Синтез, свойства и антибактериальная активность цинкзамещенного гидроксиапатита

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В работе получены гидроксиапатит (ГА) и цинкзамещенный (ZnГА) гидроксиапатит методом осаждения из раствора. Значения кристаллографических параметров для ZnГА (а, b = 9.41766 Å, с = 6.88048 Å) по отношению к кристаллографическим параметрам ГА (а, b= 9.41866 Å, с = 6.88158) уменьшаются примерно на 0.001 Å. Изменение кристаллографических параметров исследованного ZnГА подтверждает частичное замещение ионов Ca2+ на ионы Zn2+ в кристаллической решетке ГА. По ИК-спектрам определено наличие функциональных групп (OH-, PO43-) в составе ГА. По данным растровой электронной микроскопии, размер частиц порошка ZnГА, полученного методом осаждения с последующей термообработкой при 900°С, составляет 200–400 нм. Методом энергодисперсионного микроанализа определены соотношения Ca/P и (Ca+Zn)/P для ГА и ZnГА, равные 1.68 и 1.66 соответственно. В среде физиологического раствора увеличение растворимости ZnГА в 2 раза по отношению к ГА указывает на перспективу хорошей резорбции в организме. Исследование образцов в виде дисков в растворе SBF показало, что на поверхности происходит активное формирование нового кальций-фосфатного слоя за счет химической адсорбции ионов Ca2+, Mg2+, HPO42-, PO43-, OH- из раствора. Состав ZnГА показал активность как к грамположительным: Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, так и к грамотрицательным микроорганизмам: Escherichia coli, Acinetobacter calcoaceticus.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

М. В. Папежук

Кубанский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: marina-marina322@mail.ru
Россия, 350040 Краснодар, ул. Ставропольская, 149

С. Н. Иванин

Кубанский государственный университет

Email: marina-marina322@mail.ru
Россия, 350040 Краснодар, ул. Ставропольская, 149

В. А. Волынкин

Кубанский государственный университет

Email: marina-marina322@mail.ru
Россия, 350040 Краснодар, ул. Ставропольская, 149

П. П. Якупов

Санкт-Петербургский государственный университет

Email: marina-marina322@mail.ru
Россия, 199034 Санкт-Петербург, Университетская наб., 7-9

Л. В. Васильева

Кубанский государственный университет

Email: marina-marina322@mail.ru
Россия, 350040 Краснодар, ул. Ставропольская, 149

Список литературы

  1. Currey J. Biomaterials: Sacrificial Bonds Heal Bone // Nature. 2001. V. 414. P. 699–708. https://doi.org/10.1038/414699a
  2. Bakan F., Laçin O., Sarac H. A Novel Low Temperature Sol–Gel Synthesis Process for Thermally Stable Nano Crystalline Hydroxyapatite // Powder Technol. 2013. V. 233. P. 295–302. https://doi.org/10.1016/j.powtec.2012.08.030
  3. Chatakun P., Nunez-Toldra R., Diaz Lopez E.J., Gil-Recio, C., Martinez-Sarra E., Hernandez-Alfaro F., Ferres-Padro E., Giner-Tarrida L., Atari M. The Effect of Five Proteins on Stem Cells Used for Osteoblast Differentiation and Proliferation: A Current Review of the Literature // Cell Mol. Life Sci. 2014. V. 71. P. 113–142. https://doi.org/10.1007/s00018-013-1326-0
  4. Папежук М.В., Иванин С.Н., Якупов Р.П., Бузько В.Ю., Сухно И.В., Гнеуш А.Н. Синтез микрокристаллического гидроксиапатита с полимерными органическими добавками и получение волокон на его основе методом электроформования // Журн. СФУ. Химия. 2024. Т. 17. № 1. С. 138–150.
  5. Ковылин Р.С., Алейник Д.А., Федюшкин И.Л. Современные пористые полимерные имплантаты: изготовление, свойства и применение // Высокомолекулярные соединения (серия С). 2021. Т. 63. № 1. С. 33–53. https://doi.org/10.31857/S2308114721010039
  6. Папежук М.В., Пилунова Е.М., Иванин С.Н., Якупов Р.П. Синтез микрокристаллического гидроксиапатита и получение волокон методом электроформования на его основе // Тр. КНЦ РАН. Сер.: Технические науки. 2023. Т. 14. № 2. С. 192-196. https://doi.org/10.37614/2949-1215.2023.14.2.036
  7. Писарева Е.В., Власов М.Ю., Волова Л.Т. Показатели обмена костной ткани кроликов при введении «Аллогенного гидроксиапатита» // Изв. Самарского научного центра Российской академии наук. 2015. Т. 17. № 5(3). С. 908-912.
  8. Романова Д.А., Писарева Е.В., Даниэль М.А., Власов М.Ю. Исследование безопасности применения аллогенного гидроксиапатита при моделировании глюкокортикоидной остеорезорбции в эксперименте на крысах // Остеопороз и остеопатии. 2020. Т. 23. № 2. С.139-140.
  9. Velasco Barraza R., Alvarez Suarez A.S., Villarreal Gomez L.J., Paz González J.A., Iglesias A.L., Vera Graziano R. Designing a Low-Cost Electrospinning Device for Practical Learning in a Bioengineering Biomaterials Course // Rev. Mex. Ing. Bioméd. 2016. V. 37. № 1. P. 7-16. https://doi.org/10.17488/RMIB.37.1.1
  10. Thomas M., Puleo D. Infection, Inflammation, and Bone Regeneration: a Paradoxical Relationship // J. Dent. Res. 2011. V. 90. № 9. P. 1052-1061. https://doi.org/10.1177/0022034510393967
  11. Korai H. Current Situation and Future of Inorganic Antimicrobial Agent // J. Inorg. Mater. Jpn. 1999. V. 6. P. 428–436. https://doi.org/10.1002/vjch.201800068
  12. Singh A., Dubey A.K. Various Biomaterials and Techniques for Improving Antibacterial Response // ACS Appl. Bio Mater. 2018. V. 1. P. 3–20. https://doi.org/10.1021/acsabm.8b00033
  13. Shanmugamn S., Gopal B. Copper Substituted Hydroxyapatiteand Fluorapatite: Synthesis, Characterization and Antimicrobial Properties // Ceram. Int. 2014. V. 40. P. 15655–15662. https://doi.org/10.1016/j.ceramint.2014.07.086
  14. Rameshbabu N., Sampathkumar T.S., Prabhakar T.G., Sastry V.S., Murty K.V. G.K., Prasad Rao K. Antibacterial Nanosized Silver Substituted Hydroxyapatite: Synthesis and Characterization // J. Biomed. Mater. Res. A. 2007. V. 80. № 3. P. 581–591. https://doi.org/10.1002/jbm.a.30958
  15. Zhang Y., Huang X., Ding Q., Pang X. Antibacterial and Bioactivity of Silver Substituted Hydroxyapatite/TiO2 Nanotube Composite Coatings on Titanium // Appl. Surf. Sci. 2014. V. 314. P. 348–357. https://doi.org/10.1016/j.apsusc.2014.07.027
  16. Фадеева И.В., Бакунова Н.В., Комлев В.С., Медвецкий Л., Фомин А.С., Гурин А.Н. Цинк и серебросодержащие гидроксиапатиты: синтез и свойства // Докл. Академии наук. 2012. Т. 442. № 6. С. 780–783. https://doi.org/10.1134/S0012500812020097
  17. Thian E. S., Konishi T., Kawanobe Y., Lim P.N., Choong C., Ho B., Aizawa M. Zinc-substituted Hydroxyapatite: a Biomaterial with Enhanced Bioactivity and Antibacterial Properties // J. Mater. Sci.: Mater. Med. 2013. V. 24. № 2. P.437-445. https://doi.org/10.1007/s10856-012-4817-x
  18. Shi D. Introduction to Biomaterials. World Scientific Publishing, 2006. 253 p.
  19. Berzina-Cimdina L., Borodajenko N. Research of Calcium Phosphates Using Fourier Transform Infrared Spectroscopy // Infrared Spectrosc. – Mater. Sci., Eng. Technol. 2012. V. 6. P. 124-148. https://doi.org/10.5772/36942.
  20. Yang L., Perez-Amodio S., Barrere-de Groot F.Y., Everts V., A van Blitterswijk C., Habibovic P. The Effects of Inorganic Additives to Calcium Phosphate on in Vitro Behavior of Osteoblasts and Osteoclasts // Biomaterials. 2010. V. 31. № 11. P. 2976–2989. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2010.01.002
  21. Медков М.А., Грищенко Д.Н., Руднев В.С., Шулепин И.В., Череповский А.С., Пономаренко А.И., Дюйзен И.В. Особенности остеорепарации при использовании биоматериалов на основе гидроксиапатита и стронций-замещенного гидроксиапатита // Тихоокеанский медицинский журн. 2015. № 4. С. 48-52.
  22. Samani S., Hossainalipour S.M., Tamizifar M., Rezaie H.R. In Vitro Antibacterial Evaluation of Sol-gel-derived Zn-, Ag-, and (Zn+Ag)-doped Hydroxyapatite Coatings Against Methicillin-Resistant Staphylococcus Aureus // J. Biomed. Mater. Res. Part A. 2013. V. 101. P. 222–230. https://doi.org/10.1002/jbm.a.34322.
  23. Anwar A., Akbar S., Sadiqa A., Kazmi M. Novel Continuous Flow Synthesis, Characterization and Antibacterial Studies of Nanoscale Zinc Substituted Hydroxyapatite Bioceramics // Inorg. Chim. Acta. 2016. V. 453. P. 16–22. https://doi.org/10.1016/j.ica.2016.07.041
  24. Chung R.-J., Hsieh M.-F., Huang K.-C., Perng L.-H., Chou F.-I., Chin T.-S. Anti-microbial Hydroxyapatite Particles Synthesized by a Sol-Gel Route // J. Sol-Gel Sci. Technol. 2005. V. 33. P. 229–239. https://doi.org/10.1007/s10971-005-5618-1.
  25. Ohtsuki C., Kushitani H., Kokubo T., Kotani S., Yamamuro T. Apatite Formation on the Surface of Ceravital-Type Glass-Ceramic in The Body // J. Biomed. Mater. Res. 1991. V. 25. P. 1363-1370. https://doi.org/10.1002/jbm.820251105
  26. Kokubo T., Takadama H. How Useful is SBF in Predicting in vivo Bone Bioactivity // Biomaterials. 2006. V. 27. № 15. Р. 2907–2915. https://doi.org/10.1016/j. biomaterials.2006.01.017
  27. Ressler A., Zuzic A., Ivanisevic I., Kamboj N., Ivankovic H. Ionic Substituted Hydroxyapatite for Bone Regeneration Applications: A Review // Open Ceram. 2021. V. 6. Р. 100122. https://doi.org/10.1016/j.oceram.2021.100122
  28. Boanini E., Gazzano M., Bigi A. Ionic Substitutions in Calcium Phosphates Synthesized at Low Temperature // Acta Biomater. 2010. V. 6. P. 1882–1894. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2009.12.041.
  29. Makshakova O.N., Gafurov M.R., Goldberg M.A. The Mutual Incorporation of Mg2+ and CO32− into Hydroxyapatite: A DFT Study // Materials. 2022. V. 15. Р. 9046. https://doi.org/10.3390/ ma15249046
  30. Cipreste M.F., Peres A.M., Cotta A.A.C., Aragon F.H., Antunes A.M., Leal A.S., Macedo W.A.A., Sousa E.M.B. Synthesis and Characterization of 159Gd-Doped Hydroxyapatite Nanorods for Bioapplications as Theranostic Systems // Mater. Chem. Phys. 2016. V. 181. Р. 301e311. https://doi.org/10.1016/j.matchemphys.2016.06.063
  31. Guerra-Lopez J.R., Bianchi A.E., Ramos M.A., Ferraresi-Curotto V., Güida J.A., Echeverría G.A. Novel Synthesis and Crystallographic Results of Zinc Substituted Hydroxyapatite with High Thermal Stability // Phys. B: Condens. Matter. 2024. V. 676. Р. 415676. https://doi.org/10.1016/j.physb.2024.415676
  32. Papezhuk M.V., Ivanin S.N., Yakupov R.P., Buz’ko V.Y., Sukhno I.V., Gneush A.N., Petriev I.S. Obtaining Polyvinylpyrrolidone Fibers Using the Electroforming Method with the Inclusion of Microcrystalline High-Temperature Phosphates // Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. P. 2298. https://doi.org/10.3390/ijms25042298
  33. Hughes J.M., Cameron M., Crowley K.D. Structural Variations in Natural F, OH, and Cl Apatites // Am. Mineral. 1989. V. 74. P. 870-876.
  34. Rabiei M., Palevicius A., Dashti A., Nasiri S., Monshi A., Doustmohammadi A., Vilkauskas A., Janusas G. X-ray Diffraction Analysis and Williamson-Hall Method in Usdm Model for Estimating More Accurate Values of Stress-Strain of Unit Cell and Super Cells (2 × 2 × 2) Of Hydroxyapatite, Confirmed by Ultrasonic Pulse-Echo Test // Materials. 2021. V. 14. Р. 2949. https://doi.org/10.3390/ma14112949
  35. Горячко А.И., Иванин С.Н., Бузько В.Ю. Синтез, микроструктурные и электромагнитные характеристики кобальт-цинкового феррита // Конденсированные среды и межфазные границы. Т. 22. № 4. С. 446-452. https://doi.org/10.17308/kcmf.2020.22/3115
  36. Shannon R.D. Revised effective ionic radii and systematic studies of interatomic distances in halides and chalcogenides // Acta Crystallogr., Sect. A. 1976. V.32. P. 751-767.
  37. Shepherd D., Best S.M. Production of Zinc Substituted Hydroxyapatite Using Various Precipitation Routes // Biomed. Mater. 2013. V. 8. Р. 025003. https://doi.org/10.1088/1748-6041/8/2/025003
  38. Thian E.S., Konishi T., Kawanobe Y., Lim P.N., Choong C., Ho B., Aizawa M. Zinc-substituted Hydroxyapatite: A Biomaterial with Enhanced Bioactivity and Antibacterial Properties // J. Mater. Sci: Mater. Med. 2013. V. 24. P. 437–445. https://doi.org/10.1007/s10856-012-4817-x
  39. Friederichs R.J., Chappell H.F., Shepherd D.V., Best S.M. Synthesis, Characterization and Modelling of Zinc and Silicate Co-Substituted Hydroxyapatite // J. R. Soc. Interface. 2015. V. 12. № 108.Р. 20150190. https://doi.org/10.1098/rsif.2015.0190
  40. Kannan S., Goetz-Neunhoeffer F., Neubauer J., Ferreira J.M.F. Ionic Substitutions in Biphasic Hydroxyapatite and B-Tricalcium Phosphate Mixtures: Structural Analysis by Rietveld Refinement // J. Am. Ceram. Soc. 2008. V. 91. № 1. Р. 1–12. https://doi.org/10.1111/j.1551-2916.2007.02117.x
  41. Tazibt N., Kaci M., Dehouche N., Ragoubi M., Atanase. L.I. Effect of Filler Content on the Morphology and Physical Properties of Poly(Lactic Acid)-Hydroxyapatite // Compos. Mater. 2023. V. 16. Р. 809. https://doi.org/10.3390/ma16020809
  42. Meejoo S., Maneeprakorn W., Winotai P. Phase and Thermal Stability of Nanocrystalline Hydroxyapatite Prepared Via Microwave Heating // Thermochim. Acta. 2006. № 447. P. 115–120. https://doi.org/10.1016/j.tca.2006.04.013
  43. Han J-K., Song H-Y., Saito F., Lee B.-T. Synthesis of Height Purity Nano-Sized Hydroxyapatite Powder by Microwave-Hydrothermal Method // Mater. Chem. Phys. 2006. № 99. P. 235–239. https://doi.org/10.1016/j.matchemphys.2005.10.017
  44. Destainville A., Champion E., Bernache-Assollante D., Laborde E. Synthesis, Characterization and Thermal Behaviour of Apatite Tricalcium Phosphate // Mater. Chem. Phys. 2003. № 80. P. 269–277. https://doi.org/10.1016/S0254-0584(02)00466-2
  45. Klee W.E., Engel G. Infrared Spectra of the Phosphate Ions in Various Apatite // J. Inorg. Nucl. Chem. 1970. V. 32. Р. 1837. https://doi.org/10.1016/0022-1902(70)80590-5
  46. Ma G., Liu X.Y. Hydroxyapatite: Hexagonal or Monoclinic? // Cryst. Growth Des. 2009. V. 9. № 7. P. 2991–2994. https://doi.org/10.1021/cg900156w
  47. Голощапов Д.Л., Кашкаров В.М., Румянцева Н.А., Середин П.В., Леншин А.С., Агапов Б.Л., Домашевская Е.П. Получение нанокристаллического гидроксиапатита методом химического осаждения с использованием биогенного источника кальция // Конденсированные среды и межфазные границы. 2011. Т. 13. № 4. С. 427-441.
  48. Buzko V., Babushkin M., Ivanin S., Goryachko A., Petriev I. Study of Electromagnetic Shielding Properties of Composites Based on Glass Fiber Metallized with Metal Films // Coatings. 2022. V. 12. № 8. Р. 1173. https://doi.org/10.3390/coatings12081173
  49. Павлова Т.В., Бавыкина Т.Ю. Сравнительная оценка минерального состава и ультрамикроструктуры тканей зуба в норме и при кариесе // Современные наукоемкие технологии. 2009. № 12. С. 15-18.
  50. Liu D.-M., Troczynski T., Tseng W.J. Water-Based Sol–Gel Synthesis of Hydroxyapatite: Process Development // Biomaterials. 2001. V. 22. P. 1721-1730. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(00)00332-x
  51. LeGeros R.Z. Calcium Phosphates in Oral Biology and Medicine // Monogr. Oral. Sci. 1991. V. 15. P. 1–201.
  52. Nelson D.G.A. The Influence of Carbonate on the Atomic Structure and Reactivity of Hydroxyapatite // J. Dent. Res. 1981.V. 60. P. 1621–1630. https://doi.org/10.1177/0022034581060003S1201
  53. Fulmer M.T., Ison I.C., Hankermayer C.R., Constantz B.R., Ross J. Measurements of the Solubilities and Dissolution Rates of Several Hydroxyapatites // Biomaterials. 2002. V. 23. № 3. P. 751–755. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(01)00180-6
  54. Vargas-Becerril N., Patiño-Carachure C., Rodriguez-Lorenzo L., Téllez-Jurado L. Synthesis of Hybrid Compounds Apatite-alendronate by Reactive Milling and Effects on the Structure and Morphology of the Apatite Phase // Ceram. Int. 2013. V. 39. № 4. P. 3921-3929. https://doi.org/10.1016/j.ceramint.2012.10.239
  55. N. Vargas-Becerril, D.A. Sánchez-Téllez, L. Zarazúa-Villalobos, D.M. González-García, M.A. Álvarez-Pérez, C. de León-Escobedo, L. Téllez-Jurado. Structure of Biomimetic Apatite Grown on Hydroxyapatite (HA) // Ceram. Int. 2020. V. 46. P. 28806–28813. https://doi.org/10.1016/j.ceramint.2020.08.044
  56. Kim H.-M., Himeno T., Kawashita M., Kokubo T., Nakamura T. The Mechanism of Biomineralization of Bone-like Apatite on Synthetic Hydroxyapatite: an in Vitro Assessment // J. R. Soc. Interface. 2004. V. 1. № 1. P. 17-22. https://doi.org/10.1098/rsif.2004.0003
  57. Shu X., Liao J., Wang L., Shi Q., Xie X. Osteogenic, Angiogenic, and Antibacterial Bioactive Nanohydroxyapatite Co-Synthesized Using Γ-Polyglutamic Acid and Copper // ACS Biomater. Sci Eng. 2020. V. 6. № 4. P. 1920-1930. https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.0c00096
  58. Хлебникова А.Н., Петрунин Д.Д. Цинк, его биологическая роль и применение в дерматологии // Вестник дерматологии и венерологии. 2013. Т. 6. С. 100–116.
  59. Юсупов У.К. Минимальная ингибирующая концентрация и антибиопленочная активность эндофитного гриба Penicillium roqueforti 12ph, выделенного из растения Peganum harmala // Universum: химия и биология: электрон. научн. журн. 2022. Т. 2. № 92. https://doi.org/10.32743/UniChem.2022.92.2.13021

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Решетка ГА с узлами Са (а), координационные полиэдры (б), вид структуры ГА по оси c (в), полученные с помощью программы VESTA 3.

Скачать (306KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Рентгеновские дифрактограммы синтезированных образцов ГА (а) и ZnГА (б) и аппроксимация методом Ритвельда: экспериментальные данные представлены красной сплошной линией, расчетный профиль – синяя сплошная линия, кривая разницы (экспериментальная минус рассчитанная) – сплошная красная линия .

Скачать (188KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Зависимости уширения пиков (β) порошков ГА (а) и ZnГА (б) от угла отражения (θ) (ур-е 1), представленные в линеаризованных координатах в соответствии с методом Вильямсона – Холла.

Скачать (80KB)
Метаданные
5. Рис. 4. ИК-спектры образцов ГА (красная линия), ZnГА (черная линия).

Скачать (97KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Микрофотографии образцов ГА (а, б) и ZnГА (в, г) при разных увеличениях.

Скачать (383KB)
Метаданные
7. Рис. 6. Область сканирования образца (а), ЭДА-спектр образца ZnГА, карта распределения элементов в образце ZnГА (в–е).

Скачать (365KB)
Метаданные
8. Рис.7. Кривые накопления ионов Са2+ и Мg2+ на поверхности таблеток ГА (красная линия), ZnГА (черная линия) из раствора SBF.

Скачать (79KB)
Метаданные
9. Рис. 8. Микрофотографии поверхности образца ZnГА при увеличении в 10000 раз (а–в), показывающие динамику роста КФС, и ЭДА-спектры (г–е) образца ZnГА, выдержанного в растворе SBF в течение 0, 14, 28 суток.

Скачать (351KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».