Enzymatic Activity of Chernozem and Sod-Podzolic Soils under Pollution by Oil

Capa

Citar

Texto integral

Acesso aberto Acesso aberto
Acesso é fechado Acesso está concedido
Acesso é fechado Somente assinantes

Resumo

An assessment of the enzymatic activity of chernozem and sod-podzolic soils contaminated with oil was carried out across a wide range of activity of 20 enzymes. The objects of the study are ordinary chernozem and sod-podzolic soil. To simulate hydrocarbon contamination, oil was added to the soil (1, 5 and 10%). To assess the enzymatic activity of soils, the activity of 20 enzymes of the oxidoreductase and hydrolase classes participating in the biogeochemical cycles of C, N, O, P and S was determined. Cellulase and cysteine reductase were the most sensitive to oil pollution of ordinary chernozem, and adenosine triphosphatase and nitrate reductase were the most sensitive to oil pollution of sod-podzolic soil. All the studied enzymes (except for protease and β-glucosidase in ordinary chernozem) showed high information content – a close correlation with the oil content in the soil (r > 0.65). The integral index of enzymatic activity (IIEA), geometric mean (GMEА) and integral pollution index (AР) were calculated. Of the integrated indicators, IIEA (r = –0.97…–0.98) and GMEA (r = –0.98…–0.99) showed high information content, while indicator AР showed low information content in sod-podzolic soil (r = –0.46). It is recommended to use IIEA and GMEA for enzymatic diagnostics of the ecological state of soil after oil pollution. When soils are contaminated with oil, the N, P and C cycles are disrupted to a greater extent, and S and O cycles to a lesser extent. When contaminated with oil, the enzymes of the C cycle (invertase, polyphenoloxidase, dehydrogenases), N cycle (urease), P cycle (acid and alkaline phosphatases) and O cycle (catalase and peroxidases) have the highest average score of enzyme applicability for soil health diagnostics. The use of enzymatic diagnostics is very effective and appropriate for assessing the ecological state of soils contaminated with petroleum hydrocarbons.

Texto integral

Acesso é fechado

Sobre autores

T. Minnikova

Southern Federal University

Autor responsável pela correspondência
Email: loko261008@yandex.ru
Rússia, Rostov-on-Don, 344006

S. Kolesnikov

Southern Federal University

Email: loko261008@yandex.ru
Rússia, Rostov-on-Don, 344006

Bibliografia

  1. Белюченко И.С. Вопросы защиты почв в системе агроландшафта // Научный журнал КубГАУ. 2014. № 95(01).
  2. Бузмаков С.А., Андреев Д.Н., Назаров А.В., Дзюба Е.А., Шестаков И.Е., Куюкина М.С., Елькин А.А., Егорова Д.О., Хотяновская Ю.В. Реакция разных тест-объектов на экспериментальное загрязнение почв нефтью // Экология. 2021. № 4. С. 254–262. http://doi.org/10.31857/S0367059721040053
  3. Галиулин Р.В., Пинский Д.Л. Действие свинца на дегидрогеназную активность серозёмно-луговой почвы // Агрохимия. 1988. № 6. С. 93–99.
  4. Геннадиев А.Н., Жидкин А.П., Кошовский Т.С., Лобанов А.А. Полиарены и битумоиды в почвах при различных параметрах однотипных техногенных источников углеводородов // Почвоведение. 2018. № 11. С. 1398–1410. http://doi.org/10.1134/S0032180X18110023
  5. Геннадиев А.Н., Пиковский Ю.И., Жидкин А.П., Ковач Р.Г., Кошовский Т.С., Смирнова М.А., Хлынина Н.И., Цибарт А.С. Факторы и модификации углеводородного состояния почв // Почвоведение. 2015. № 11. С. 1314. http://doi.org/10.7868/S0032180X15110076
  6. Геннадиев А.Н., Пиковский Ю.И., Ковач Р.Г., Кошовский Т.С., Хлынина Н.И. Углеводородное состояние почв при разновозрастном нефтяном загрязнении // Почвоведение. 2016. № 5. С. 574–583. http://doi.org/10.7868/S0032180X16050051
  7. Ильина Т.К., Негру-Водэ В.В., Василенко Е.С. Активность диссимиляционных внеклеточных нитрат- и нитритредуктаз в почве // Почвоведение. 1977. № 9. С. 92–102.
  8. Каширская Н.Н., Плеханова Л.Н., Чернышева Е.В., Ельцов М.В., Удальцов С.Н., Борисов А.В. Пространственно-временные особенности фосфатазной активности естественных и антропогенно-преобразованных почв // Почвоведение. 2020. № 1. С. 89–101. http://doi.org/10.31857/S0032180X20010098
  9. Киреева Н.А., Новосёлова Е.И., Онегова Т.С. Активность каталазы и дегидрогеназы в почвах, загрязнённых нефтью и нефтепродуктами // Агрохимия. 2002. № 8. С. 64–72.
  10. Киреева Н.А., Новосёлова Е.И., Хазиев Ф.Х. Ферменты азотного обмена в нефтезагрязнённых почвах // Известия АН. Серия биологическая. 1997. С. 755–759.
  11. Красницкий В.М., Шмидт А.Г., Шилова К.М. Влияние интенсивности баланса фосфора на фосфатный режим почв Омской области // Плодородие. 2013. № 4. С. 33–36.
  12. Кудеяров В.Н. Агрогеохимические циклы углерода и азота в современном земледелии России // Агрохимия. 2019. № 12. С. 3–15. http://doi.org/10.1134/S000218811912007X
  13. Кузина Е.В., Рафикова Г.Ф., Мухаматдьярова С.Р., Шарипова Ю.Ю., Коршунова Т.Ю. Биологическая активность чернозема выщелоченного при нефтяном и хлоридно-натриевом загрязнении и влияние на нее обработки галотолерантными бактериями-нефтедеструкторами // Почвоведение. 2023. № 1. С. 89–101. http://doi.org/10.31857/S0032180X22600718
  14. Леднев А.В., Ложкин А.В. Влияние нефтяного загрязнения на агрохимические и токсикологические показатели дерново-подзолистых почв // Агрохимический вестник. 2019. № 2. С. 72–78. http://doi.org/10.24411/0235-2516-2019-10033
  15. Манучарова Н.А., Большакова М.А., Бабич Т.Л., Турова Т.П., Семенова Е.М., Янович А.С., Полтараус А.Б., Степанов А.Л., Назина Т.Н. Микроорганизмы дерново-подзолистой почвы, деградирующие нефть и полициклические ароматические углеводороды // Микробиология, 2021. Т. 90. № 6. С. 706–717. http://doi.org/10.31857/S0026365621060094
  16. Матенькова Е.А., Наплекова Н.Н. Состав микробных ассоциаций дерново-подзолистых почв с нефтяных загрязнением // Достижения науки и техники АПК, 2009. №. 4. C. 20–21.
  17. Меркушева М.Г., Убугунов Л.Л., Болонева Л.Н., Лаврентьева И.Н. Сера в неорошаемых и орошаемых каштановых почвах и оценка применения возрастающих доз серных удобрений (на фоне NPK) под картофель // Агрохимия. 2023. № 3. С. 20–28. http://doi.org/10.31857/S0002188123030080
  18. Минникова Т.В., Мокриков Г.В., Казеев К.Ш., Акименко Ю.В., Колесников С.И. Оценка зависимостей между гидротермическими показателями и ферментативной активностью черноземов Ростовской области при использовании различных агротехнологий // Агрофизика. 2018. № 1. С. 9–17. http://doi.org/10.25695/AGRPH.2018.01.02
  19. Минникова Т.В., Русева А.С., Колесников С.И. Оценка ферментативной активности нефтезагрязненного чернозема после биоремедиации // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2022. № 5. С. 5–20. http://doi.org/10.26897/0021-342Х-2022-5-5-20
  20. Новоселова Е.И., Киреева Н.А. Ферментативная активность почв в условиях нефтяного загрязнения и ее биодиагностическое значение // Теоретическая и прикладная экология. 2009. № 2. С. 4–12.
  21. Поляк Ю.М., Сухаревич В.И. Почвенные ферменты и загрязнение почв: биодеградация, биоремедиация, биоиндикация // Агрохимия. 2020. № 3. С. 83–93. http://doi.org/10.31857/S0002188120010123
  22. Пронина Н.Б., Баздыррв Г.И. Особенности ферментативной активности почв и растений в условиях эрозионного стресса // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2002. Вып. 2. С. 50–65.
  23. Пуртова Л.Н., Тимофеева Я.О. Пуртова, Л.Н. Изучение некоторых свойств и активности каталазы агротемногумусовых подбелов при различных видах агротехнического воздействия // Почвоведение. 2022. № 10. С. 1277–1289. http://doi.org/10.31857/S0032180X22100136
  24. Рафикова Г.Ф., Кузина Е.В., Коршунова Т.Ю. Влияние биоремедиации на биологическую активность чернозема выщелоченного, загрязненного нефтью и свинцом // Почвоведение. 2022. № 3. С. 354–369. http://doi.org/10.31857/S0032180X22030121
  25. Самофалова И.А. Химический состав почв и почвообразующих пород. Пермь: Изд-во ФГОУ ВПО “Пермская ГСХА”, 2009. 132 с.
  26. Семенов А.М., Соколов М.С. Концепция здоровья почвы: фундаментально-прикладные аспекты обоснования критериев оценки // Агрохимия. 2016. № 1. С. 3–16.
  27. Семенов А.М., Спиридонов Ю.Я., Торопова Е.Ю., Глинушкин А.П. Здоровая почва – условие устойчивости и развития арго- и социосфер (проблемно-аналитический обзор) // Известия РАН. Сер. Биологическая. 2020. № 1. С. 12–21. http://doi.org/10.31857/S0002332920010142
  28. Семенов В.М. Функции углерода в минерализационно-иммобилизационном обороте азота в почве // Агрохимия. 2020. № 6. С. 78–96. http://doi.org/10.31857/S0002188120060101
  29. Сергатенко С.Н., Федорова И.Л., Игнатова Т.Д. Влияние нефтяного загрязнения на активность почвенных ферментов классов оксидоредуктаз и гидролаз // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2022. Т. 3 59). С. 83–88.
  30. Сулейманов Р.Р., Шорина Т.С. Влияние нефтяного загрязнения на динамику биохимических процессов чернозема обыкновенного (Оренбургская область) // Известия Самарского НЦ РАН. 2012. Т. 14. № 1. С. 240–243.
  31. Хазиев Ф.Х. Методы почвенной энзимологии. М.: Наука; 2005. С. 252.
  32. Хазиев Ф.Х. Функциональная роль ферментов в почвенных процессах // Вестник Академии наук Республики Башкортостан. 2015. T 20. № 2(78). C. 14–24.
  33. Хазиев Ф.Х. Почва и экология // Вестник Академии наук Республики Башкортостан, 2017. T. 24. № 3. C. 29–38.
  34. Хазиев Ф.Х. Экологические связи ферментативной активности почв // Экобиотех, 2018. Т. 1. № 2. С. 80–92.
  35. Халимов Э.М., Левин С.В., Гузев В.С. Экологические и микробиологические аспекты повреждающего действия нефти на свойства почвы // Вестник Моск. ун-та. Сер. 17, почвоведение. 1996. № 2. С. 59–64.
  36. Шамраев А.В. Шорина Т.С. Влияние нефти и нефтепродуктов на различные компоненты окружающей среды // Вестник Оренбургского гос. ун-та. 2009. № 6. С. 642–645.
  37. Шафран С.А., Кирпичников Н.А., Ермаков А.А., Семенова А.И. Динамика содержания подвижного фосфора в почвах нечерноземной зоны и его регулирование // Агрохимия. 2021. № 5. С. 14–20.
  38. Якушев А.В. Журавлева А.И., Кузнецова И.Н. Влияние длительной и кратковременных засух на гидролитические ферменты серой почвы // Почвоведение. 2023. № 6. С. 745–757. http://doi.org/10.31857/S0032180X2260130X
  39. Datta A., Gujre N., Gupta D., Agnihotri R., Mitra S. Application of enzymes as a diagnostic tool for soils as affected by municipal solid wastes // J. Environ. Management. 2021. V. 286. P. 112169. http://doi.org/10.1016/j.jenvman.2021.112169
  40. Daunoras J., Kačergius A., Gudiukaitė R. Role of Soil Microbiota Enzymes in Soil Health and Activity Changes Depending on Climate Change and the Type of Soil Ecosystem // Biology. 2024. V. 13. P. 85. http://doi.org/10.3390/biology13020085
  41. Garcia-Ruiz R., Ochoa V., Hinojosa M.B., Carreira J.A. Suitability of enzyme activities for the monitoring of soil quality improvement in organic agricultural systems // Soil Biol. Biochem. 2008. V. 40. P. 2137–2145. http://doi.org/10.1016/J.SOILBIO.2008.03.023
  42. Germida J.J., Wainwright M., Gupta V. Biogeochemistry of sulfur in soil // Soil Biochemistry. 1991. V. 7. P. 1–54.
  43. Ghosh A., Paul R., Sarkar A., Manna M.C., Bhattacharjya S., Alam K., Choudhury S., Mondalf P. Carbon, Nitrogen, Phosphorus and Sulfur Cycling Enzymes and Functional Diversity in Agricultural Systems // Agricultural Biocatalysis: Enzymes in Agriculture and Industry Publisher: Jenny Stanford Publishing Pte. Ltd. Ch. 11. 2022. Р. 332–361.
  44. Guliyev A., Islamzade R., Suleymanova P., Babayeva T., Aliyeva A., Haciyeva X. Impact of petroleum contamination on soil properties in Absheron Peninsula, Azerbaijan // Eurasian J. Soil Sci. 2024. V. 13. Р. 358–365. http://doi.org/10.18393/ejss.1531959
  45. Hu G., Hu C., Zhong C., Xu C., Zhang Z. Soil Enzyme Activity and Stoichiometry in an Illicium verum Plantation Chronosequence in Southern China // Polish J. Environ. Studies. 2024. V. 33. Р. 1781–1790. http://doi.org/10.15244/pjoes/172846
  46. Huang H.L., Zong N., He N.P., Tian J. Characteristics of soil enzyme stoichiometry along an altitude gradient on Qinghai-Tibet Plateau alpine meadow, China. Ying Yong Sheng Tai Xue Bao. 2019. V. 30. Р. 3689–3696. In Chinese. http://doi.org/10.13287/j.1001-9332.201911.013
  47. Ji L., Ma L.X., Cheng Z.L., Zhu Q.C., Zhang Y., Yang Y.C., Yang L.X. Stoichiometry of soil extracellular enzymes and its seasonal variation in natural forests with different altitudes in northern Greater Khingan Mountains, China Ying Yong Sheng Tai Xue Bao. 2020. V. 31. Р. 2491–2499. In Chinese. http://doi.org/10.13287/j.1001-9332.202008.005
  48. Kali Prasanna R., Narasimha G. Physico-chemical properties and enzyme activities in forest soil // Environ. Sci.: Indian J. 2012. V. 7. P. 371–376.
  49. Keane J.B., Hoosbeek M.R., Taylor C.R. et al. Soil C, N and P cycling enzyme responses to nutrient limitation under elevated CO2 // Biogeochemistry. 2020. V. 151. P. 221–235. http://doi.org/10.1007/s10533-020-00723-1
  50. Klose S., Bilen S., Tabatabai M.A., Warren D.A. Sulfur Cycle Enzymes // Methods of Soil Enzymology. Ch. 7. Publisher: SSSA Book Series 9, 2010. http://doi.org/10.2136/sssabookser9.c7
  51. Kolesnikov S.I., Kazeev K.S., Akimenko Y.V. Development of regional standards for pollutants in the soil using biological parameters // Environ. Monitor. Assess. 2019. V. 191. P. 544. http://doi.org/10.1007/s10661-019-7718-3
  52. Kolesnikov S., Minnikova T., Kazeev K., Akimenko Y., Evstegneeva N. Assessment of the ecotoxicity of pollution by potentially toxic elements by biological indicators of haplic chernozem of Southern Russia (Rostov region) // Water, Air, Soil Poll. 2022. V. 233. P. 18. http://doi.org/10.1007/s11270-021-05496-3.
  53. Mfombep P.M., Senwo Z.N. Soil maltase activity by a glucose oxidase–perioxidase system // 3 Biotech. 2012. V. 2. Р. 225–231. http://doi.org/10.1007/s13205-012-0050-z
  54. Minnikova T., Kolesnikov S., Kuzina A., Trufanov D., Khrapay E., Trushkov A. Enzymatic diagnostics of soil health of the European part of Russia with lead contamination // Soil Systems 2024. V. 8. V. 3. P. 76. http://doi.org/10.3390/soilsystems8030076
  55. Minnikova T., Kolesnikov S., Revina S., Ruseva A., Gaivoronsky V. Enzymatic assessment of the state of oil-contaminated soils in the south of Russia after bioremediation // Toxics. 2023. V. 11. P. 355. http://doi.org/10.3390/toxics11040355
  56. Minnikova T.V., Kolesnikov S.I., Evstegneeva N.A., Timoshenko A.N., Tsepina N.I., Kazeev K.Sh. Assessment of enzymatic activity of haplic chernozem soils contaminated with Ag, Bi, Te, and Tl // Eurasian Soil Science. 2024. V. 57. V. 3. P. 395–408. http://doi.org/10.1134/S1064229323603037
  57. Mokrikov G.V., Minnikova T.V., Kazeev K.Sh., Kolesnikov S.I. Influence of productive moisture reserves and quantity of atmosphere precipitation on the yield of agricultural crops under different tillage // Agronomy Res. 2019. V. 17. P. 2350–2358. http://doi.org/10.15159/AR.19.202
  58. Mokrikov G., Minnikova T., Kazeev K., Kolesnikov S. Use of soil enzyme activity in assessing the effect of No-Till in the South of Russia // Agronomy Res. 2021. V. 19. Р. 171–184. http://doi.org/10.15159/AR.20.240
  59. Olubodun S.O., Eriyamremu G.E. Adenosine Triphosphatase Activities of Zea Mays and Vigna unguiculata Exposed to Different Crude Oil Fractions // Int. J. Biochem. Res. Rev. 2014. V. 4. Р. 505–516.
  60. Piotrowska-Długosz A. Significance of the Enzymes Associated with Soil C and N Transformation // Carbon and Nitrogen Cycling in Soil. Singapore: Springer, 2020. Р. 399–437. http://doi.org/10.1007/978-981-13-7264-3_12
  61. Piotrowska-Długosz A., Kobierski M., Długosz J. Enzymatic Activity and Physicochemical Properties of Soil Profiles of Luvisols // Materials. 2021. V. 14. Р. 6364. http://doi.org/10.3390/ma14216364
  62. Pu Y., Bo Zhu, Dong Z., Liu Y., Wang C., Ye C. Soil N2O and NOx emissions are directly linked with N-cycling enzymatic activities // Appl. Soil Ecol. 2019. V. 139(75). http://doi.org/10.1016/j.apsoil.2019.03.007
  63. Rao M.A., Scelza R., Acevedo F., Diez M.C., Gianfreda L. Enzymes as useful tools for environmental purposes // Chemosphere. 2014. V. 107. P. 145–162. http://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2013.12.059
  64. Revina S., Minnikova T., Ruseva A., Kolesnikov S., Kutasova A. Catalase activity as a diagnostic indicator of the health of oil-contaminated soils after remediation // Environ. Monitor. Assessm. 2024. V. 196. Р. 449. http://doi.org/10.1007/s10661-024-12604-3
  65. Ruseva A., Minnikova T., Kolesnikov S., Trufanov D., Minin N., Revina S., Gaivoronsky V. Assessment of the ecological state of haplic chernozem contaminated by oil, fuel oil and gasoline after remediation // Petroleum Research. 2024. V. 9. Р. 155–164. http://doi.org/10.1016/j.ptlrs.2023.03.002
  66. Schachtman D.P., Raman K., Schroeder J.I., Marsh E.L. The structure and function of a novel cation transporter (LCT1) in higher plants // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1997. V. 94. Р. 11079–11084.
  67. Sozina I.D., Danilov A.S. Microbiological remediation of oil-contaminated soils // J. Mining Institute. 2023. V. 260. P. 297–312. http://doi.org/10.31897/PMI.2023.8
  68. Wang L., Hamel C., Lu P., Wang J., Sun D, Wang Y., Lee S.J., Gan G.Y. Using enzyme activities as an indicator of soil fertility in grassland – an academic dilemma // Frontiers in Plant Sci. 2023. V. 14. Р. 1175946. http://doi.org/10.3389/fpls.2023.1175946
  69. Wei J., Amelung W., Lehndorff E., Schloter M., Vereecken H., Brüggemann N. N2O and NOx emissions by reactions of nitrite with soil organic matter of a Norway spruce forest // Biogeochemistry. 2017. V. 132. Р. 325–342. http://doi.org/10.1007/s10533-017-0306-0
  70. Wilson R., Turner A.P.F. Glucose oxidase: an ideal enzyme // Biosensors and Bioelectronics 1992. V. 7. Р. 165–185.
  71. World Reference Base for Soil Resources. International Soil Classification System for Naming Soils and Creating Legends for Soil Maps, 4th Ed. International Union of Soil Sciences (IUSS), Vienna, 2022.
  72. Wyszkowska J., Borowik A., Zaborowska M., Kucharski J. The Potential for Restoring the Activity of Oxidoreductases and Hydrolases in Soil Contaminated with Petroleum Products Using Perlite and Dolomite // Appl. Sci. 2024. V. 14. Р. 3591. http://doi.org/10.3390/app14093591
  73. Zhao Z., Zhang C., Li F., Gao S., Zhang J. Effect of compost and inorganic fertilizer on organic carbon and activities of carbon cycle enzymes in aggregates of an intensively cultivated Vertisol // Plos One. 2020. http://doi.org/10.1371/journal.pone.0229644

Arquivos suplementares

Arquivos suplementares
Ação
1. JATS XML
Baixar
2. Fig. 1. The scheme of the model experiment, the conditions of the experiment and the determined parameters of enzymatic activity.

Baixar (230KB)
Metadados
3. 2. Changes in the activity of oxidoreductase class enzymes in common chernozem and sod-podzolic soil after oil contamination: (a) dehydrogenase (mg triphenylformazane in 1 g of soil in 24 hours); (b) ferrireductase (mg Fe2O3 in 100 g of soil in 48 hours); (c) peroxidase (mg 1,4-benzoquinone in 1 g of soil in 30 minutes); (d) glucose oxidase (mmol of glucose per 1 g of soil in 24 hours); e) cysteine reductase (mg of formazane per 10 g in 2 hours); (f) catalase (ml of O2 in 1 g of soil in 1 min); g) nitrate reductase (mg of NO3 in 10 g of soil in 24 hours); (h) ascorbate oxidase (mg of DHA in 1 g of soil per 1 hour); (i) polyphenol oxidase (mg of 1.4 benzoquinone in 1 g of soil in 30 minutes); (j) nitrite reductase (mg of NO2 in 1 g of soil in 24 hours). K – control.

Baixar (403KB)
Metadados
4. 3. Changes in the activity of hydrolase class enzymes in common chernozem and sod-podzolic soil after oil contamination: (a) invertase (mg of glucose in 1 g of soil in 24 hours); (b) glutaminase (microns of NH4 in 1 g of soil in 20 minutes); (c) β-glucosidase (mg of glucose per 1 g of soil in 24 hours); (d) aryl sulfatase (mcg of p-nitrophenol in 1 g of soil in 1 hour); (e) cellulase (mg of glucose in 2 g of soil in 48 hours); (f) urease (mg of NH3 in 1 g of soil in 24 hours; (g) adenosine triphosphatase (mg of P in 100 g of soil in 1 hour); (h) protease (mg of glycine in 1 g of soil in 24 hours); (i) acid phosphatase (mcg of p-nitrophenol in 1 g of soil in 1 hour); (j) Alkaline phosphatase (mcg of p-nitrophenol in 1 g of soil per 1 hour). K – control.

Baixar (399KB)
Metadados
5. 4. Indices for assessing the state of ordinary chernozem and sod-podzolic soil after oil pollution: (a) integral index of enzymatic activity (IPA), %; (b) geometric mean enzymatic activity (GREA); (c) integral index of soil pollution (AP).

Baixar (291KB)
Metadados
6. Fig. 5. Comparison of the sensitivity of enzymes of cycle C, N, O, P and S of ordinary chernozem and sod-podzolic soil under oil pollution, %. The most sensitive enzymes for each biogeochemical cycle are marked with a white fill; short names of enzymes are indicated in Table 2.

Baixar (337KB)
Metadados

Declaração de direitos autorais © Russian Academy of Sciences, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».