ОДНОВРЕМЕННЫЙ МОНИТОРИНГ ЦИТОЗОЛЬНОГО И РЕТИКУЛЯРНОГО Са2+ УКАЗЫВАЕТ НА НЕОДНОРОДНОСТЬ Са2+-ДЕПО

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Трансдукция многих агонистов включает мобилизацию внутриклеточного Са2+. Динамика и форма внутриклеточных Са2+-сигналов детерминируются Са2+-потоками через плазмалемму и мембраны внутриклеточных органелл, прежде всего, эндоплазматического ретикулума (ЭР). Хотя традиционно механизмы внутриклеточной Са2+-сигнализации исследовались с использованием химических флуоресцентных Са2+-зондов, появление генетически кодируемых Са2+-сенсоров с различной внутриклеточной локализацией существенно расширило инструментальные возможности. В настоящей работе в клетках НЕК-293 проводился синхронный мониторинг цитозольного Са2+ с использованием Fluo-8 и ретикулярного Са2+ с помощью генетически кодируемого Са2+-сенсора R-CEPIA1er с локализацией в ЭР. При импульсной стимуляции клеток ацетилхолином (ACh) наблюдались скоординированные рост цитозольного Са2+ и падение Са2+ в ЭР на передней фазе Са2+-ответа, релаксация которых часто сопровождалась наложенными колебаниями. Большую детализацию скоррелированного поведения концентрации цитозольного Са2+ (С) и ретикулярного Ca2+ (Cs) могло дать представление клеточных ответов на фазовой плоскости (Cs, C). Поскольку Cs и C не измеряются непосредственно, а измеряются Ca2+-зависимые интенсивности флуоресценции Са2+-зондов, экспериментальные данные представлялись в плоскости (Fs, Fc), где Fs и Fс равны ΔF/F0 для R-CEPIA1er и Fluo-8 соответственно, что эквивалентно представлению в плоскости (Cs, C). Фазовые траектории свидетельствовали о том, что Са2+-ответы на ACh не могли быть сгенерированы исключительно за счет обмена Са2+ между гомогенным Cа2+-депо и цитозолем, поскольку в ~30% случаев фазовая траектория содержала петлю с участком одновременного роста Cs и C. Петля наблюдалась и при подавлении входа Са2+, что указывало на участие внутриклеточного источника Са2+, недоступного для мониторинга с помощью R-CEPIA1er или не вносящего существенного вклада в его флуоресценцию. Ингибиторный анализ показал, что этим источником не являются кислые эндосомы и лизосомы, содержащие двупоровые каналы, аппарат Гольджи и везикулы, куда Са2+ загружается ATP-азой SPCA-типа, органеллы, высвобождающие Са2+ через рианодиновые рецепторы, и митохондрии, из матрикса которых Са2+ выбрасывается в цитозоль Na+/Ca2+-обменником. Полученные результаты в целом указывают на более сложную систему генерации агонист-индуцированных Са2+-сигналов, чем в парадигме с одним гомогенным пулом запасенного Са2+.

Об авторах

В. В. Соколов

Институт биофизики клетки РАН

Пущино, Московская обл., 142290 Россия

Н. П. Каймачников

Институт биофизики клетки РАН

Email: nkai@mail.ru
Пущино, Московская обл., 142290 Россия

О. А. Рогачевская

Институт биофизики клетки РАН

Пущино, Московская обл., 142290 Россия

Н. В. Кабанова

Институт биофизики клетки РАН

Пущино, Московская обл., 142290 Россия

С. С. Колесников

Институт биофизики клетки РАН

Пущино, Московская обл., 142290 Россия

Список литературы

  1. Berridge M.J. 2016. The inositol trisphosphate/calcium signaling pathway in health and disease. Physiol. Rev. 96, 1261–1296. https://doi.org/10.1152/physrev.00006.2016
  2. Mikoshiba K. 2015. Role of IP3 receptor signaling in cell functions and diseases. Adv. Biol. Regul. 57, 217–227. https://doi.org/10.1016/j.jbior.2014.10.001
  3. Prole D.L., Taylor C.W. 2019. Structure and function of IP3 receptors. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 11, a035063. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a035063
  4. Hamada K., Mikoshiba K. 2020. IP3 receptor plasticity underlying diverse functions. Annu. Rev. Physiol. 82, 151–176. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-021119-034433
  5. Mak D.O., Foskett J.K. 2015. Inositol 1,4,5-trisphosphate receptors in the endoplasmic reticulum: A single-channel point of view. Cell Calcium 58, 67–78. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2014.12.008
  6. Smith H.A., Thillaiappan N.B., Rossi A.M. 2023. IP3 receptors: An “elementary” journey from structure to signals. Cell Calcium 113, 102761. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2023.102761
  7. Zampese E., Pizzo P. 2012. Intracellular organelles in the saga of Ca2+ homeostasis: Different molecules for different purposes? Cell. Mol. Life Sci. 69, 1077–1104. https://doi.org/10.1007/s00018-011-0845-9
  8. Berridge M.J., Bootman M.D., Roderick H.L. 2003. Calcium signalling: Dynamics, homeostasis and remodelling. Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. 4, 517–529. https://doi.org/10.1038/nrm1155
  9. Carreras-Sureda A., Pihan P., Hetz C. 2018. Calcium signaling at the endoplasmic reticulum: Fine-tuning stress responses. Cell Calcium 70, 24–31. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2017.08.004
  10. Kochkina E.N., Kopylova E.E., Rogachevskaja O.A., Kovalenko N.P., Kabanova N.V., Kotova P.D., Bystrova M.F., Kolesnikov S.S. 2024. Agonist-induced Ca2+ signaling in HEK-293-derived cells expressing a single IP3 receptor isoform. Cells. 13, 562. https://doi.org/10.3390/cells13070562
  11. Mogami H., Tepikin A.V., Petersen O.H. 1998. Termination of cytosolic Ca2+ signals: Ca2+ reuptake into intracellular stores is regulated by the free Ca2+ concentration in the store lumen. EMBO J. 17, 435–442. https://doi.org/10.1093/emboj/17.2.435
  12. Wang Q.C., Zheng Q., Tan H., Zhang B., Li X., Yang Y., Yu J., Liu Y., Chai H., Wang X., Sun Z., Wang J.Q., Zhu S., Wang F., Yang M., Guo C., Wang H., Zheng Q., Li Y., Chen Q., Zhou A., Tang T.S. 2016. TMCO1 is an ER Ca2+ load-activated Ca2+ channel. Cell, 165, 1454–1466. https://doi.org/10.1016/j.cell.2016.04.051
  13. Vais H., Wang M., Mallilankaraman K., Payne R., McKennan C., Lock J.T., Spruce L.A., Fiest C., Chan M.Y., Parker I., Seeholzer S.H., Foskett J.K., Mak D.-O.D. 2020. ER-luminal [Ca2+] regulation of InsP3 receptor gating mediated by an ER-luminal peripheral Ca2+-binding protein. Elife 9, e53531. https://doi.org/10.7554/eLife.53531
  14. Kodakandla G., Akimzhanov A.M., Boehning D. 2023. Regulatory mechanisms controlling store-operated calcium entry. Front. Physiol. 14, 1330259. https://doi.org/10.3389/fphys.2023.1330259
  15. Suzuki J., Kanemaru K., Ishii, K., Ohkura M., Okubo Y., Iino M. 2014. Imaging intraorganellar Ca2+ at subcellular resolution using CEPIA. Nat. Commun. 5, 4153. https://doi.org/10.1038/ncomms5153
  16. Kaimachnikov N.P., Kotova, P.D., Kochkina E.N., Rogachevskaja O.A., Khokhlov A.A., Bystrova, M.F., Kolesnikov S.S. 2021. Modeling of Ca2+ transients initiated by GPCR agonists in mesenchymal stromal cells. BBA Adv. 1, 100012. https://doi.org/10.1016/j.bbadva.2021.100012
  17. Berridge M.J. 2002. The endoplasmic reticulum: A multifunctional signaling organelle. Cell Calcium 32, 235–249. https://doi.org/10.1016/s0143416002001823
  18. Lam A.K., Galione A. 2013. The endoplasmic reticulum and junctional membrane communication during calcium signaling. Biochim. Biophys. Acta 1833, 2542–2559. https://doi.org/10.1016/j.bbamcr.2013.06.004
  19. Galione A., Davis L.C., Martucci L.L., Morgan A.J. 2023. NAADP-mediated Ca2+ signalling. Handb. Exp. Pharmacol. 278, 3-34. https://doi.org/10.1007/164_2022_607
  20. Котова П.Д., Рогачевская О.А. 2020. Клеточная тест-система с генетически кодируемыми сенсорами цитоплазматического и ретикулярного кальция. Биол. мембраны. 37, 373–380. https://doi.org/10.31857/S0233475520050072
  21. Туровский Е.А., Каймачников Н.П., Туровская М.В., Бережнов А.В., Дынник В.В., Зинченко В.П. 2011. Два механизма кальциевых колебаний в адипоцитах. Биол. мембраны. 28, 463–472. https://doi.org/10.1134/S199074781106016X
  22. Luo D., Broad L.M., Bird G.S., Putney J.W. Jr. 2001. Signaling pathways underlying muscarinic receptor-induced [Ca2+]i oscillations in HEK293 cells. J. Biol. Chem. 276, 5613–5621. https://doi.org/10.1074/jbc.M007524200
  23. Jing X., Chen L., Ren S., Luo D. 2011. Rational method in the repetitive calcium oscillation measurement in wild type human epithelial kidney cells. Cytotechnology. 63, 81–88. https://doi.org/10.1007/s10616-010-9332-7
  24. Bird G.S., Putney J.W. Jr. 2005. Capacitative calcium entry supports calcium oscillations in human embryonic kidney cells. J. Physiol. 562, 697–706. https://doi.org/10.1113/jphysiol.2004.077289
  25. Kotova, P.D.; Bystrova, M.F.; Rogachevskaja, O.A.; Khokhlov, A.A.; Sysoeva, V.Y.; Tkachuk, V.A.; Kolesnikov, S.S. 2018. Coupling of P2Y receptors to Ca2+ mobilization in mesenchymal stromal cells from the human adipose tissue. Cell Calcium, 71, 1–14. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2017.11.001
  26. Андронов А.А., Леонтович Е.А., Гордон И.И., Майер А.Г. Качественная теория динамических систем второго порядка. 1966. М.: Наука. 568 c.
  27. Yang J., Zhao Z., Gu M., Feng X., Xu H. 2019. Release and uptake mechanisms of vesicular Ca2+ stores. Protein Cell 10, 8–19. https://doi.org/10.1007/s13238-018-0523-x
  28. Wong A.K., Capitanio P., Lissandron V., Bortolozzi M., Pozzan T., Pizzo P. 2013. Heterogeneity of Ca2+ handling among and within Golgi compartments. J. Mol. Cell Biol. 5, 266–276. https://doi.org/10.1093/jmcb/mjt024
  29. Li J., Wang Y. 2022. Golgi metal ion homeostasis in human health and diseases. Cells. 11, 289. https://doi.org/10.3390/cells11020289
  30. Pizzo P., Lissandron V., Capitanio P., Pozzan T. 2011. Ca2+ signalling in the Golgi apparatus. Cell Calcium 50, 184–192. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2011.01.006
  31. Lai P., Michelangeli F. 2012. Bis(2-hydroxy-3-tert-butyl-5-methyl-phenyl)-methane (bis-phenol) is a potent and selective inhibitor of the secretory pathway Ca²+ ATPase (SPCA1). Biochem. Biophys. Res. Commun. 424, 616–619. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2012.07.004
  32. Martucci L.L., Cancela J.M. 2022. Neurophysiological functions and pharmacological tools of acidic and non-acidic Ca2+ stores. Cell Calcium 104, 102582. https://doi.org/10.1016/j.ceca.2022.102582
  33. Zhu M.X., Ma J., Parrington J., Calcraft P.J., Galione A., Evans A.M. 2010. Calcium signaling via two-pore channels: Local or global, that is the question. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 298, C430–C441. https://doi.org/10.1152/ajpcell.00475.2009
  34. Morgan A.J., Platt F.M., Lloyd-Evans E., Galione A. 2011. Molecular mechanisms of endolysosomal Ca2+ signalling in health and disease. Biochem. J. 439, 349–374. https://doi.org/10.1042/BJ20110949
  35. Naylor E., Arredouani A., Vasudevan S.R., Lewis A.M., Parkesh R., Mizote A., Rosen D., Thomas J.M., Izumi M., Ganesan A., Galione A., Churchill G.C. 2009. Identification of a chemical probe for NAADP by virtual screening. Nat. Chem. Biol. 5, 220–226. https://doi.org/10.1038/nchembio.150
  36. Chalmers S., Nicholls D.G. 2003. The relationship between free and total calcium concentrations in the matrix of liver and brain mitochondria. J. Biol. Chem. 278, 19062–19070. https://doi.org/10.1074/jbc.M212661200
  37. Cox D.A., Conforti L., Sperelakis N., Matlib M.A. 1993. Selectivity of inhibition of Na+-Ca2+ exchange of heart mitochondria by benzothiazepine CGP-37157. J. Cardiovasc. Pharmacol. 21, 595–599. https://doi.org/10.1097/00005344-199304000-00013
  38. Ishii K., Hirose K., Iino M. 2006. Ca2+ shuttling between endoplasmic reticulum and mitochondria underlying Ca2+ oscillations. EMBO Rep. 7, 390–396. https://doi.org/10.1038/sj.embor.7400620
  39. Konieczny V., Tovey S.C., Mataragka S., Prole D.L., Taylor C.W. 2017. Cyclic AMP recruits a discrete intracellular Ca2+ store by unmasking hypersensitive IP3 receptors. Cell Rep. 18, 711–722. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2016.12.058
  40. Pick T., Gamayun I., Tinschert R., Cavalié A. 2023. Kinetics of the thapsigargin-induced Ca2+ mobilisation: A quantitative analysis in the HEK-293 cell line. Front. Physiol. 14, 1127545. https://doi.org/10.3389/fphys.2023.1127545

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».