Кратковременное фотоингибирование индуцирует длительное фотообразование водорода у фототрофной культуры Chlorella sorokiniana на полной среде
- Авторы: Волгушева А.А.1, Антал Т.К.2
-
Учреждения:
- Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, биологический факультет, кафедра биофизики
- Псковский государственный университет, лаборатория комплексных экологических исследований
- Выпуск: Том 90, № 7 (2025): Новые достижения в фотобиохимии и фотобиофизике (специальный выпуск)
- Страницы: 1018-1027
- Раздел: Статьи
- URL: https://journals.rcsi.science/0320-9725/article/view/356227
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0320972525070105
- EDN: https://elibrary.ru/JZUIHH
- ID: 356227
Цитировать
Аннотация
В работе впервые показана способность иммобилизованной в альгинате культуры Chlorella sorokiniana к длительному образованию водорода (Н2) при культивировании в строго фотоавтотрофных условиях на полной минеральной среде. Для снижения фотосинтетической активности иммобилизованные клетки предварительно инкубировали в течение 30 минут при высокой интенсивности света (1000 мкмоль фотонов м−2 с−1). Способность к образованию Н2 оценивали при освещении 40 мкмоль фотонов м−2 с−1. Культура, не барботированная аргоном, выделяла Н2 в течение 9 дней, общий выход газа составил 0,1 моль Н2/м2. В атмосфере аргона выделение Н2 продолжалось 51 день, а общий выход увеличился до 0,55 моль Н2/м2. Иммобилизованная культура была способна к продукции Н2 при 16%-ном содержании О2 в газовой фазе, что может быть связано с эффектами фотоингибирования и активации путей поглощения кислорода в митохондриях и хлоропластах. Анализ функционирования электрон-транспортной цепи в клетках микроводоросли выявил снижение скорости электронного транспорта, увеличение размера антенны фотосистемы 2 (ФС2) и развитие процессов нефотохимического тушения, при этом активность ФС2 оставалась умеренно высокой (Fv/Fm = 0,4–0,6). Ингибиторный анализ с использованием 10−5 М DCMU показал, что вклад ФС2 в гидрогеназную реакцию увеличивался от 30% в первый день эксперимента до 50% к четвёртому дню. При этом добавление 10−5 М DBMIB приводило к 90%-ному снижению скорости образования H2 как на первый, так и на четвёртый день.
Об авторах
А. А. Волгушева
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, биологический факультет, кафедра биофизики
Автор, ответственный за переписку.
Email: volgusheva_alena@mail.ru
Москва
Т. К. Антал
Псковский государственный университет, лаборатория комплексных экологических исследований
Email: volgusheva_alena@mail.ru
Псков
Список литературы
- Kalamaras, C. M., and Efstathiou, A. M. (2013) Hydrogen production technologies: current state and future developments, Conf. Papers Energy, 6, 1-9, https://doi.org/10.1155/2013/690627.
- Kosourov, S., Böhm, M., Senger, M., Berggren, G., Stensjö, K., Mamedov, F., Lindblad, P., and Allahverdiyeva, Y. (2021) Photosynthetic hydrogen production: Novel protocols, promising engineering approaches and application of semisynthetic hydrogenases, Physiol. Plant., 173, 555-567, https://doi.org/10.1111/ppl.13428.
- Tsygankov, A. A. (2007) Biological generation of hydrogen, Russ. J. Gen. Chem., 77, 685-693, https://doi.org/10.1134/S1070363207040317.
- Antal, T. K., Krendeleva, T. E., and Rubin, A. B. (2011) Acclimation of green algae to sulfur deficiency: underlying mechanisms and ap-plication for hydrogen production, Appl. Microbiol. Biotechnol., 89, 3-15, https://doi.org/10.1007/s00253-010-2879-6.
- Volgusheva, A., Styring, S., and Mamedov, F. (2013) Increased photosystem II stability promotes H2 production in sulfur-deprived Chla-mydomonas reinhardtii, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 110, 7223-7228, https://doi.org/10.1073/pnas.1220645110.
- Antal, T., Petrova, E., Slepnyova, V., Kukarskikh, G., Volgusheva, A., Dubini, A., and Rubin, A. B. (2020) Photosynthetic hydrogen pro-duction as acclimation mechanism in nutrient-deprived Chlamydomonas, Algal Res., 49, 101951, https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.101951.
- Liran, O., Semyatich, R., Milrad, Y., Eilenberg, H., Weiner, I., and Yacoby, I. (2016) Microoxic niches within the thylakoid stroma of air-grown Chlamydomonas reinhardtii protect [FeFe]-hydrogenase and support hydrogen production under fully aerobic environment, Plant Physiol., 172, 264-271, https://doi.org/10.1104/pp.16.01063.
- Kosourov, S., Jokel, M., Aro, E. M., Allahverdiyeva, Y. (2018) A new approach for sustained and efficient H2 photoproduction by Chla-mydomonas reinhardtii, Energy Environ. Sci., 11, 1431-1436, https://doi.org/10.1039/C8EE00054A.
- Milrad, Y., Schweitzer, S., Feldman, Y., and Yacoby, I. (2018) Green algal hydrogenase activity is outcompeted by carbon fixation before inactivation by oxygen takes place, Plant Physiol., 177, 918-926, https://doi.org/10.1104/pp.18.00229.
- Hwang, J. H., Kim, H. C., Choi, J. A., Abou-Shanab, R. A. I., Dempsey, B. A., Regan, J. M., Kim, J. R., Song, H., Nam, I. H., Kim, S. N., Lee, W., Park, D., Kim, Y., Choi, J., Ji, M. K., Jung, W., and Jeon, B. H. (2014) Photoautotrophic hydrogen production by eukaryotic mi-croalgae under aerobic conditions, Nat. Commun., 5, 3234, https://doi.org/10.1038/ncomms4234.
- Melis, A., Zhang, L., Forestier, M., Ghirardi, M. L., and Seibert, M. (2000) Sustained photobiological hydrogen gas production upon re-versible inactivation of oxygen evolution in the green alga Chlamydomonas reinhardtii, Plant Physiol., 122, 127-136, https://doi.org/10.1104/pp.122.1.127.
- Tsygankov, A. (2002) Hydrogen photoproduction under continuous illumination by sulfur-deprived, synchronous Chlamydomonas rein-hardtii cultures, Int. J. Hydrog. Energy, 27, 1239-1244, https://doi.org/10.1016/S0360-3199(02)00108-8.
- Philipps, G., Happe, T., and Hemschemeier, A. (2012) Nitrogen deprivation results in photosynthetic hydrogen production in Chlamydo-monas reinhardtii, Planta, 235, 729-745, https://doi.org/10.1007/s00425-011-1537-2.
- He, M., Li, L., Zhang, L., and Liu, J. (2012) The enhancement of hydrogen photoproduction in Chlorella protothecoides exposed to nitro-gen limitation and sulfur deprivation, Int. J. Hydrog. Energy, 37, 16903-16915, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2012.08.121.
- Batyrova, K. A., Tsygankov, A. A., and Kosourov, S. N. (2012) Sustained hydrogen photoproduction by phosphorus-deprived Chla-mydomonas reinhardtii cultures, Int. J. Hydrog. Energy, 37, 8834-8839, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2012.01.068.
- Papazi, A., Gjindali, A. I., Kastanaki, E., Assimakopoulos, K., Stamatakis, K., and Kotzabasis, K. (2014) Potassium deficiency, a “smart” cellular switch for sustained high yield hydrogen production by the green alga Scenedesmus obliquus, Int. J. Hydrog. Energy, 39, 19452-19464, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2014.09.096.
- Batyrova, K., Gavrisheva, A., Ivanova, E., Liu, J., and Tsygankov, A. (2015) Sustainable hydrogen photoproduction by phospho-rus-deprived marine green microalgae Chlorella sp., Int. J. Mol. Sci., 16, 2705-2716, https://doi.org/10.3390/ijms16022705.
- Krishna, P. S., Styring, S., Mamedov, F. (2019) Photosystem ratio imbalance promotes direct sustainable H2 production in Chlamydomo-nas reinhardtii, Green Chem., 21, 4683-4690, https://doi.org/10.1039/C9GC01416K.
- Khosravitabar, F., and Mamedov, F. (2023) Partial inhibition of the inter-photosystem electron transfer at cytochrome b6f complex pro-motes periodic surges of hydrogen evolution in Chlamydomonas reinhardtii, Int. J. Hydrog. Energy, 48, 36314-36326, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2023.06.050.
- Kosourov, S. N., and Seibert, M. (2009) Hydrogen photoproduction by nutrient-deprived Chlamydomonas reinhardtii cells immobilized within thin alginate films under aerobic and anaerobic conditions, Biotech Bioeng., 102, 50-58, https://doi.org/10.1002/bit.22050.
- Volgusheva, A., Kosourov, S., Lynch, F., and Allahverdiyeva, Y. (2019) Immobilized heterocysts as microbial factories for sustainable nitrogen fixation, J. Biotechnol., 306, 100016, https://doi.org/10.1016/j.btecx.2020.100016.
- Tsygankov, A., and Kosourov, S. (2014) Immobilization of photosynthetic microorganisms for efficient hydrogen production, In Microbi-al BioEnergy: Hydrogen Production (Zannoni, D., and De Philippis, R., eds), Dordrecht, Springer Netherlands, p. 321-347, https://doi.org/10.1007/978-94-017-8554-9_14.
- Tsygankov, A., Kosourov, S., Tolstygina, I., Ghirardi, M., and Seibert, M. (2006) Hydrogen production by sulfur-deprived Chlamydo-monas reinhardtii under photoautotrophic conditions, Int. J. Hydrog. Energy, 31, 1574-1584, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2006.06.024.
- Tolstygina, I. V., Antal, T. K., Kosourov, S. N., Krendeleva, T. E., Rubin, A. B., and Tsygankov, A. A. (2009) Hydrogen production by photoautotrophic sulfur deprived Chlamydomonas reinhardtii pre-grown and incubated under high light, Biotechnol. Bioeng., 102, 1055-1061, https://doi.org/10.1002/bit.22148.
- Solovchenko, A., Pogosyan, S., Chivkunova, O., Selyakh, I., Semenova, L., Voronova, E., et al. (2014) Phycoremediation of alcohol dis-tillery wastewater with a novel Chlorella sorokiniana strain cultivated in a photobioreactor monitored on-line via chlorophyll fluorescence, Algal Res., 6, 234-241, https://doi.org/10.1016/j.algal.2014.01.002.
- Harris, E. H. (1989) The Chlamydomonas sourcebook: A Comprehensive Guide to Biology and Laboratory Use, San Diego, Academic Press, 780 pp.
- Lichtenthaler, H. K. (1987) Chlorophylls and carotenoids: Pigments of photosynthetic biomembranes, in Methods in Enzymology, Elsevier, p. 350-382.
- Gfeller, R. P., and Gibbs, M. (1984) Fermentative metabolism of Chlamydomonas reinhardtii: I. Analysis of Fermentative Products from Starch in Dark and Light, Plant Physiol., 75, 212-218, https://doi.org/10.1104/pp.75.1.212.
- Lazár, D. (2006) The polyphasic chlorophyll a fluorescence rise measured under high intensity of exciting light, Funct. Plant Biol., 33, 9-30, https://doi.org/10.1071/FP05095.
- Strasser, R. J., Tsimilli-Michael, M., Qiang, S., and Goltsev, V. (2010) Simultaneous in vivo recording of prompt and delayed fluorescence and 820-nm reflection changes during drying and after rehydration of the resurrection plant Haberlea rhodopensis, Biochim. Biophys. Acta, 1797, 1313-1326, https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2010.03.008.
- Nagy, V., Podmaniczki, A., Vidal-Meireles, A., Tengölics, R., Kovács, L., Rákhely, G., Scoma, A., and Tóth, S. Z. (2018) Wa-ter-splitting-based, sustainable and efficient H2 production in green algae as achieved by substrate limitation of the Cal-vin-Benson-Bassham cycle, Biotechnol. Biofuels, 11, 69, https://doi.org/10.1186/s13068-018-1069-0.
- Markov, S., Eivazova, E., and Greenwood, J. (2006) Photostimulation of H2 production in the green alga Chlamydomonas reinhardtii upon photoinhibition of its O2-evolving system, Int. J. Hydrog. Energy, 31, 1314-1317, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2005.11.017.
- Petrova, E. V., Kukarskikh, G. P., Krendeleva, T. E., and Antal, T. K. (2020) The mechanisms and role of photosynthetic hydrogen pro-duction by green microalgae, Microbiology, 89, 251-265, https://doi.org/10.1134/S0026261720030169.
Дополнительные файлы


