influenza infection. Cell. 2013;154(1):197–212. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cell.2013.06.013
- Mauad T., Hajjar L.A., Callegari G.D., et al. Lung pathology in fatal novel human influenza A (H1N1) infection. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2010;181(1):72–9. DOI: https://doi.org/10.1164/rccm.200909-1420OC
- Camp J.V., Bagci U., Chu Y.K., et al. Lower respiratory tract infection of the ferret by 2009 H1N1 pandemic influenza A virus triggers biphasic, systemic, and local recruitment of neutrophils. J. Virol. 2015;89(17):8733–48. DOI: https://doi.org/10.1128/JVI.00817-15
- Almutairi F., Sarr D., Tucker S.L., et al. RGS10 reduces lethal influenza infection and associated lung inflammation in mice. Front. Immunol. 2021;12:772288. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.772288
- Yao D., Bao L., Li F., et al. H1N1 influenza virus dose dependent induction of dysregulated innate immune responses and STAT1/3 activation are associated with pulmonary immunopathological damage. Virulence. 2022;13(1):1558–72. DOI: https://doi.org/10.1080/21505594.2022.2120951
- Herold S., Becker C., Ridge K.M., Budinger G.R. Influenza virus-induced lung injury: pathogenesis and implications for treatment. Eur. Respir. J. 2015;45(5):1463–78. DOI: https://doi.org/10.1183/09031936.00186214
- Dikiy S., Rudensky A.Y. Principles of regulatory T cell function. Immunity. 2023;56(2):240–55. DOI: https://doi.org/10.1016/j.immuni.2023.01.004
- Jansen K., Cevhertas L., Ma S., et al. Regulatory B cells, A to Z. Allergy. 2021;76(9):2699–715. DOI: https://doi.org/10.1111/all.14763
- Rosser E.C., Mauri C. Regulatory B cells: origin, phenotype, and function. Immunity. 2015;42(4):607–12. DOI: https://doi.org/10.1016/j.immuni.2015.04.005
- Catalán D., Mansilla M.A., Ferrier A., et al. Immunosuppressive mechanisms of regulatory B cells. Front. Immunol. 2021;12:611795. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.611795
- Martin F., Kearney J.F. B1 cells: similarities and differences with other B cell subsets. Curr. Opin. Immunol. 2001;13(2):195–201. DOI: https://doi.org/10.1016/s0952-7915(00)00204-1
- Suchanek O., Clatworthy M.R. Homeostatic role of B-1 cells in tissue immunity. Front. Immunol. 2023;14:1106294. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2023.1106294
- Liu F., Dai W., Li C., et al. Role of IL-10-producing regulatory B cells in modulating T-helper cell immune responses during silica-induced lung inflammation and fibrosis. Sci. Rep. 2016;6:28911. DOI: https://doi.org/10.1038/srep28911
- Chen Y., Li C., Lu Y., et al. IL-10-producing CD1dhiCD5+ regulatory B cells may play a critical role in modulating immune homeostasis in silicosis patients. Front. Immunol. 2017;8:110. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00110
- Habener A., Behrendt A.K., Skuljec J., et al. B cell subsets are modulated during allergic airway inflammation but are not required for the development of respiratory tolerance in a murine model. Eur. J. Immunol. 2017;47(3):552–62. DOI: https://doi.org/10.1002/eji.201646518
- Braza F., Chesne J., Durand M., et al. A regulatory CD9(+) B-cell subset inhibits HDM-induced allergic airway inflammation. Allergy. 2015;70(11):1421–31. DOI: https://doi.org/10.1111/all.12697
- Gao X., Ren X., Wang Q., et al. Critical roles of regulatory B and T cells in helminth parasite-induced protection against allergic airway inflammation. Clin. Exp. Immunol. 2019;198(3):390–402. DOI: https://doi.org/10.1111/cei.13362
- Gautam A., Park B.K., Kim T.H., et al. Peritoneal cells mediate immune responses and cross-protection against influenza A virus. Front. Immunol. 2019;10:1160. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01160
- Wang X., Ma K., Chen M., et al. IL-17A promotes pulmonary B-1a cell differentiation via induction of Blimp-1 expression during influenza virus infection. PLoS Pathog. 2016;12(1):e1005367. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005367
- Дьяков И.Н., Сидорова Е.В. Субпопуляции В-лимфоцитов и влияние микроокружения на их функциональную активность. Пульмонология. 2010;(5):116–123. Dyakov I.N., Sidorova E.V. B-lymphocyte subpopulations: microenvironmental influence on functional activity. Pulmonology. 2010;(5):116–123. (In Russ.) EDN: https://elibrary.ru/LQBZTQ
- Дьяков И.Н. Влияние микроокружения на функциональную активность В лимфоцитов. Дис. … канд. биол. наук. М.; 2009. Dyakov I.N. Influence of the microenvironment on the functional activity of B lymphocytes. Diss. … Cand. Sci. (Biol.). Moscow; 2009. EDN: https://elibrary.ru/NKTUST
- Дьяков И.Н., Гаврилова М.В., Чернышова И.Н., Сидорова Е.В. Влияние микроокружения на функциональную активность В-лимфоцитов мыши. Биологические мембраны. 2008;25(5):360–6. Dyakov I.N., Gavrilova M.V., Chernyshova I.N., Sidorova E.V. The effect of the microenvironment on the functional activity of mouse B-lymphocytes. Biological Membranes. 2008;25(5):360–6. EDN: https://elibrary.ru/scgydb
Дополнительные файлы


