Влияние 2,3-бутандион-моноксима на взаимодействие миозина с актином в норме и при врожденной миопатии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Врожденные миопатии представляют собой неоднородную группу заболеваний скелетной мышечной ткани человека, характеризуемых мышечной гипотонией и слабостью. Клиническая картина миопатии значительно отличается у разных пациентов, что крайне затрудняет диагностику варианта миопатии и разработку подходов к лечению. Существует несколько применяемых в клинике или проходящих клинические исследования фармакологических агентов для лечения кардиомиопатий, механизм действия которых можно использовать для лечения и врожденных миопатий. Одним из таких агентов является 2,3-бутандион-моноксим (BDM) – неконкурентный ингибитор АТФазной активности миозина, использующийся для подавления острых повреждений миокарда. Молекулярные механизмы ингибирования миозина в присутствии BDM в скелетных мышцах не исследованы, поэтому цель настоящей работы заключалась в изучении влияния этого агента на взаимодействие миозина с актином при моделировании нескольких стадий АТ-Фазного цикла в скелетном мышечном волокне, чтобы оценить перспективы применения BDM для лечения врожденных миопатий. Мы обнаружили, что BDM в отсутствие регуляторных белков тропомиозина и тропонина усиливает жесткость связывания миозина с актином при моделировании слабых форм связывания этих мышечных белков, что может замедлить переход актомиозина из состояния A ∙ M ∙ АДФ ∙ Фн в состояние A ∙ M ∙ АДФ и является одной из причин снижения АТФазной активности миозина. При моделировании последовательных стадий АТФазного цикла с использованием АДФ, AMPPNP, ATPγS и АТФ происходит постепенный перевод головок миозина в состояние слабого взаимодействия с актином. В присутствии тропомиозина и тропонина в мышечном волокне BDM не влияет на образование слабой формы связывания актомиозина, однако увеличивает число головок миозина, существенных для генерации усилия. BDM может быть использован для увеличения эффективности конформационных перестроек миозина в присутствии тропомиозина с мутацией R90P, связанной с врожденной миопатией, поскольку этот реагент увеличивает число головок миозина в мышечном волокне, способных к эффективным конформационным перестройкам в АТФазном цикле и частично ингибирует патологические эффекты мутации.

Об авторах

Д. Д. Андреева

Институт цитологии РАН

Email: olexiya6@yandex.ru
Россия, 194064, Санкт-Петербург

Н. А. Рысев

Институт цитологии РАН

Email: olexiya6@yandex.ru
Россия, 194064, Санкт-Петербург

Ю. С. Боровиков

Институт цитологии РАН

Email: olexiya6@yandex.ru
Россия, 194064, Санкт-Петербург

О. Е. Карпичева

Институт цитологии РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: olexiya6@yandex.ru
Россия, 194064, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Andreev O.A., Takashi R., Borejdo J. 1995. Fluorescence polarization study of the rigor complexes formed at different degrees of saturation of actin filaments with myosin subfragment-1. J. Muscle Res. Cell Motil. V. 16. P. 353.
  2. Borejdo J., Assulin O., Ando T., Putnam S. 1982. Cross-bridge orientation in skeletal muscle measured by linear dichroism of an extrinsic chromophore. J. Mol. Biol. V. 158. P. 391.
  3. Borovikov Y.S., Andreeva D.D., Avrova S.V., Sirenko V.V., Simonyan A.O., Redwood C.S., Karpicheva O.E. 2021.Molecular mechanisms of the deregulation of muscle contraction induced by the R90P mutation in Tpm3.12 and the weakening of this effect by BDM and W7. Int. J. Mol. Sci. V. 22. P. 6318. https://doi.org/10.3390/ijms22126318
  4. Borovikov Y.S., Dedova I.V., dos Remedios C.G., Vikhoreva N.N., Vikhorev P.G., Avrova S.V., Hazlett T.L., Van Der Meer B.W. 2004. Fluorescence depolarization of actin filaments in reconstructed myofibers: the effect of S1 or pPDM-S1 on movements of distinct areas of actin. Biophys J. V. 86. P. 3020. https://doi.org/101016/S0006-3495(04)74351-9
  5. Borovikov Y.S., Karpicheva O.E., Avrova S.V., Redwood C.S. 2009. Modulation of the effects of tropomyosin on actin and myosin conformational changes by troponin and Ca2+. Biochim. Biophys. Acta. V. 1794. P. 985. https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2008.11.014
  6. Borovikov Y.S., Rysev N.A., Avrova S.V., Karpicheva O.E., Borys D., Moraczewska J. 2017. Molecular mechanisms of deregulation of the thin filament associated with the R167H and K168E substitutions in tropomyosin Tpm 1.1. Arch. Biochem. Biophys. V. 614. P. 28. https://doi.org/10.1016/j.abb.2016.12.004
  7. Bradford M.M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal. Biochem. V. 72. P. 248. https://doi.org/10.1006/abio.1976.9999
  8. Burghardt T.P., Garamszegi S.P., Ajtai K. 1997. Probes bound to myosin Cys-707 rotate during length transients in contraction. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 94. P. 9631. https://doi.org/10.1073/pnas.94.18.9631
  9. Fiske C.H., Subbarow Y. 1925. Determination of inorganic phosphate. J. Biol. Chem. V. 66. P. 375.
  10. Herrmann C., Wray J., Travers F., Barman T. 1992. Effect of 2,3-butanedione monoxime on myosin and myofibrillar ATPases. An example of an uncompetitive inhibitor. Biochemistry. V. 31. P. 12227. https://doi.org/10.1021/bi00163a036
  11. Higuchi H., Takemori S. 1989. Butanedione monoxime suppresses contraction and ATPase activity of rabbit skeletal muscle. J. Biochem. V. 105. P. 638. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.jbchem.a122717
  12. Karpicheva O.E., Sirenko V.V., Rysev N.A., Simonyan A.O., Borys D., Moraczewska J., Borovikov Y.S. 2017. Deviations in conformational rearrangements of thin filaments and myosin caused by the Ala155Thr substitution in hydrophobic core of tropomyosin. Biochim. Biophys. Acta. V. 1. P. 1790. https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2017.09.008
  13. Komatsu H., Koseki Y., Kanno T., Aoki S., Kodama T. 2017. 2,3-Butandione 2-monoxime inhibits skeletal myosin II by accelerating ATP cleavage. Biochem. Biophys. Res. Commun. V. 490. P. 849. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2017.06.130
  14. Lawlor M.W., Dechene E.T., Roumm E., Geggel A.S., Moghadaszadeh B., Beggs A.H. 2010. Mutations of tropomyosin 3 (TPM3) are common and associated with type 1 myofiber hypotrophy in congenital fiber type disproportion. Hum. Mutat. V. 31. P. 176. https://doi.org/10.1002/humu.21157
  15. Lee B.K., Jeung K.W., Choi S.S., Park S.W., Yun S.W., Lee S.M., Kim N.Y., Heo T., Min Y.I. 2015. Effects of the administration of 2,3-butanedione monoxime during conventional cardiopulmonary resuscitation on ischaemic contracture and resuscitability in a pig model of out-of-hospital cardiac arrest. Resuscitation. V. 87. P. 26. https://doi.org/10.1016/j.resuscitation.2014.11.011
  16. Margossian S., Lowey S. 1982. Preparation of myosin and its subfragments from rabbit skeletal muscle. Methods Enzym. V. 85. P. 55.
  17. McKillop D.F., Fortune N.S., Ranatunga K.W., Geeves M.A. 1994. The influence of 2,3-butanedione 2-monoxime (BDM) on the interaction between actin and myosin in solution and in skinned muscle fibres. J. Muscle Res. Cell Motil. V. 15. P. 309. https://doi.org/10.1007/BF00123483
  18. Nesmelov Y.E., Agafonov R.V., Burr A.R., Weber R.T., Thomas D.D. 2008. Structure and dynamics of the force-generating domain of myosin probed by multifrequency electron paramagnetic resonance. Biophys. J. V. 95. P. 247. https://doi.org/10.1529/biophysj.107.124305
  19. Okamoto Y., Sekine T. 1985. A streamlined method of subfragment one preparation from myosin. J. Biol. Chem. V. 98. P. 1143.
  20. Potter J.D. 1982. Preparation of troponin and its subunits. Methods Enzym. V. 85. P. 241.
  21. Reedy M.K., Holmes K.C., Tregear R.T. 1965. Induced changes in orientation of the cross-bridges of glycerinated insect flight muscle. Nature. V. 207. P. 1276. https://doi.org/10.1038/2071276a0
  22. Robinson P., Lipscomb S., Preston L.C., Altin E., Watkins H., Ashley C.C., Redwood C.S. 2007. Mutations in fast skeletal troponin I, troponin T, and beta-tropomyosin that cause distal arthrogryposis all increase contractile function. FASEB J. V. 21. P. 896. https://doi.org/10.1096/fj.06-6899com
  23. Roopnarine O., Thomas D.D. 1996. Orientation of intermediate nucleotide states of indane dione spin- labeled myosin heads in muscle fibers. Biophys. J. V. 70. P. 2795.
  24. Spudich J.A., Watt S.1971. The regulation of rabbit skeletal muscle contraction. I. Biochemical studies of the interaction of the tropomyosin-troponin complex with actin and the proteolytic fragments of myosin. J. Biol. Chem. V. 246. P. 4866.
  25. Takezawa Y., Kim D.S., Ogino M., Sugimoto Y., Kobayashi T., Arata T., Wakabayashi K. 1999. Backward movements of cross-bridges by application of stretch and by binding of MgADP to skeletal muscle fibers in the rigor state as studied by X-ray diffraction. Biophys. J. V. 76. P. 1770. https://doi.org/10.1016/S0006-3495(99)77338-8
  26. Tregear R.T., Mendelson R.A. 1975. Polarization from a helix of fluorophores and its relation to that obtained from muscle. Biophys. J. V. 15. P. 455.
  27. Volkmann N., Hanein D. 2000. Actomyosin: law and order in motility. Curr. Opin. Cell Biol. V. 12. P. 26. https://doi.org/10.1016/s0955-0674(99)00053-8
  28. Wheeler T.J., Chien S. 2012. Protection of rat cardiac myocytes by fructose-1,6-bisphosphate and 2,3-butanedione. PLoSOne. V. 7. P. e35023. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0035023

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2.

Скачать (71KB)
3.

Скачать (56KB)
4.

Скачать (105KB)
5.

Скачать (305KB)

© Д.Д. Андреева, Н.А. Рысев, Ю.С. Боровиков, О.Е. Карпичева, 2023

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах