Кратковременное фотоингибирование индуцирует длительное фотообразование водорода у фототрофной культуры Chlorella sorokiniana на полной среде

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В работе впервые показана способность иммобилизованной в альгинате культуры Chlorella sorokiniana к длительному образованию водорода (Н2) при культивировании в строго фотоавтотрофных условиях на полной минеральной среде. Для снижения фотосинтетической активности иммобилизованные клетки предварительно инкубировали в течение 30 минут при высокой интенсивности света (1000 мкмоль фотонов м−2 с−1). Способность к образованию Н2 оценивали при освещении 40 мкмоль фотонов м−2 с−1. Культура, не барботированная аргоном, выделяла Н2 в течение 9 дней, общий выход газа составил 0,1 моль Н22. В атмосфере аргона выделение Н2 продолжалось 51 день, а общий выход увеличился до 0,55 моль Н22. Иммобилизованная культура была способна к продукции Н2 при 16%-ном содержании О2 в газовой фазе, что может быть связано с эффектами фотоингибирования и активации путей поглощения кислорода в митохондриях и хлоропластах. Анализ функционирования электрон-транспортной цепи в клетках микроводоросли выявил снижение скорости электронного транспорта, увеличение размера антенны фотосистемы 2 (ФС2) и развитие процессов нефотохимического тушения, при этом активность ФС2 оставалась умеренно высокой (Fv/Fm = 0,4–0,6). Ингибиторный анализ с использованием 10−5 М DCMU показал, что вклад ФС2 в гидрогеназную реакцию увеличивался от 30% в первый день эксперимента до 50% к четвёртому дню. При этом добавление 10−5 М DBMIB приводило к 90%-ному снижению скорости образования H2 как на первый, так и на четвёртый день.

Об авторах

А. А. Волгушева

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, биологический факультет, кафедра биофизики

Автор, ответственный за переписку.
Email: volgusheva_alena@mail.ru
Москва

Т. К. Антал

Псковский государственный университет, лаборатория комплексных экологических исследований

Email: volgusheva_alena@mail.ru
Псков

Список литературы

  1. Kalamaras, C. M., and Efstathiou, A. M. (2013) Hydrogen production technologies: current state and future developments, Conf. Papers Energy, 6, 1-9, https://doi.org/10.1155/2013/690627.
  2. Kosourov, S., Böhm, M., Senger, M., Berggren, G., Stensjö, K., Mamedov, F., Lindblad, P., and Allahverdiyeva, Y. (2021) Photosynthetic hydrogen production: Novel protocols, promising engineering approaches and application of semisynthetic hydrogenases, Physiol. Plant., 173, 555-567, https://doi.org/10.1111/ppl.13428.
  3. Tsygankov, A. A. (2007) Biological generation of hydrogen, Russ. J. Gen. Chem., 77, 685-693, https://doi.org/10.1134/S1070363207040317.
  4. Antal, T. K., Krendeleva, T. E., and Rubin, A. B. (2011) Acclimation of green algae to sulfur deficiency: underlying mechanisms and ap-plication for hydrogen production, Appl. Microbiol. Biotechnol., 89, 3-15, https://doi.org/10.1007/s00253-010-2879-6.
  5. Volgusheva, A., Styring, S., and Mamedov, F. (2013) Increased photosystem II stability promotes H2 production in sulfur-deprived Chla-mydomonas reinhardtii, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 110, 7223-7228, https://doi.org/10.1073/pnas.1220645110.
  6. Antal, T., Petrova, E., Slepnyova, V., Kukarskikh, G., Volgusheva, A., Dubini, A., and Rubin, A. B. (2020) Photosynthetic hydrogen pro-duction as acclimation mechanism in nutrient-deprived Chlamydomonas, Algal Res., 49, 101951, https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.101951.
  7. Liran, O., Semyatich, R., Milrad, Y., Eilenberg, H., Weiner, I., and Yacoby, I. (2016) Microoxic niches within the thylakoid stroma of air-grown Chlamydomonas reinhardtii protect [FeFe]-hydrogenase and support hydrogen production under fully aerobic environment, Plant Physiol., 172, 264-271, https://doi.org/10.1104/pp.16.01063.
  8. Kosourov, S., Jokel, M., Aro, E. M., Allahverdiyeva, Y. (2018) A new approach for sustained and efficient H2 photoproduction by Chla-mydomonas reinhardtii, Energy Environ. Sci., 11, 1431-1436, https://doi.org/10.1039/C8EE00054A.
  9. Milrad, Y., Schweitzer, S., Feldman, Y., and Yacoby, I. (2018) Green algal hydrogenase activity is outcompeted by carbon fixation before inactivation by oxygen takes place, Plant Physiol., 177, 918-926, https://doi.org/10.1104/pp.18.00229.
  10. Hwang, J. H., Kim, H. C., Choi, J. A., Abou-Shanab, R. A. I., Dempsey, B. A., Regan, J. M., Kim, J. R., Song, H., Nam, I. H., Kim, S. N., Lee, W., Park, D., Kim, Y., Choi, J., Ji, M. K., Jung, W., and Jeon, B. H. (2014) Photoautotrophic hydrogen production by eukaryotic mi-croalgae under aerobic conditions, Nat. Commun., 5, 3234, https://doi.org/10.1038/ncomms4234.
  11. Melis, A., Zhang, L., Forestier, M., Ghirardi, M. L., and Seibert, M. (2000) Sustained photobiological hydrogen gas production upon re-versible inactivation of oxygen evolution in the green alga Chlamydomonas reinhardtii, Plant Physiol., 122, 127-136, https://doi.org/10.1104/pp.122.1.127.
  12. Tsygankov, A. (2002) Hydrogen photoproduction under continuous illumination by sulfur-deprived, synchronous Chlamydomonas rein-hardtii cultures, Int. J. Hydrog. Energy, 27, 1239-1244, https://doi.org/10.1016/S0360-3199(02)00108-8.
  13. Philipps, G., Happe, T., and Hemschemeier, A. (2012) Nitrogen deprivation results in photosynthetic hydrogen production in Chlamydo-monas reinhardtii, Planta, 235, 729-745, https://doi.org/10.1007/s00425-011-1537-2.
  14. He, M., Li, L., Zhang, L., and Liu, J. (2012) The enhancement of hydrogen photoproduction in Chlorella protothecoides exposed to nitro-gen limitation and sulfur deprivation, Int. J. Hydrog. Energy, 37, 16903-16915, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2012.08.121.
  15. Batyrova, K. A., Tsygankov, A. A., and Kosourov, S. N. (2012) Sustained hydrogen photoproduction by phosphorus-deprived Chla-mydomonas reinhardtii cultures, Int. J. Hydrog. Energy, 37, 8834-8839, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2012.01.068.
  16. Papazi, A., Gjindali, A. I., Kastanaki, E., Assimakopoulos, K., Stamatakis, K., and Kotzabasis, K. (2014) Potassium deficiency, a “smart” cellular switch for sustained high yield hydrogen production by the green alga Scenedesmus obliquus, Int. J. Hydrog. Energy, 39, 19452-19464, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2014.09.096.
  17. Batyrova, K., Gavrisheva, A., Ivanova, E., Liu, J., and Tsygankov, A. (2015) Sustainable hydrogen photoproduction by phospho-rus-deprived marine green microalgae Chlorella sp., Int. J. Mol. Sci., 16, 2705-2716, https://doi.org/10.3390/ijms16022705.
  18. Krishna, P. S., Styring, S., Mamedov, F. (2019) Photosystem ratio imbalance promotes direct sustainable H2 production in Chlamydomo-nas reinhardtii, Green Chem., 21, 4683-4690, https://doi.org/10.1039/C9GC01416K.
  19. Khosravitabar, F., and Mamedov, F. (2023) Partial inhibition of the inter-photosystem electron transfer at cytochrome b6f complex pro-motes periodic surges of hydrogen evolution in Chlamydomonas reinhardtii, Int. J. Hydrog. Energy, 48, 36314-36326, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2023.06.050.
  20. Kosourov, S. N., and Seibert, M. (2009) Hydrogen photoproduction by nutrient-deprived Chlamydomonas reinhardtii cells immobilized within thin alginate films under aerobic and anaerobic conditions, Biotech Bioeng., 102, 50-58, https://doi.org/10.1002/bit.22050.
  21. Volgusheva, A., Kosourov, S., Lynch, F., and Allahverdiyeva, Y. (2019) Immobilized heterocysts as microbial factories for sustainable nitrogen fixation, J. Biotechnol., 306, 100016, https://doi.org/10.1016/j.btecx.2020.100016.
  22. Tsygankov, A., and Kosourov, S. (2014) Immobilization of photosynthetic microorganisms for efficient hydrogen production, In Microbi-al BioEnergy: Hydrogen Production (Zannoni, D., and De Philippis, R., eds), Dordrecht, Springer Netherlands, p. 321-347, https://doi.org/10.1007/978-94-017-8554-9_14.
  23. Tsygankov, A., Kosourov, S., Tolstygina, I., Ghirardi, M., and Seibert, M. (2006) Hydrogen production by sulfur-­deprived Chlamydo-monas reinhardtii under photoautotrophic conditions, Int. J. Hydrog. Energy, 31, 1574-1584, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2006.06.024.
  24. Tolstygina, I. V., Antal, T. K., Kosourov, S. N., Krendeleva, T. E., Rubin, A. B., and Tsygankov, A. A. (2009) Hydrogen production by photoautotrophic sulfur deprived Chlamydomonas reinhardtii pre-grown and incubated under high light, Biotechnol. Bioeng., 102, 1055-1061, https://doi.org/10.1002/bit.22148.
  25. Solovchenko, A., Pogosyan, S., Chivkunova, O., Selyakh, I., Semenova, L., Voronova, E., et al. (2014) Phycoremediation of alcohol dis-tillery wastewater with a novel Chlorella sorokiniana strain cultivated in a photobioreactor monitored on-line via chlorophyll fluorescence, Algal Res., 6, 234-241, https://doi.org/10.1016/j.algal.2014.01.002.
  26. Harris, E. H. (1989) The Chlamydomonas sourcebook: A Comprehensive Guide to Biology and Laboratory Use, San Diego, Academic Press, 780 pp.
  27. Lichtenthaler, H. K. (1987) Chlorophylls and carotenoids: Pigments of photosynthetic biomembranes, in Methods in Enzymology, Elsevier, p. 350-382.
  28. Gfeller, R. P., and Gibbs, M. (1984) Fermentative metabolism of Chlamydomonas reinhardtii: I. Analysis of Fermentative Products from Starch in Dark and Light, Plant Physiol., 75, 212-218, https://doi.org/10.1104/pp.75.1.212.
  29. Lazár, D. (2006) The polyphasic chlorophyll a fluorescence rise measured under high intensity of exciting light, Funct. Plant Biol., 33, 9-30, https://doi.org/10.1071/FP05095.
  30. Strasser, R. J., Tsimilli-Michael, M., Qiang, S., and Goltsev, V. (2010) Simultaneous in vivo recording of prompt and delayed fluorescence and 820-nm reflection changes during drying and after rehydration of the resurrection plant Haberlea rhodopensis, Biochim. Biophys. Acta, 1797, 1313-1326, https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2010.03.008.
  31. Nagy, V., Podmaniczki, A., Vidal-Meireles, A., Tengölics, R., Kovács, L., Rákhely, G., Scoma, A., and Tóth, S. Z. (2018) Wa-ter-splitting-based, sustainable and efficient H2 production in green algae as achieved by substrate limitation of the Cal-vin-Benson-Bassham cycle, Biotechnol. Biofuels, 11, 69, https://doi.org/10.1186/s13068-018-1069-0.
  32. Markov, S., Eivazova, E., and Greenwood, J. (2006) Photostimulation of H2 production in the green alga Chlamy­domonas reinhardtii upon photoinhibition of its O2-evolving system, Int. J. Hydrog. Energy, 31, 1314-1317, https://doi.org/10.1016/j.ijhydene.2005.11.017.
  33. Petrova, E. V., Kukarskikh, G. P., Krendeleva, T. E., and Antal, T. K. (2020) The mechanisms and role of photosynthetic hydrogen pro-duction by green microalgae, Microbiology, 89, 251-265, https://doi.org/10.1134/S0026261720030169.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».