Влияние альгицида на основе метаболитов-аллелохемиков водных растений на прорастание семян и развитие проростков трех видов гелофитов
- Авторы: Лапиров А.Г.1, Беляков Е.А.1,2, Лебедева О.А.1, Курашов Е.А.1,3, Крылова Ю.В.1,3
-
Учреждения:
- Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
- Череповецкий государственный университет
- Институт озероведения Российской академии наук, Санкт-Петербургский федеральный исследовательский центр
- Выпуск: № 6 (2023)
- Страницы: 821-831
- Раздел: ВЫСШАЯ ВОДНАЯ РАСТИТЕЛЬНОСТЬ
- URL: https://journals.rcsi.science/0320-9652/article/view/232385
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0320965223060207
- EDN: https://elibrary.ru/KAAUVM
- ID: 232385
Цитировать
Аннотация
Впервые изучено влияние запатентованного спиртового раствора альгицида на основе галловой, тетрадекановой, гептановой и октановой органических кислот на прорастание семян и развитие проростков трех видов гелофитов: Sparganium emersum, S. glomeratum и Schoenoplectus lacustris. Выявлены значительные различия во влиянии различных концентраций альгицида (0.1, 1.0 и 10.0 мг/л) на прорастание семян и начальные этапы развития проростков трех видов гелофитов. Отмечена стимуляция прорастания семян Sparganium emersum в концентрации 10.0 мг/л и ингибирование этого процесса у S. glomeratum в концентрациях в 1.0 и 0.1 мг/л. Значимого действия альгицида на прорастание семян Schoenoplectus lacustris не обнаружено. По степени увеличения устойчивости морфологических показателей растений к действию различных концентраций альгицида проростки трех видов гелофитов образуют следующий ряд: S. lacustris > S. glomeratum > S. emersum.
Ключевые слова
Об авторах
А. Г. Лапиров
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: a_lapir@ibiw.ru
Россия, Некоузский р-н, Ярославская обл, пос. Борок
Е. А. Беляков
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук; Череповецкий государственный университет
Email: a_lapir@ibiw.ru
Россия, Некоузский р-н, Ярославская обл, пос. Борок; Россия, Вологодская обл., Череповец
О. А. Лебедева
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук
Email: a_lapir@ibiw.ru
Россия, Некоузский р-н, Ярославская обл, пос. Борок
Е. А. Курашов
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук; Институт озероведения Российской академии наук, Санкт-Петербургский федеральный исследовательский центр
Email: a_lapir@ibiw.ru
Россия, Некоузский р-н, Ярославская обл, пос. Борок; Россия, Санкт-Петербург
Ю. В. Крылова
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук; Институт озероведения Российской академии наук, Санкт-Петербургский федеральный исследовательский центр
Email: a_lapir@ibiw.ru
Россия, Некоузский р-н, Ярославская обл, пос. Борок; Россия, Санкт-Петербург
Список литературы
- Беляков Е.А., Лапиров А.Г. 2019. Семенная продуктивность и особенности плавучести генеративных диаспор некоторых европейских видов рода Sparganium L. // Биология внутр. вод. № 4–2. С. 36. https://doi.org/10.1134/S0320965219060044
- Дубына Д.В., Стойко С.М., Сытник К.М. и др. 1993. Макрофиты – индикаторы изменений природной среды. Киев: Наукова думка.
- Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Батаева Ю.В. и др. 2019. Альгицид для подавления развития цианобактерий из зеленых водорослей на основе метаболитов – аллелохемиков водных растений. Патент РФ № 2019104959 (RU 2 709 308 C1).
- Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Митрукова Г.Г., Чернова А.М. 2014. Летучие низкомолекулярные метаболиты водных макрофитов, произрастающих на территории России, и их роль в гидроэкосистемах // Сиб. экол. журн. Т. 21. № 4. С. 573.
- Лисицына Л.И., Папченков В.Г., Артеменко В.И. 2009. Флора водоемов Волжского бассейна. Определитель сосудистых растений. М.: Тов-во науч. изд. КМК.
- Международные правила определения качества семян. 1969. М.: Колос.
- Николаева М.Г., Лянгузова И.В., Поздова Л.М. 1999. Биология семян. СПб.: НИИ химии СПбГУ.
- Савиных Н.П., Шабалкина С.В., Лелекова Е.В. 2015. Биоморфологические адаптации гелофитов // Сиб. экол. журн. Т. 22. № 5. С. 671. https://doi.org/10.15372/SEJ20150502
- Barral M.T., Paradelo R. 2011. A Review on the use of phytotoxicity as a compost quality indicator // Dynamic Soil, Dynamic Plant. V. 5. Iss. 2. P. 36.
- Bhadha J.H., Lang T.A., Alvarez O.M. et al. 2014. Allelopathic effects of Pistia stratiotes and Lyngbya wollei Farlow ex Gomont on seed germination and root growth // Sustain. Agr. Res. V. 3. № 4. P. 121. https://doi.org/10.5539/sar.v3n4p121
- Chiapusio G., Sánchez A.M., Reigosa M.J. et al. 1997. Do germination indices adequately reflect allelochemical effects on the germination process? J. Chem. Ecol. V. 23. № 2. P. 2445.
- Chou C.H., Lin H.J. 1976. Autointoxication mechanism of mechanism of Oriza sativa L. Phytotoxic effects of decomposing rice residues in soil // J. Chem. Ecol. V. 2. № 3. P. 353. https://doi.org/10.1007/BF00988282
- Dayan F.E., Romagni J.G., Duke S.O. 2000. Investigating the Mode of Action of Natural Phytotoxins // J. Chem. Ecol. V. 26. № 9. P. 2079. https://doi.org/10.1023/A:1005512331061
- El Fels L., Hafidi M., Ouhdouch Y. 2016. Artemia salina as a new index for assessment of acute cytotoxicity during co-composting of sewage sludge and lignocellulose waste // Waste Manage. V. 50. P. 194. https://doi.org/10.1016/j.wasman.2016.02.002
- Fink P. 2007. Ecological functions of volatile organic compounds in aquatic systems// Mar. Freshwater Behav. Physiol. V. 40. № 3. P.155. https://doi.org/10.1080/10236240701602218
- Fuentes A., Lloréns M., Sáez J. et al. F. 2004. Phytotoxicity and heavy metals speciation of stabilised sewage sludges // J. Hazard. Mater. V. A108. № 3. P. 161. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2004.02.014
- Gross E.M. 2003. Allelopathy of Aquatic Autotrophs // CRC Crit. Rev. Plant. Sci. V. 22. № 3–4. P. 313. https://doi.org/10.1080/713610859
- Hammer Ø., Harper D.A.T., Ryan P.D. 2001. PAST: Paleontological Statistics Software Package for Education and Data Analysis // Palaeontol. Electron. V. 4. № 1. P. 1.
- Iqbal M.Z., Rahmati K. 1992. Tolerance of Albizia lebeck to Cu and Fe application // Ekológia (CSFR). V. 11. № 4. P. 427.
- Jäger A.K., Strydom A., van Stade J. 1996. The effect of ethylene, octanoic acid and a plant-derived smoke extract on the germination of light-sensitive lettuce seeds // Plant Growth Regul. V. 19. P. 197. https://doi.org/10.1007/BF00037791
- Kurashov E., Kapustina L., Krylova J., Mitrukova G. 2020. The Use of fluorescence microscopy to assess the suppression of the development of cyanobacteria under the influence of allelochemicals of aquatic macrophytes // Fluorescence methods for investigation of living cells and microorganisms. London: IntechOpen. P. 83. https://doi.org/10.5772/intechopen.92800
- Kurashov E., Krylova J., Protopopova E. 2021. The Use of Allelochemicals of Aquatic Macrophytes to Suppress the Development of Cyanobacterial “Blooms” // Plankton Communities. London: IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.95609
- Mazumder P., Khwairakpam M., Kalamdhad A.S. 2020. Bio-inherent attributes of water hyacinth procured from contaminated water body-effect of its compost on seed germination and radicle growth // J. Environ. Man. V. 257. art. № 109990. https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2019.109990
- Muzaffar S., Ali B., Wani N. A. 2012. Effect of catechol, gallic acid and pyrogallic acid on the germination, seedling growth and the level of endogenous phenolics in cucumber (Cucumis sativus L.) // Int. J. Life Sci. Pharm. Res. V. 1 № 3. P. 50.
- Nakai S., Yamada S., Hosomi M. 2005. Anti-cyanobacterial fatty acids released from Myriophyllum spicatum // Hydrobiologia. V. 543. P. 71. https://doi.org/10.1007/s10750-004-6822-7
- Pagare S., Bhatia M., Tripathi N. et al. 2015. Secondary Metabolites of Plants and their Role: Overview // Curr. Trends Biotechnol. Pharm. V. 9. № 3. P. 293.
- Reigosa M.J., Pazos-Malvido E. 2007. Phytotoxic effects of 21 plant secondary metabolites on Arabidopsis thaliana germination and root growth // J. Chem. Ecol. V. 33. P. 1456. https://doi.org/10.1007/s10886-007-9318-x
- Selim Sh.M., Zayed Mona S., Atta H.M. 2012. Evaluation of phytotoxicity of compost during composting process // Nat. Sci. Sleep. V. 10. № 2. P. 69.
- Shipley B., Parent M. 1991. Germination responses of 64 wetland species in relation to seed size, minimum time to reproduction and seedling relative growth rate // Funct. Ecol. V. 5. № 1. P. 111. https://doi.org/10.2307/2389561
- Sutcliffe M.A., Whitehead C.S. 1995. Role of ethylene and short-chain saturated fatty acids in the smoke-stimulated germination of Cyclopia seed // J. Plant Physiol. V. 145. P. 271.
- Takao L.K., Ribeiro J.P.N., Lima M.I.S. 2011. Potencial alelopático de macrófitas aquáticas de um estuário cego // Acta Bot. Bras. V. 25. № 2. P. 324. https://doi.org/10.1590/S0102-33062011000200008
- Wang G., Yang Y., Kong Y. et al. 2022. Key factors affecting seed germination in phytotoxicity tests during sheep manure composting with carbon additives // J. Hazard. Mater. V. 421. Art. no. 126809. https://doi.org/10.1016/j.jhazmat.2021.126809
- Whitehead C.S., Nelson R.M. 1992. Ethylene sensitivity in germinating peanut seeds: The effect of short-chain saturated fatty acids // J. Plant Physiol. V. 139. P. 479.
- Zeid I.M., Gharib Z.F.A.E., Ghazi S.M., Ahmed E.Z. 2019. Promotive effect of ascorbic acid, gallic acid, selenium and nano-selenium on seed germination, seedling growth and some hydrolytic enzymes activity of Cowpea (Vigna unguiculata) Seedling // J. Plant Physiol. Pathol. V. 7. Iss. 1. P. 1000193. https://doi.org/10.4172/2329-955X.1000193
- Zhang L., Jia Y., Zhang X. et al. 2016. Wheat straw: an inefficient substrate for rapid natural lignocellulosic composting // Bioresour. Technol. V. 209. P. 402. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2016.03.004
- Zhou S., Nakai S., Hosomi M. et al. 2006. Allelopathic growth inhibition of cyanobacteria by reed // Allelopathy J. V. 18. № 2. P. 277.
Дополнительные файлы
