Sequencing and annotation of the chloroplast genome of Triticum timonovum Heslot et Ferrary

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

The chloroplast genome of the synthetic octaploid Triticum timonovum Heslot et Ferrary k-43065 (France) was sequenced for the first time. Plastome sequencing was carried out on a Genolab M sequencer (GeneMind, China). The genome assembly was carried out using the NOVOwrap program. The size of the chloroplast genome of T. timonovum was 136158 bp. Meanwhile, the length of the inverted repeat region was 21552 bp, the SSC region was 12795 bp. and LSC – 80257 bp. The chloroplast genomes of T. timonovum and different T. timopheevii accessions from the GenBank database were compared. As for the chloroplast genome, T. timonovum was closer to T. timopheevii (AB976560.1), but differed from it by the presence of one insert A at position 47891.

Full Text

Тriticum timonovum Heslot et Ferrary (пшеница тимоновум) – октаплоидная пшеница, искусственно созданная путем удвоения числа хромосом T. timopheevii Zhuk. с использованием колхицина. Авторами [1] это растение было обозначено как абберантный тетраплоид. Известно, что пшеница тимоновум – это синтетический октаплоид (2n = 56), который характеризуется такими полезными признаками, как высокое содержание белка в зерне и хорошие хлебопекарные качества, а также способностью вызывать у межвидовых гибридов цитоплазматическую мужскую стерильность. Между тем эта пшеница характеризуется медленным темпом развития и меньшей урожайностью чем T. timopheevii, что, по-видимому, связано с высокой плоидностью T. timonovum [2].

Принимая во внимание генотип исходной пшеницы, геном T. timonovum должен быть обозначен как GGAtAtGGAtAt, но по данным Е. Бадаевой и др. [3, 4] следует обозначать как GGAtAtBBAuAu, так как несколько хромосом генома А и одна хромосома генома G были заменены гомеологами геномов А и В от некоей неидентифицированной полбы. В дополнение к этому, в исследовании кариотипа T. fungicidum Zhuk. геномы А, В, At и G этой пшеницы были идентичны родительским видам T. timopheevii и T. carthlicum Nevsk., но в то же время геномы А и В отличались от соответствующих геномов T. timonovum. Авторы исследования предположили, что геномы А и В в геномы T. fungicidum и T. timonovum были переданы разными видами пшениц. Синтетический октаплоид T. timonovum – малоизученное растение, и его геном пока не исследован, к тому же не были изучены возможные изменения хлоропластного генома этой пшеницы под действием такого сильного мутагена как колхицин при создании T. timonovum путем полиплоидизации T. timopheevii.

Цель настоящей работы – секвенирование и аннотация хлоропластного генома T. timonovum.

Семена T. timonovum были предоставлены Федеральным исследовательским центром Всероссийский институт генетических ресурсов растений им. Н.И. Вавилова (ВИР, Санкт-Петербург). Растения проращивались в теплице при 21 °С в течение трех недель, затем было собрано около 20 г зеленых листьев и помещено на 48 ч в холод (+4 °С) и темноту для уменьшения содержания крахмала. Гомогенизацию листьев проводили при помощи фарфоровой ступки и пестика в жидком азоте. Хлоропластная ДНК была выделена из зеленых листьев с помощью метода сахарозного градиента [5] с некоторыми модификациями.

Подготовка библиотек ДНК для секвенирования проводилась методом shotgun при помощи набора SG GM Plus (Raissol, Россия). Сначала проводилась ферментативная фрагментация хлоропластной ДНК до размера фрагментов 350 пн с одновременным восстановлением концов. Далее проводили лигирование адаптеров и очистку продукта реакции на магнитных частицах Smart beads (Raissol, Россия). На заключительном этапе проводилась индексная ПЦР и очистка продукта реакции на магнитных частицах Smart beads (Raissol, Россия). Библиотеки ДНК пулировали и проводили секвенирование при помощи набора Genolab M Kit V1.0 100 M reads/flow cell на секвенаторе Genolab M (GeneMind, Китай). Режим секвенирования – 2´ 150 пн, файлы .base были демультиплексированы на приборе Genolab M с получением файлов с расширением fastq. В общей сложности было получено 13 млн ридов. Удаление адаптеров приготовленной библиотеки из файлов формата fastq проводили при помощи программы Trimmomatic v. 0.22 [6]. Обрезанные риды были собраны в контиги, которые объединялись и записывались в файл формата fasta, содержащий информацию о полной кольцевой молекуле хлоропластной ДНК, которая была сгенерирована при помощи программы NOVOwrap [7].

В качестве референсного генома был использован хлоропластный геном T. timopheevii с номером доступа KJ614408.1. Полный хлоропластный геном T. timonovum был аннотирован при помощи ресурса Chloroplast Genome Annotation, Visualization, Analysis, and GenBank Submission 2 (CPGAVAS2) (http://47.96.249.172:16019/analyzer/home) [8]. Кольцевую карту хлоропластного генома визуализировали при помощи ресурса Chloroplot (https://irscope.shinyapps.io/Chloroplot) [9]. Выравнивание нуклеотидных последовательностей хлоропластных геномов проводили при помощи MAFFT v.7 [10]. Филогенетическое древо строили и визуализировали при помощи Archaeopteryx (bootstrap = 1000) [11]. В качестве внешнего вида для филогенетического анализа был взят Secale cereale subsp. segetale (MZ507427.1) из GenBank.

Нуклеотидная последовательность хлоропластного генома T. timonovum была депонирована в GenBank (номер доступа OR936056). Аннотацию хлоропластного генома проводили при помощи ресурса CPGAVAS 2, при этом размер хлоропластного генома T. timonovum составил 136158 пн. Длина области инвертированных повторов 21552 пн, области SSC – 12795 пн, а области LSC – 80257 пн. Содержание GC-пар во всем пластидном геноме – 38.3%. В области SSC содержание GC составляет 32.17%, а в области LSC – 36.25%. В области IR T. timonovum GC-содержание доходит до 43.92%.

У пшеницы тимоновум аннотировали 132 структурных гена, из которых 85 – белок-кодирующие гены, 31 ген тРНК и 4 гена рРНК. В том числе 7 генов, кодирующих белки (rps19, rpl2, rpl23, ndhB, rps7, rps12, rps15), 8 генов тРНК (trnH-GUG, trnM-CAU, trnL-CAA, trnV-GAC, trnT-CGU, trnA-UGC, trnR-ACG, trnN-GUU), 4 гена рРНК (rRNA4.5, rRNA23, rRNA16 и rRNA5) были дублированы из-за того, что находятся в области повтора IR. При этом в SSC-области обнаружено 10 белок-кодирующих генов и 1 ген тРНК, в LSC-области – 68 белок-кодирующих генов и 22 гена тРНК. Кроме того, из 132 генов 11 имеют по одному интрону (atpF, ndhB, petB, petD, rpl2, trnI-GAU, ndhA, rpl16, rps12A, rps16, trnG-UCC) и 9 генов – по 2 интрона (trnK-UUU, trnS-CGA, trnL-UAA, trnV-UAC, trnT-CGU, trnA-UGC, ycf3). Самый крупный интрон (2559 пн) находится в гене trnk-UUU, внутри которого располагается другой ген – matK. Все полученные результаты представлены на рис. 1, а в виде кольцевой структуры, полученной при помощи онлайн-ресурса Chloroplot. Различные цветовые блоки на внешнем круге кольца отображают принадлежность генов к тем или иным функциональным группам.

На основе анализа нуклеотидных последовательностей полных хлоропластных геномов различных образцов T. timopheevii из GenBank, T. turgidum MG958546.1 и T. timonovum k-43065 (секвенированный нами) было построено филогенетическое древо, которое показало, что T. timonovum k-43065 наиболее близок к T. timopheevii (AB976560.1) (рис. 1, б), при этом другие образцы T. timopheevii расположились на древе немного дальше. T. turgidum MG958546.1 и Secale cereale subsp. segetale (MZ507427.1), как и ожидалось, оказались внешними видами по отношению к исследованным пшеницам. Пластомы T. timonovum и T. timopheevii (AB976560.1) отличались только одной вставкой А в положении 47891, при этом другие образцы T. timopheevii отличались от этих близких по хлоропластному геному образцов пшениц различными делециями и вставками.

 

Рис. 1. а – визуальное представление в виде кольца секвенированного хлоропластного генома T. timonovum к-43065. Разными цветами отображены гены, синий круг посередине отображает уровень GC. IRA – инвертированная область повтора A, IRB – инвертированная область повтора B. Гены, расположенные за пределами внешнего круга, транскрибируются по часовой стрелке, а расположенные внутри гены – против часовой стрелки. б – филогенетическое древо, построенное на основе выравнивания нуклеотидных последовательностей хлоропластных геномов различных образцов T. timopheevii из GenBank, T. turgidum MG958546.1 и T. timonovum k-43065. В качестве внешнего вида представлен Secale cereale subsp. segetale (MZ507427.1).

 

Ранее японскими авторами [12] на основе микросателлитного анализа хлоропластной ДНК большого числа образцов T. timopheevii из дикой флоры были выявлены три подгруппы, которые можно видеть также на построенном нами древе (рис. 1, б). Лишь образец с номером KJ614407.1 расположился отдельно от этих трех групп.

К сожалению, французские авторы [1] в своей статье не указали, какой конкретно образец тетраплоидной пшеницы T. timopheevii с геномом GA они использовали при создании октаплоидного вида T. timonovum с геномом GGAA. Однако по нуклеотидной последовательности пластидного генома этот октаплоид оказался наиболее близок к образцу пшеницы Тимофеева (AB976560.1), секвенированного грузинскими авторами [13]; однако в их статье также не сообщается ни каталожный номер, ни точное географическое происхождение секвенированного образца данной пшеницы.

Тем не менее, исходя из того, что от других представителей T. timopheevii хлоропластный геном пшеницы тимоновум отличается наличием ряда инделов, можно предположить, что именно образец T. timopheevii (AB976560.1) или близкий к нему был исходным при получении T. timonovum, при этом хлоропластный геном полученного октаплоида под действием колхицина сильным изменениям не подвергся.

Авторы выражают искреннюю признательность коллективу Отдела генетических ресурсов пшениц Всероссийского института генетических ресурсов растений им. Н.И. Вавилова (ВИР, Санкт-Петербург) за предоставление семенного материала для исследований.

Работа выполнена в рамках Государственного контракта по проекту РНФ № 23-24-00275 “Филогенетические взаимоотношения отдельных видов пшенично-эгилопсного комплекса разных уровней плоидности через призму их полных хлоропластных геномов с прицелом на происхождение B- и G-субгеномов полиплоидных форм пшениц линий turgidum-aestivum и timopheevii-zhukovskyi”.

Настоящая статья не содержит каких-либо исследований с участием животных и людей в качестве объектов исследований.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

×

About the authors

А. R. Kuluev

Institute of Biochemistry and Genetics - Subdivision of the Ufa Federal Research Centre of the Russian Academy of Sciences

Author for correspondence.
Email: kuluev@bk.ru
Russian Federation, 450054, Ufa

R. T. Matniyazov

Institute of Biochemistry and Genetics - Subdivision of the Ufa Federal Research Centre of the Russian Academy of Sciences

Email: kuluev@bk.ru
Russian Federation, 450054, Ufa

B. R. Kuluev

Institute of Biochemistry and Genetics - Subdivision of the Ufa Federal Research Centre of the Russian Academy of Sciences

Email: kuluev@bk.ru
Russian Federation, 450054, Ufa

L. Yu. Privalov

Institute of Biochemistry and Genetics - Subdivision of the Ufa Federal Research Centre of the Russian Academy of Sciences

Email: kuluev@bk.ru
Russian Federation, 450054, Ufa

A. V. Chemeris

Institute of Biochemistry and Genetics - Subdivision of the Ufa Federal Research Centre of the Russian Academy of Sciences

Email: kuluev@bk.ru
Russian Federation, 450054, Ufa

References

  1. Heslot H., Raymond R. Obtention experimentale d’un autotetraploide aberrant (Triticum timonovum) a partir de Triticum timopheevi Zhuk. // Compt. Rend. Hebd. Séances Acad. Sci. 1959. V. 248. P. 452–455.
  2. Мурашёв В.В., Морозова З.А. Сравнительный морфогенез Triticum timopheevii (Zhyk.) и синтезированного октоплоидного вида T. timonovum Heslot еt Ferrary // Вест. Моск. у-та. Серия 16. 2008. T. 63. № 3. C. 127–133.
  3. Badaeva E.D., Badaev N.S., Filatenko A.A. et al. Cytological investigation of cereal, hexa- and octoploid species containing G genome // Genetika (Mos.). 1990. V. 26. № 4. P. 708–716.
  4. Badaeva E.D., Filatenko A.A., Badaev N.S. Cytogenetic investigation of Triticum timopheevii (Zhuk.) Zhuk. and related species using the C-banding technique // Theor. Appl. Genet. 1994. V. 89. P. 622–628.
  5. Shi C., Hu N., Huang H. et al. An improved chloroplast DNA extraction procedure for whole plastid genome sequencing // PLoS One. 2012. V. 7. № 2. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0031468
  6. Bolger A.M., Lohse M., Usadel B. Trimmomatic: A flexible trimmer for Illumina sequence data // Bioinformatics. 2014. V. 30. P. 2114–2120. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btu170
  7. Wu P., Xu C., Chen H. et al. NOVOWrap: An automated solution for plastid genome assembly and structure standardization // Mol. Ecol. Resour. 2021. V. 21. № 6. P. 2177–2186. https://doi.org/10.1111/1755-0998.13410
  8. Shi L., Chen H., Jiang M. et al. CPGAVAS2, an integrated plastome sequence annotator and analyzer // Nucl. Ac. Res. 2019. V. 47. P. W65–W73. https://doi.org/10.1093/nar/gkz345
  9. Zheng S., Poczai P., Hyvönen J. et al. Chloroplot: An online program for the versatile plotting of organelle genomes // Front Genet. 2020. V. 11. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.576124
  10. Katoh K., Standley D.M. MAFFT multiple sequence alignment software version 7: Improvements in performance and usability // Mol. Biol. Evol. 2013. V. 30. № 4. P. 772–780. https://doi.org/10.1093/molbev/mst010
  11. Han M.V., Zmasek C.M. phyloXML: XML for evolutionary biology and comparative genomics // BMC Bioinformatics. 2009. V. 10. P. 1–6. https://doi.org/10.1186/1471-2105-10-356
  12. Mori N., Kondo Y., Ishii T. et al. Genetic diversity and origin of timopheevi wheat inferred by chloroplast DNA fingerprinting // Bred. Sci. 2009. V. 59. P. 571–578. https://doi.org/10.1270/jsbbs.59.571
  13. Gogniashvili M., Naskidashvili P., Bedoshvili D. et al. Complete chloroplast DNA sequences of Zanduri wheat (Triticum spp.) // Genet. Resour. Crop. Evol. 2015. V. 62. P. 1269–1277. https://doi.org/10.1007/s10722-015-0230-x

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
2. Fig. 1. a is a visual representation in the form of a ring of the sequenced chloroplast genome of T. timonovum k-43065. The genes are displayed in different colors, the blue circle in the middle shows the GC level. IRA is the inverted repeat region A, IRB is the inverted repeat region B. Genes located outside the outer circle are transcribed clockwise, and genes located inside are transcribed counterclockwise. b is a phylogenetic tree based on the alignment of nucleotide sequences of chloroplast genomes of various T. timopheevii samples from GenBank, T. turgidum MG958546.1 and T. timonovum k-43065. The Secale cereale subsp is presented as an appearance. segetale (MZ507427.1).

Download (597KB)

Copyright (c) 2024 Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».