Влияние морфофизиологических изменений органов иммунной системы на лизоцим самцов щуки Esox lucius

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Концентрация лизоцима в печени, почках, селезенке и сыворотке крови, а также размеры иммунных органов у самцов щуки Esox lucius L. варьируют в разные сезоны года. Концентрации фермента в органах и сыворотке слабо связаны между собой. По абсолютным значениям массы органы демонстрируют сильную взаимосвязь между собой, однако между их соматическими индексами корреляция очень слабая. Размеры органов влияют на концентрацию лизоцима в самих органах и сыворотке. Печень играет главную роль во внутригодовых флуктуациях концентрации лизоцима во всех органах и сыворотке. Почка оказывает противоположное печени, выравнивающее действие на концентрацию фермента в печени и сыворотке. Наиболее глубокие морфофизиологические изменения органов и лизоцима как показателя неспецифического иммунитета совпадают с периодом размножения рыб.

Об авторах

М. Ф. Субботкин

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: smif@ibiw.ru
Россия, Некоузский р-н, Ярославская обл., пос. Борок

Т. А. Субботкина

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук

Email: smif@ibiw.ru
Россия, Некоузский р-н, Ярославская обл., пос. Борок

Список литературы

  1. Никольский Г.В. 1971. Частная ихтиология. М.: Высш. школа.
  2. Смирнов В.С., Божко А.М., Рыжков Л.П., Добринская Л.А. 1972. Применение метода морфофизиологических индикаторов в экологии рыб // Тр. СевНИОРХ. Т. 7. Петрозаводск, Карелия.
  3. Фунг Н.Д., Распопов В.М., Барабанов В.В., Мищенко А.В. 2013. Гепатосоматический индекс осетра, белуги и севрюги в речной период жизни // Вест. Астрахан. гос.-техн. ун-та. Сер.: Рыбн. хоз-во. № 1. С. 154.
  4. Bennett P.M., Janz D.M. 2007. Seasonal changes in morphometric and biochemical endpoints in northern pike (Esox lucius), burbot (Lota lota) and slimy sculpin (Cottus cognatus) // Freshwater Biol. V. 52. № 10. P. 2056. https://doi.org/10.1111/j.1365-2427.2007.01819.xno
  5. Feng L., Huang H.-H., Liu Y. et al. 2011. Effect of dietary thiamin supplement on immune responses and intestinal microflora in juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian) // Aquacult. Nutr. V. 17. № 5. P. 557. https://doi.org/10.1111/j.1365-2095.2011.00851.x
  6. Ghafoori Z., Heidari B., Farzadfar F. et al. 2014. Variations of serum and mucus lysozyme activity and total protein content in the male and female Caspian kutum (Rutilus frisii kutum, Kamensky 1901) during reproductive period // Fish Shellfish Immunol. V. 37. № 1. P. 139. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2014.01.016
  7. Hansson T., Lindesjoo E., Forlin L. et al. 2006. Long-term monitoring of the health status of female perch (Perca fluviatilis) in the Baltic Sea shows decreased gonad weight and increased hepatic EROD activity // Aquat. Toxicol. V. 79. № 4. P. 341. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2006.07.001
  8. Heidari B., Farzadfar F. 2015. Effects of temperature and gonadal growth on the lysozyme level of immune tissues in the male and female Caspian kutum (Rutilus frisii kutum) // Aquacult. Res. V. 48. № 2. P. 1. https://doi.org/10.1111/are.12886
  9. Kortet T.R., Taskinen J., Sinisalo T. et al. 2003. Breeding-related seasonal changes in immunocompetence, health state and condition of the cyprinid fish, Rutilus rutilus L. // Biol. J. Linnean Soc. V. 78. № 1. P. 117. https://doi.org/10.1046/j.1095-8312.2003.00136.x
  10. Medford B.A., Mackay W.C. 1978. Protein and lipid content of gonads, liver, and muscle of northern pike (Esox lucius) in relation to gonad growth // J. Fish Res. Board Canada. V. 35. № 2. P. 213. https://doi.org/10.1139/f78-035
  11. Morgan A.L., Thompson K.D., Auchinachie N.A. et al. 2008. The effect of seasonality on normal haematological and innate immune parameters of rainbow trout Oncorhynchus mykiss L. // Fish Shellfish Immunol. V. 25. № 6. P. 791. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2008.05.011
  12. Papezikova I., Mares J., Vojtek L. et al. 2016. Seasonal changes in immune parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), brook trout (Salvelinus fontinalis) and brook trout × Arctic charr hybrids (Salvelinus fontinalis × × Salvelinus alpines alpinus) // Fish Shellfish Immunol. V. 57. P. 400. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2016.08.048
  13. Qiao Q., Liang H., Zhang X. 2013. Effect of cyanobacteria on immune function of crucian carp (Carassius auratus) via chronic exposure in diet // Chemosphere. V. 90. № 3. P. 1167. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere
  14. Rohlenova K., Morand S., Hyršl P. et al. 2011. Are fish immune systems really affected by parasites? An immunoecological study of common carp (Cyprinus carpio) // Parasite Vector. V. 4. P. 120. https://doi.org/10.1186/1756-3305-4-120
  15. Subbotkin M.F., Subbotkina T.A. 2016. Variability of the lysozyme content in bream from the Rybinsk Reservoir in different seasons of the annual cycle // Biol. Bull. V. 43. № 3. P. 257. https://doi.org/10.1134/S1062359016020096
  16. Subbotkin M.F., Subbotkina T.A. 2018. Effects of environment and physiological state of an organism on the activity and content of lysozyme in fishes of the family Cyprinidae: A Review // Inland Water Biol. V. 11. P. 184. https://doi.org/10.1134/S1995082918020037
  17. Subbotkina T.A., Subbotkin M.F. 2003. Lysozyme content in organs and blood serum in various species in the Volga River // J. Evol. Biochem. Physiol. V. 39. № 5. P. 537. https://doi.org/10.1023/B:JOEY.0000015961.99374.62
  18. Suja B., Phillips H., Lochmann R. et al. 2009. Effect of temperature on growth, feed utilization, and immune status of channel catfish in a recirculating system // N. Am. J. Aquac. V. 71. № 1. P. 64. https://doi.org/10.1577/A07-101.1
  19. Viney M.E., Riley E.M., Buchanan K.L. 2005. Optimal immune responses: immunocompetence revisited // TRENDS in Ecology and Evolution. V. 20. № 12. P. 665. https://doi.org/10.1016/j.tree.2005.10.003

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2.

Скачать (60KB)
Метаданные
3.

Скачать (26KB)
Метаданные

© М.Ф. Субботкин, Т.А. Субботкина, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах