Цитология

Разработка персонифицированных подходов в лечении и диагностике различных заболеваний, учитывающих индивидуальные особенности организма пациента, является активно развивающейся областью современной медицины. Однако переход к персонализированной медицине невозможен без создания релевантных и пациент-специфичных моделей заболеваний. Одним из трендов современной клеточной биологии является переход к использованию трехмерных (3D) клеточных культур, близких по архитектуре к тканям организма человека. Модели на основе таких культур наиболее физиологически адекватны и особенно ценны в тех случаях, когда необходимо воспроизвести функциональные особенности ткани пациента. Одной из них является модель эндометрия — внутренней слизистой оболочки матки, обеспечивающей наступление и развитие беременности. К сожалению, для многих заболеваний эндометрия до сих пор не разработаны схемы эффективного лечения, поскольку патогенез эндометриальных дисфункций часто недостаточно изучен. Кроме того, коррекция таких заболеваний, как правило, требует персонифицированного подхода. В представленном обзоре рассматриваются существующие 3D-клеточные модели эндометрия человека in vitro, а также перспективы их применения для разработки персонифицированных методов лечения в области гинекологии и репродуктологии.

Активация аутофагии считается одной из перспективных стратегией лечения и профилактики разнообразных неинфекционных заболеваний печени. В работе проведена оценка изменения редокс-состояния и активации аутофагии в тканях печени в условиях in vivo при действии хлористого лития (LiCl) в течение трех суток. Использовали просвечивающую электронную микроскопию для оценки образования аутофагических вакуолей в гепатоцитах печени мыши и ряд биохимических методов для определения в крови или печени активности ферментов, содержания глюкозы, пероксида водорода, уровня окислительной модификации белков и перекисного окисления липидов. Показано, что пероральное применение различных концентраций LiCl приводит к накоплению аутофагосом в клетках печени и небольшому усилению активности ряда антиоксидантных ферментов. Наблюдали значимые перестройки в ультраструктуре эндоплазматического ретикулума, которые могут играть сигнальную роль и участвовать в запуске аутофагии. Токсического действия на печень и развития окислительного стресса при применении LiCl в течение трех суток не обнаружено. Пероральное применение LiCl может использоваться в качестве эффективного модулятора процесса аутофагии в тканях печени.

Работа посвящена цитогенетическому исследованию одного из модельных видов амфибий — травяной лягушки Rana temporaria. Цель работы — создание стандартного кариотипа R. temporaria, выявление хромосомных маркеров и уточнение структуры генома. Мы проанализировали структуру кариотипа, распределение гетерохроматина и специфическую локализацию некоторых повторяющихся последовательностей на хромосомах, используя различные методы окрашивания, включая рутинное окрашивание красителем Гимза, выявление C-дисков, окрашивание флуоресцентными красителями DAPI, CMA3 и SYBR Green и флуоресцентную in situ гибридизацию (FISH) с использованием зондов к 5S рДНК и тандемному повтору S1A. Кариотип состоит из 26 хромосом (NF = 52): 5 пар крупных и 8 пар мелких хромосом. C-окрашивание выявило гетерохроматиновые блоки в центромерных районах большинства хромосом, а на некоторых хромосомах были обнаружены дополнительные интерстициальные С-блоки. Окрашивание как DAPI, так и CMA3 показало в целом равномерную флуоресценцию на всех хромосомах, за исключением единственного DAPI-негативного участка, соответствующего ЯОР. Окрашивание SYBR Green показало интенсивную флуоресценцию в центромерных районах некоторых хромосом. Методом FISH с зондом к 5S рДНК мы подтвердили расположение этого гена на коротком плече 7-й пары хромосом. Картирование методом FISH тандемного повтора S1A показало расположение сигналов на обоих плечах хромосомы 1, на коротких плечах хромосом 2—5 и на длинных плечах хромосом — 7 и 9. Обсуждаются трудности в выявлении G- и Q-дисков на хромосомах амфибий. Полученные данные сравниваются с результатами предыдущих исследований. Впервые использованное нами для описания кариотипа окрашивание SYBR Green может стать полезным методом для анализа хромосом амфибий в связи с трудностями выявления дисков с помощью традиционных методов.