Comparison of Cryoresistance of Testicular and Urinal Spermatozoa of the Toad  Bufo bufo  (Amphibia, Anura, Bufonidae) during Slow Freezing

N. V. Shishova; Шишова Н. В.; S. A. Kaurova; Каурова С. А.; V. K. Uteshev; Утешев В. К.; E. N. Gakhova; Гахова Э. Н.

doi:10.31857/S0320965223040204

Сравнение криорезистентности тестикулярных и уринальных сперматозоидов жабы Bufo bufo (Amphibia, Anura, Bufonidae) в процессе медленного замораживавания

Авторы: Шишова Н.В.¹, Каурова С.А.¹, Утешев В.К.¹, Гахова Э.Н.¹
Учреждения:
1. Институт биофизики клетки Российской академии наук Пущинского научного центра биологических исследований Российской академии наук
Выпуск: № 4 (2023)
Страницы: 570-574
Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
URL: https://journals.rcsi.science/0320-9652/article/view/134931
DOI: https://doi.org/10.31857/S0320965223040204
EDN: https://elibrary.ru/SEFTEQ
ID: 134931

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ
Доступ закрыт

Доступ предоставлен
Доступ закрыт

Только для подписчиков

Аннотация
Об авторах
Список литературы
Дополнительные файлы
Статистика

Аннотация

Проведено сравнительное исследование морфофункциональных показателей тестикулярных (неактивированных) и уринальных (активированных) сперматозоидов обыкновенной жабы Bufo bufo (L., 1758) до и после криоконсервации. Криоконсервацию осуществляли медленным способом. В качестве криопротекторов использовали 10%-ную сахарозу и 12%-ный диметилформамид. Показано, что пул тестикулярных сперматозоидов содержит значительно больше клеток с аномальной морфологией и до, и после криоконсервации. Осмотичность базовой среды для криозащитного раствора (раствор Рингера для амфибий – 230 мОсм или уринальная плазма – 45 мОсм) оказывала незначительное влияние на выживаемость тестикулярных и уринальных сперматозоидов в процессе криоконсервации. Сравнение морфофункциональных характеристик сперматозоидов до и после замораживания–оттаивания свидетельствует, что криорезистентность тестикулярных и активированных уринальных сперматозоидов различается слабо.

Ключевые слова

сперматозоиды, криоконсервация, бесхвостые амфибии, Bufo bufo

Список литературы

Юшкова Е.А., Боднарь И.С., Шадрин Д.М. и др. 2018. Цитогенетические и молекулярно-генетические показатели в популяциях бесхвостых амфибий (Rana arvalis Nilsson) в условиях радиоактивного и химического загрязнения водной среды // Биология внутр. вод. № 3. С. 83. https://doi.org/10.1134/S0320965218030233
Beebee T.J.C., Griffiths R.A. 2005. The amphibian decline crisis: a watershed for conservation biology? // Biol. Conserv. V. 125. P. 271. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2005.04.009
Browne R.K., Clulow J., Mahony M., Clark A. 1998. Successful recovery of motility and fertility of cryopreserved cane toad (Bufo marinus) sperm // Cryobiology. V. 37. P. 339. https://doi.org/10.1006/cryo.1998.2129
Burger I.J, Lampert S.S., Kouba C.K. et al. 2022. Development of an amphibian sperm biobanking protocol for genetic management and population sustainability // Cons. Physiol. V. 10. Iss. 1. coac032. https://doi.org/10.1093/conphys/coac032
Clulow J., Clulow S. 2016. Cryopreservation and other assisted reproductive technologies for the conservation of threatened amphibians and reptiles: bringing the ARTs up to speed // Reprod. Fertil. Devel. V. 28. № 8. P. 1116. https://doi.org/10.1071/RD15466
Gardner T.A., Barlow J., Chazdon R. et al. 2009. Prospects for tropical forest biodiversity in a human-modified world // Ecol. Lett. V. 12. P. 561. https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2009.01294.x
Guy E.L., Gillis A.B., Kouba A.J. et al. 2020. Sperm collection and cryopreservation for threatened newt species // Cryobiology. V. 94. P. 80. https://doi.org/10.1016/j
Hopkins B.K., Herr C. 2008. Cryopreservation of frog (Ranapipiens) sperm cells collected by non-lethal methods // Reprod. Fertil. Devel. V. 20. № 1. P. 120. https://doi.org/10.1071/RDv20n1Ab78
Kouba A.J., Vance C.K. 2009. Applied reproductive technologies and genetic resource banking for amphibian conservation // Reprod. Fertil. Devel. V. 21. № 6. P. 719. https://doi.org/10.1071/RD09038
Kouba A.J., Vance C.K., Frommeyer M.A., Roth T.L. 2003. Structural and functional aspects of Bufo americanus spermatozoa: Effects of inactivation and reactivation // J. Exp. Zool. V. 295. № 2. P. 172. https://doi.org/10.1002/jez.a.10192
Langhorne C.J., Calatayud N.E., Kouba A.J. et al. 2013. Cryoconservation: successful sperm cryopreservation and develop-mental outcomes using endangered North American amphibians // Cryobiology. V. 67. № 3. P. 405. https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2013.09.032
Poo S., Hinkson K.M. 2019. Applying cryopreservation to anuran conservation biology // Conserv. Sci. Pract. V. 1. e91. https://doi.org/10.1111/csp2.91
Shishova N.V., Uteshev V.K., Kaurova S.A. et al. 2011. Cryopreservation of hormonally induced sperm for the conservation of threatened amphibians with Rana temporaria as a model research species // Theriogenol. V. 75. № 2. P. 220. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.08.008
Uteshev V.K., Gakhova E.N., Kramarova L.I. et al. 2019. Cryobanking of amphibian genetic recourses in Russia: past and future // Russ. J. Herpetol. V. 26. № 6. P. 319. https://doi.org/10.30906/1026-2296-2019-26-6-319-324