Сравнительная филогеография викариантных видов группы Daphnia longispina s. lat. (Crustacea: Cladocera) в Северной Евразии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В работе представлены новые данные по популяционно-генетическому полиморфизму, филогении и филогеографии двух викариантных видов группы Daphnia longispina s.lat. (Crustacea: Cladocera: Daphniidae) на территории Северной Евразии: D. longispina s.str. O.F. Müller, 1776 и D. dentifera Forbes, 1893. На основе нуклеотидных последовательностей фрагментов некодирующего 12S рРНК и белок кодирующего ND2 генов митохондриальной ДНК проведена реконструкция демографических процессов, которые имели место в отдельных популяциях этих видов на территории обширного региона. Принятая ранее гипотеза о разной демографической истории “сибирской” и “европейской” клад D. longispina s.str. не нашла подтверждения, также нами впервые продемонстрирована глубокая митохондриальная дивергенция между популяциями “сибирской” клады. Обнаружена еще одна филогенетическая линия D. longispina s.str., ранее не указанная для Сибири. Тем не менее, выявленные закономерности распределения D. longispina s.str. и D. dentifera на территории Северной Евразии подтверждают сделанный ранее вывод о происходивших в разные фазы плейстоцена неоднократных дисперсионных и викариантных событиях.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Е. И. Зуйкова

Институт систематики и экологии животных Сибирского отделения Российской академии наук; Санкт-Петербургский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии им. Л.С. Берга

Автор, ответственный за переписку.
Email: zuykova1064@yandex.ru
Россия, Новосибирск; Санкт-Петербург

Л. П. Слепцова

Институт систематики и экологии животных Сибирского отделения Российской академии наук

Email: zuykova1064@yandex.ru
Россия, Новосибирск

Н. А. Бочкарев

Институт систематики и экологии животных Сибирского отделения Российской академии наук; Санкт-Петербургский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии им. Л.С. Берга

Email: zuykova1064@yandex.ru
Россия, Новосибирск; Санкт-Петербург, Россия

Е. С. Захаров

Северо-Восточный Федеральный университет

Email: zuykova1064@yandex.ru
Россия, Якутск

Н. Н. Захарова

Северо-Восточный Федеральный университет

Email: zuykova1064@yandex.ru
Россия, Якутск

А. А. Котов

Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова Российской академии наук

Email: zuykova1064@yandex.ru
Россия, Москва

Список литературы

  1. Аржанников С.Г., Алексеев С.В., Глызин А.В. и др. 2000. Природная обстановка в Голоцене в западной части Тоджинской впадины на примере разреза Мерзлый Яр // Проблемы реконструкции климата и природной среды голоцена и плейстоцена Сибири. Новосибирск: Изд-во Ин-та археологии и этнографии СО РАН. Вып. 2. С. 18.
  2. Гречко В.В. 2013. Проблемы молекулярной филогенетики на примере отряда чешуйчатых рептилий (отряд Squamata): митохондриальные ДНК-маркеры // Мол. биол. Т. 47(1). С. 61.
  3. Картавцев Ю.Ф. 2013. Генетическая дивергенция видов и других таксонов. Географическое видообразование и генетическая парадигма неодарвинизма в действии // Успехи соврем. биол. Т. 133(5). С. 419.
  4. Adamowicz S.J., Petrusek A., Colbourne J.K. et al. 2009. The scale of divergence: a phylogenetic appraisal of intercontinental allopatric speciation in a passively dispersed freshwater zooplankton genus // Mol. Phyl. Evol. V. 50. P. 423.
  5. Avise J.C. 2000. Phylogeography. The history and formation of species. Cambridge: Harvard Univ. Press.
  6. Avise J.C., Arnold J., Ball R.M. et al. 1987. Intraspecific phylogeography: the mitochondrial DNA bridge between population genetics and systematics // Annual. Rev. Ecol. Syst. V. 18. P. 489.
  7. Bandelt H., Forster P., Röhl A. 1999. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies // Mol. Biol. Evol. V. 16. P. 37.
  8. Belyaeva M., Taylor D.J. 2009. Cryptic species within the Chydorus sphaericus species complex (Crustacea: Cladocera) revealed by molecular markers and sexual stage morphology // Mol. Phyl. Evol. V. 50. P. 534.
  9. Benzie J.A.H. 2005. The genus Daphnia (including Daphniopsis) (Anomopoda: Daphniidae). Guides to the identification of the microinvertebrates of the continental waters of the world 21. Leiden: Ghent & Backhuys Publ.
  10. Crease T.J., Omilian A.R., Costanzo K.S. et al. 2012. Transcontinental phylogeography of the Daphnia pulex species complex // PLoS ONE. V. 7. № e46620. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0046620
  11. Cornetti L., Fields P.D., Van Damme K. et al. 2019. A fossil-calibrated phylogenomic analysis of Daphnia and the Daphniidae // Mol. Phyl. Evol. V. 137. P. 250. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2019.05.018
  12. Darriba D., Taboada G.L., Doallo R. et al. 2012. jModelTest 2: more models, new heuristics and parallel computing // Nature Meth. V. 9. № 772.
  13. De Gelas K., De Meester L. 2005. Phylogeography of Daphnia magna in Europe // Mol. Ecol. V. 1. P. 753. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2004.02434.x
  14. De Meester L., Gómez A., Okamura B. et al. 2002. The Monopolization hypothesis and the dispersal-gene flow paradox in aquatic organisms // Acta Oecol. V. 23. P. 121.
  15. De Salle R., Freedman T., Prager E.M. et al. 1987. Tempo and mode of sequence evolution in mitochondrial DNA of Hawaiian Drosophila // J. Mol. Evol. V. 26. P. 157.
  16. Excoffier L. 2004. Patterns of DNA sequence diversity and genetic structure after a range expansion: lessons from the infinite-island model // Mol. Ecol. V. 3. P. 853.
  17. Excoffier L., Lischer H.E.L. 2010. Arlequin suite ver 3.5: A new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows // Mol. Ecol. Res. V. 10. P. 564.
  18. Figuerola J., Green A.J. 2002. Dispersal of aquatic organisms by water birds: a review of past research and priorities for future studies // Freshwater Biol. V. 47. P. 483. https://doi.org/10.1046/j.1365-2427.2002.00829.x
  19. Figuerola J., Green A.J., Michot T.C. 2005. Invertebrate eggs can fly: evidence of Waterfowl-mediated gene flow in aquatic invertebrates // Amer. Nat. V. 165. P. 274. https://doi.org/10.1086/427092
  20. Frey D.G. 1987. The non-cosmopolitanism of chydorid Cladocera: implications for biogeography and evolution // Crustacean Iss. V. 4. P. 237.
  21. Fu Y.X. 1997. Statistical tests of neutrality of mutations against population growth, hitchhiking and background selection // Genetics. V. 147. P. 915.
  22. Garrigan D., Lewontin R., Wakeley J. 2010. Measuring the sensitivity of single-locus “neutrality tests” using a direct perturbation approach // Mol. Biol. Evol. V. 27. P. 73. https://doi.org/10.1093/molbev/msp209
  23. Grant W.A.S., Bowen B.W. 1998. Shallow population histories in deep evolutionary lineages of marine fishes: Insights from sardines and anchovies and lessons for conservation // J. Heredity. V. 89. P. 415. https://doi.org/10.1093/jhered/89.5.415
  24. Grant W.S. 2015. Problems and cautions with sequence mismatch analysis and Bayesian Skyline Plots to infer historical demography // J. Heredity. V. 106. P. 333.
  25. Grosswald M.G., Kotlyakov V.M. 1989. Great preglacial drainage system Northern Asia and its importance for interregional correlations // Quaternary period. Paleography and lithology. Kishinev: Shtiinitsa. P. 5.
  26. Guindon S., Gascuel O. 2003. A simple, fast, and accurate algorithm to estimate large phylogenies by maximum likelihood // System. Biol. V. 52. P. 696.
  27. Hall T.A. 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT // Nucl. Acids. Symp. Ser. V. 41. P. 95.
  28. Hamrová, E., Mergeay J., Petrusek A. 2011. Strong differences in the clonal variation of twoDaphnia species from mountain lakes affected by overwintering strategy // BMC Evol. Biol. V. 11. № 231. https://doi.org/10.1186/1471-2148-11-231
  29. Harpending H. 1994. Signature of ancient population growth in a low resolution mitochondrial DNA mismatch distribution // Hum. Biol. V. 66. P. 591.
  30. Havel J.E., Shurin J.B. 2004. Mechanisms, effects, and scales of dispersal in freshwater zooplankton // Limnol. Oceanogr. V. 49. P. 1229. https://doi.org/10.4319/lo.2004.49.4_part_2.1229
  31. Hebert P.D.N., Cywinska A., Ball S.L. et al. 2003. Biological identifications through DNA barcodes // Proc. Roy. Soc. B: Biol. Sci. V. 270. P. 313. https://doi.org/10.1098/rspb.2002.2218
  32. Hebert P.D.N., Wilson C.C. 1994. Provincialism in plankton: endemism and allopatric speciation in Australian Daphnia // Evolution. V. 48. P. 1333. https://doi.org/10.1111/j.1558-5646.1994.tb05317.x
  33. Hewitt G.M. 2000. The genetic legacy of the Quaternary ice ages // Nature. V. 405. P. 907.
  34. Ho S.Y.W., Phillips M.J., Cooper A. et al. 2005. Time dependency of molecular rate estimates and systematic overestimation of recent divergence times // Mol. Biol. Evol. V. 22. P. 1561. https://doi.org/10.1093/molbev/msi145
  35. Holsinger K.E. 2015. Lecture notes in population genetics. Department of Ecology and Evolutionary Biology. U-3043. University of Connecticut Storrs. https://doi.org/10.6084/M9.FIGSHARE.100687
  36. Huang X., Shi X., Kotov A.A. et al. 2014. Confirmation through genetic analysis of the existence of many local phyloclades of the genus Simocephalus (Crustacea, Cladocera) in China // PLoS ONE. V. 9. № e112808. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0112808
  37. Ishida S., Taylor D.J. 2007. Quaternary diversification in a sexual Holarctic zooplankter, Daphnia galeata // Mol. Ecol. V. 16. P. 569. https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.2006.03160.x
  38. Jeffery N.W., Elias-Gutierrez M., Adamowicz S.J. 2011. Species diversity and phylogeographical affinities of the Branchiopoda (Crustacea) of Churchill, Manitoba, Canada // PLoS ONE. V. 11. № e18364.
  39. Katoh K., Rozewicki J., Yamada K.D. 2019. MAFFT online service: multiple sequence alignment, interactive sequence choice and visualization // Brief. Bioinform. V. 20(4). P. 1160. https://doi.org/10.1093/bib/bbx108
  40. Karabanov D.P., Bekker E.I., Shiel R.J. et al. 2018. Invasion of a Holarctic planktonic cladoceran Daphnia galeata Sars (Crustacea: Cladocera) in the Lower Lakes of South Australia // Zootaxa. V. 4402. P. 136. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4402.1.6
  41. Knowles L.L., Maddison W.P. 2002. Statistical phylogeography // Mol. Ecol. V. 11(12). P. 2623.
  42. Kotov A.A. Taylor D.J. 2019. Contrasting endemism in pond–dwelling cyclic parthenogens: the Daphnia curvirostris species group (Crustacea: Cladocera) /// Sci. Rep. V. 9. № 6812. https://doi.org/10.1038/s41598-019-43281-9
  43. Kotov A.A., Garibian P.G., Bekker E.I. et al. 2021. A new species group from the Daphnia curvirostris species complex (Cladocera: Anomopoda) from the eastern Palaearctic: taxonomy, phylogeny and phylogeography // Zool. J. Linn. Soc. V. 191. P. 772.
  44. Kumar S., Stecher G., Tamura K. 2016. MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis version 7.0 for bigger datasets // Mol. Biol. Evol. V. 33. P. 1870.
  45. Leigh J.W., Bryant D. 2015. PopART: Full-feature software for haplotype network construction // Methods Ecol. Evol. V. 6. P. 1110.
  46. Librado P., Rozas J. 2009. DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data // Bioinformatics. V. 25. P. 1451.
  47. Louette G., De Meester L. 2005. High dispersal capacity of cladoceran zooplankton in newly founded communities // Ecology. V. 86. P. 353.
  48. Lynch M. 2010. Evolution of the mutation rate // Trends Genet. V. 26. P. 345. https://doi.org/10.1016/j.tig.2010.05.003
  49. Ma X., Petrusek A., Wolinska J. et al. 2014. Diversity of the Daphnia longispina species complex in Chinese lakes: a DNA taxonomy approach // J. Plank. Res. V. 37. P. 56. https://doi.org/10.1093/plankt/fbu091
  50. Minh B.Q., Nguyen M.A.T., von Haeseler A. 2013. Ultrafast approximation for phylogenetic bootstrap // Mol. Biol. Evol. V. 30. P. 1188. https://doi.org/10.1093/molbev/mst024
  51. Nei M., Kumar S. 2000. Molecular Evolution and Phylogenetics. N.Y.: Oxford Univ. Press. P. 333.
  52. Nguyen L.-T., Schmidt H.A., von Haeseler A. et al. 2015. IQ-TREE: A fast and effective stochastic algorithm for estimating maximum-likelihood phylogenies // Mol. Biol. Evol. V. 32. P. 268. https://doi.org/10.1093/molbev/msu300
  53. Penton E.H., Crease T.J. 2004. Evolution of the transposable element Pokey in the ribosomal DNA of species in the subgenus Daphnia (Crustacea: Cladocera) // Mol. Biol. Evol. V. 21. P. 1727.
  54. Petrusek A., Thielsch A., Schwenk K. 2012. Mitochondrial sequence variation suggests extensive cryptic diversity within the Western Palearctic Daphnia longispina complex // Limnol., Oceanogr. V. 57. P. 1838.
  55. Rambaut A., Drummond A.J., Xie D. et al. 2018. Posterior summarisation in Bayesian phylogenetics using Tracer 1.7 // Syst. Biol. V. 67. P. 901. https://doi.org/10.1093/sysbio/syy032
  56. Ray N., Currat M., Excoffier L. 2003. Intra-deme molecular diversity in spatially expanding populations // Mol. Biol. Evol. V. 20. P. 76.
  57. Rogers A.R., Harpending H. 1992. Population growth makes waves in the distribution of pairwise genetic differences // Mol. Biol. Evol. V. 9. P. 552.
  58. Rogers A.R., Fraley A.E., Bamshad M.J. et al. 1996. Mitochondrial mismatch analysis is insensitive to mutational process // Mol. Biol. Evol. V. 17. P. 895. https://doi.org/10.1093/molbev/13.7.895
  59. Ronquist F., Huelsenbeck J.P. 2003. MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models // Bioinformatics. V. 19. P. 1572.
  60. Rosenberg N.A., Nordborg M. 2002. Genealogical trees, coalescent theory and the analysis of genetic polymorphisms // Nat. Rev. Genet. V. 3. P. 380. https://doi.org/10.1038/nrg795
  61. Saitou N., Nei M. 1987. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees // Mol. Biol. Evol. V. 4. P. 6.
  62. Schenekar T. Weiss S. 2011. High rate of calculation errors in mismatch distribution analysis results in numerous false inferences of biological importance // Heredity. V. 107. P. 511. https://doi.org/10.1038/hdy.2011.48
  63. Schneider S., Excoffier L. 1999. Estimation of past demographic parameters from the distribution of pairwise differences when the mutation rates vary among sites: application to human mitochondrial DNA // Genetics. V. 152. P. 1079.
  64. Slatkin M., Hudson R. 1991. Pairwise comparisons of mitochondrial DNA sequences in stable and exponentially growing populations // Genetics. V. 129. P. 555.
  65. Tajima F. 1989. Statistical methods for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism // Genetics. V. 123. P. 585.
  66. Taylor D.J., Hebert P.D., Colbourne J.K. 1996. Phylogenetics and evolution of the Daphnia longispina group (Crustacea) based on 12S rDNA sequence and allozyme variation // Mol. Phyl. Evol. V. 5. P. 495.
  67. Taylor D.J., Finston T.L., Hebert P.D.N. 1998. Biogeography of a widespread freshwater crustacean: pseudocongruence and cryptic endemism in the North American Daphnia laevis complex // Evolution. V. 52. P. 1648.
  68. Templeton A.R. 1998. Nested clade analysis of phylogeographic data: testing hypotheses about gene flow and population history // Mol. Ecol. V. 7. P. 381.
  69. Thielsch A., Brede N., Petrusek A. et al. 2009. Contribution of cyclic parthenogenesis and colonization history to population structure in Daphnia // Mol. Ecol. V. 18. V. 1616.
  70. Trifinopoulos J., Nguyen L.T., von Haeseler A. et al. 2016. W-IQ-TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis // Nucleic Acids Res. V. 44. P. 232. https://doi.org/10.1093/nar/gkw256
  71. Van de Meutter F., Stoks R. et al. 2008. Size-selective dispersal of Daphnia resting eggs by backswimmers (Notonecta maculata) // Biol. Lett. V. 4. P. 494. https://doi.org/10.1098/rsbl.2008.0323
  72. Ventura M., Petrusek A., Miró A. et al. 2014. Local and regional founder effects in lake zooplankton persist after thousands of years despite high dispersal potential // Mol. Ecol. V. 23. P. 1014. https://doi.org/10.1111/mec.12656
  73. Vysotskiy E.M. 2001. Geomorphology of the basin of Teletskoe Lake // Physical and geological environment of Lake Teletskoe. Tervuren: Musee Royal de I Afrigue Centrale Tervuren. P. 164.
  74. Zuykova E.I., Bochkarev N.A., Katokhin A.V. 2013a. Molecular-genetic diagnosis and phylogeny of Daphnia species in water bodies of the Chany Lake basin // Rus. J. Genetics. V. 49. P. 206.
  75. Zuykova E.I., Bochkarev N.A., Katokhin A.V. 2013b. Identification of the Daphnia species (Crustacea: Cladocera) in the lakes of the Ob and Yenisei River basins: morphological and molecular phylogenetic approaches // Hydrobiologia. V. 715. P. 135.
  76. Zuykova E.I., Simonov E.P., Bochkarev N.A. 2017. Comparative morphological and genetic analysis of populations and species of the genus Daphnia O.F. Müller, 1785 (Crustacea; Daphniidae) from Lake Glubokoe and Lake Chany // Biol. Bull. V. 44. P. 277. https://doi.org/10.1134/S106235901703013X
  77. Zuykova E.I., Simonov E.P., Bochkarev N.A. et al. 2018a. Contrasting phylogeographic patterns in closely related species of Daphnia longispina group (Crustacea: Cladocera) with focus on north-eastern Eurasia // PLoS ONE. V. 13. № 11. № e0207347.
  78. Zuykova E.I., Simonov E.P., Bochkarev N.A. et al. 2018b. Resolution of the Daphnia umbra problem (Crustacea: Cladocera) using an integrated taxonomic approach // Zool. J. Linn. Soc. V. 184. P. 969.
  79. Zuykova E.I., Bochkarev N.A., Talor D.J. et al. 2019. Unexpected endemism in the Daphnia longispina complex (Crustacea: Cladocera) in Southern Siberia // PLoS ONE. V. 14. № e0221527.
  80. Zuykova E.I., Bochkarev N.A., Kotov A.A. 2021. Specific and genetic structure of the Daphnia longispina s. l. complex (Cladocera, Daphniidae) in water bodies of Southern Siberia // Biol. Bull. V. 48. P. 880.
  81. Zuykova E.I., Sleptzova L.P., Bochkarev N.A. et al. 2022. Mitochondrial lineage diversity and phylogeography of Daphnia (Daphnia) (Crustacea: Cladocera) in North-East Russia // Water. V. 14. № 1946. https://doi.org/10.3390/w14121946

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Дополнительные материалы
Скачать (1MB)
Метаданные
3. Рис. 1. ML-филогенетическое дерево для D. longispina s.str. и D. dentifera на основе объединенных фрагментов генов 12S и ND2 митохондриальной ДНК. Показаны бутстрэп значения поддержки ветвей выше 70%. Звездочкой отмечены вновь полученные нуклеотидные последовательности; заливка цветом – новая линия D. longispina s.str. Масштаб – число ожидаемых замен на сайт. YAK – Якутия; BAI – бассейн оз. Байкал; Y_KR – Красноярский край; TOD – Тоджинская котловина; DOD – оз. Додот; AR – Республика Алтай; ART – Телецкое озеро; OB – Алтайский край; ZDV – с. Здвинск (Новосибирская область); BRB – г. Барабинск (Новосибирская обл.).

Скачать (629KB)
Метаданные
4. Рис. 2. Графики матриц парных FST дистанций между популяциями D. longispina s.str. (а – 12S; б – ND2) и D. dentifera (в – 12S; г – ND2). Сокращения, как на рис. 1. Дополнительно для D. longispina s.str.: EVEN – Эвенкия; KHA – Хакасия; Республика Тува (центральная часть); MONG – Монголия; YAMN – Ямало-Ненецкий автономный округ; TYU – Тюменская обл.; UR – Урал; для D. dentifera: KAM – Камчатка; YAK – Якутия, Чурапчинский улус; YAKOIM – Якутия, Оймяконский улус; BAISK – оз. Среднее Кедровое (бассейн оз. Байкал); BAISM – оз. Саган Морян (бассейн оз. Байкал).

Скачать (468KB)
Метаданные
5. Рис. 3. Графики распределения частот гаплотипов (MMD) для модели пространственной экспансии (spatial distribution) сибирских популяций D. longispina s.str. (а, б) и D. dentifera (в, г) на основе фрагментов генов 12S (а, в) и ND2 (б, г) митохондриальной ДНК. 1 – наблюдаемое распределение; 2 – ожидаемое распределение; 3 – доверительный интервал 95%.

Скачать (403KB)
Метаданные
6. Рис. 4. Медианная сеть (MJ) 12S гаплотипов D. longispina s.str. (a) и их географическое распространение: б – “сибирская” клада, в – “европейская” клада. Сокращения, как на рис. 1 и 2; YAK1 – Якутия, Чурапчинский улус, YAK2 – Якутия, Нюрбинский улус. Размер кружков соответствует относительной частоте гаплотипов; черные маленькие кружки – медианные векторы; число мутаций указано для каждой ветви, если оно ≠1.

Скачать (1MB)
Метаданные
7. Рис. 5. Медианная сеть (MJ) ND2 гаплотипов D. longispina s.str. (a) и их географическое распространение (б). Сокращения, как на рис. 2 и рис. 4.

Скачать (781KB)
Метаданные
8. Рис. 6. Медианная сеть (MJ, а) 12S гаплотипов D. dentifera (а) и их географическое распространение (б). Сокращения, как на рис. 2 и рис. 4; KUZ – оз. Кузнечиха (бассейн оз. Байкал).

Скачать (866KB)
Метаданные
9. Рис. 7. Медианная сеть (MJ) ND2 гаплотипов D. dentifera (а) и их географическое распространение (б). Сокращения, как на рис. 2 и рис. 6.

Скачать (770KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».